DB37 T 4686—2023 海洋生物体中金刚烷胺的测定_液相色谱串联质谱法.pdf

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1、 ICS 67.120.30 CCS B 50 37 山东省地方标准 DB37/T 46862023 海洋生物体中金刚烷胺的测定 液相色谱-串联质谱法 Determination of amantadine in marine organismsLiquid chromatography tandem mass spectrometry2023-12-28 发布2024-01-28 实施山东省市场监督管理局发 布 DB37/T 46862023 I 目次 前言.II 1 范围.1 2 规范性引用文件.1 3 术语和定义.1 4 原理.1 5 试剂及配制.1 6 仪器和设备.2 7 样品.2 8

2、 分析步骤.3 9 结果计算与表示.4 10 准确度.5 11 质量控制和质量保证.5 12 废物处置.5 附录 A（资料性）色谱图.6 附录 B（资料性）方法的准确度.8 DB37/T 46862023 II 前言 本文件按照GB/T 1.12020标准化工作导则 第1部分：标准化文件的结构和起草规则的规定起草。请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。本文件由山东省海洋局提出并组织实施。本文件由山东省海洋标准化技术委员会归口。DB37/T 46862023 1 海洋生物体中金刚烷胺的测定 液相色谱-串联质谱法 警告：实验中使用的标准溶液、有机溶剂等均具有一定

3、的毒性和挥发性，实验人员应避免与其直接接触，样品前处理过程应在通风橱中进行。1 范围 本文件描述了海洋生物体中金刚烷胺液的液相色谱-串联质谱测定方法，包括原理、试剂及配制、仪器和设备、样品、分析步骤、结果计算与表示、准确度、质量控制和质量保证、废物处置等。本文件适用于海洋生物体鱼、虾、海参、海带和贝类中金刚烷胺的测定。当称样量为3.00 g时，金刚烷胺检出限为0.5 g/kg，测定下限为1.0 g/kg。2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适

4、用于本文件。GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 3 术语和定义 本文件没有需要界定的术语和定义。4 原理 海洋生物体样品用1%乙酸乙腈提取后，经固相萃取柱净化，液相色谱-串联质谱仪测定，内标法定量。5 试剂及配制 实验室用水：GB/T 6682，一级。5.1 甲醇（CH3OH）：色谱纯。5.2 甲酸（HCOOH）：色谱纯。5.3 乙腈（CH3CN）：色谱纯。5.4 氨水（NH4OH）：优级纯。5.5 乙酸（CH3COOH）：优级纯。5.6 1%乙酸乙腈溶液（体积分数）。5.7 取1 mL乙酸，用乙腈定容至100 mL。5%氨水甲醇溶液（体积分数）。5.8 取5 mL氨水，用甲醇定

5、容至100 mL。DB37/T 46862023 2 0.1%甲酸溶液（体积分数）。5.9 取0.10 mL甲酸，用水定容至100 mL。0.1%甲酸乙腈定容液（体积分数）。5.10 将1 mL甲酸与300 mL乙腈，加入到700 mL水中。金刚烷胺标准品：CAS 号 768-94-5，纯度大于 99.0%。5.11 D15-金刚烷胺内标溶液：CAS 号 33830-10-3，1 mg/mL。5.12 金刚烷胺标准贮备液。5.13 称取金刚烷胺0.010 0 g，用乙腈溶解，并定容至10 mL，配制成1.0 mg/mL标准贮备液，-20 下避光保存，有效期为90 d。金刚烷胺标准工作液。5.1

6、4 移取100 L金刚烷胺标准贮备液（5.13），用乙腈溶解，并定容至100 mL，配制成1.0 g/mL标准工作液，4 下避光保存，有效期为30 d。D15-金刚烷胺内标标准中间液。5.15 移取100 L D15-金刚烷胺内标溶液（5.12），用乙腈溶解，并定容至100 mL，配制成1.0 g/mL内标标准中间液，4 下避光保存，有效期为30 d。D15-金刚烷胺内标标准工作液。5.16 移取1 mL D15-金刚烷胺内标标准中间液（5.15），用乙腈定容至10 mL，配制成100 g/L内标标准工作液，4 下避光保存，有效期为7 d。6 仪器和设备 液相色谱-串联质谱仪：配电喷雾电离源（

7、ESI 源）。6.1 天平：感量分别为 0.01 g 和 0.000 1 g。6.2 均质机。6.3 高速离心机：10 000 r/min。6.4 超声波清洗器。6.5 涡旋混合器。6.6 固相萃取装置。6.7 固相萃取柱：MCX（混合型阳离子固相萃取柱），60 mg/3 mL，或相当者。6.8 氮吹仪。6.9 聚丙烯离心管：50 mL。6.10 滤膜：聚偏氟乙烯滤膜，孔径为 0.22 m。6.11 7 样品 制备 7.1 鱼，去鳞、去皮，沿脊背取肌肉，将鳞、皮单独收集；虾，去头、去壳、去肠腺，取肌肉部分；海参、海带、贝等取可食部分，样品充分搅碎、混匀。如不能及时检测，-18 以下冷冻保存备用

8、。取适量新鲜或解冻的空白或供试组织，绞碎，并使均质。提取7.2 DB37/T 46862023 3 称取3.00（0.01）g样品至50 mL离心管中，加入100 L内标标准工作液（5.16）和15 mL 1%乙酸乙腈溶液（5.7），涡旋30 s，超声提取15 min，8 000 r/min离心10 min，待净化。净化7.3 MCX固相萃取柱经6 mL甲醇（5.2）和6 mL水（5.1）活化后，取5 mL上清液移入固相萃取柱，3 mL水（5.1）淋洗，6 mL 5%氨水甲醇溶液（5.8）洗脱，全程控制流速为2 mL/min3 mL/min。收集洗脱液，用氮吹仪于40 下吹至近干，用定容液（5

9、.10）定容至1 mL，过滤膜，供液相色谱-串联质谱仪分析。空白试样的制备 7.4 除不加试料外，均按上述测定步骤进行。8 分析步骤 液相色谱质谱条件 8.1 8.1.1 液相色谱条件：a)色谱柱：C18(100 mm2.1 mm，1.8 m)，或相当者；b)色谱柱温度：40；c)流速：0.25 mL/min；d)进样量：10 L；e)流动相：A 为乙腈（5.4）；B 为 0.1%甲酸溶液（5.9）；流动相梯度洗脱程序见表 1。表1 流动相梯度洗脱程序表 时间 min 流速 mL/min 流动相A%流动相B%0.00 0.25 5 95 0.50 0.25 5 95 0.60 0.25 95

10、5 5.00 0.25 95 5 5.10 0.25 5 95 7.00 0.25 5 95 8.1.2 质谱条件：a)离子化模式：ESI+；b)电离电压：2.50 kV；c)锥孔电压：25 V；d)离子源温度：140；e)锥孔反吹气流速：50 L/h；f)脱溶剂气温度：400；g)脱溶剂气流速：700 L/h；h)氩气流速：0.12 mL/min；i)测定方式：选择反应监测模式（SRM），定量离子和定性离子参数见表 2。DB37/T 46862023 4 表2 待测物定量离子和定性离子参数 化合物 母离子 m/z 子离子 m/z 锥孔电压 V 碰撞能量 eV 金刚烷胺 152 93 25 3

11、0 135a 25 17 金刚烷胺内标 167 141a 25 17 a 表示定量离子 标准曲线的建立 8.2 移取金刚烷胺标准工作液（5.14）10 L、20 L、40 L、50 L、100 L于进样瓶中，分别加入100 L内标标准工作液（5.16），用定容液（5.10）定容至1 mL，使金刚烷胺浓度分别为10.0 g/L、20.0 g/L、40.0 g/L、50.0 g/L、100 g/L，现用现配。以各标准工作液金刚烷胺峰面积与内标峰面积的比值为纵坐标，以各标准工作液浓度为横坐标，绘制标准曲线。试样测定 8.3 按照仪器条件（8.1），分别测定金刚烷胺标准工作液（8.2）、试样（7.3）

12、、空白试样（7.4），金刚烷胺标准溶液、空白样品和加标样品的色谱图参见附录A。9 结果计算与表示 定性分析 9.1 在同样测试条件下，阳性样品的保留时间与标准工作液中待测物的保留时间偏差在2.5%以内，在扣除背景后的样品质谱图中，所选择的特征离子均应出现，且检测到的离子的相对丰度，应与浓度相当的校正标准溶液相对丰度一致。定性确证时相对离子丰度的允许偏差应符合表3的要求。表3 定性确证时相对离子丰度的允许偏差 相对离子丰度%允许偏差%50 20 2050 25 1020 30 10 50 定量分析 9.2 按8.1设定仪器条件，待仪器稳定后，根据表2中的定量离子分别对金刚烷胺和内标进行测定，记录

13、保留时间和峰面积，以峰面积比按内标法进行单点或多点校准定量，标准工作液和试样溶液中待测物的响应值均应在仪器检测线性范围内。结果计算 9.3 样品中金刚烷胺的含量按公式（1）计算：=（0）(1)DB37/T 46862023 5 式中：x 样品中金刚烷胺的含量，单位为微克每千克（g/kg）；c 试样溶液中金刚烷胺的浓度，单位为微克每升（g/L）；c0空白试样溶液中金刚烷胺的浓度，单位为微克每升（g/L）；V 试样溶液的定容体积，单位为毫升（mL）；m样品的湿重，单位为克（g）。结果表示 9.4 计算结果扣除空白值，测定结果用两次平行测定的算术平均值表示，保留三位有效数字。10 准确度 精密度 1

14、0.1 本方法批内相对标准偏差和批间相对标准偏差均小于15%。详见表B.1。正确度 10.2 金刚烷胺在添加浓度1.0 g/kg100 g/kg时，回收率为70%120%。详见表B.2。11 质量控制和质量保证 空白试验 11.1 每20个样品或每批次（少于20个样品/批）应至少分析1个空白试验，空白中金刚烷胺的浓度应低于方法检出限。校准 11.2 标准曲线建立应与批样测定同时进行；每20个样品或每批次（少于20个样品/批）应至少分析1个中间点浓度的标准溶液，测定值与该点初始浓度的相对误差应30%；金刚烷胺标准曲线的相关系数r一般应大于0.99。平行样 11.3 每20个样品或每批次（少于20

15、个样品/批）应至少测定一个平行样。平行样测定结果的相对偏差应在10以内。基体加标 11.4 每20个样品或每批次（少于20个样品/批）应至少测定一个基体加标样品，金刚烷胺回收率应在70%120%之间，见附录B。12 废物处置 实验过程中产生的废液和废物应分类收集，集中保管，委托有资质的单位进行处理。DB37/T 46862023 6 附录A （资料性）色谱图 图A.1、图A.2、图A.3给出了金刚烷胺标准溶液色谱图、空白样品色谱图和加标样品色谱图。图A.1 金刚烷胺标准溶液色谱图（10.0 g/L）图A.2 空白样品色谱图 RT:0.00-7.020.00.51.01.52.02.53.03.

16、54.04.55.05.56.06.57.0Time(min)0102030405060708090100Relative Abundance0102030405060708090100Relative Abundance2.935.094.945.396.235.605.924.846.594.666.784.484.113.110.712.732.240.063.300.413.931.180.873.502.122.341.791.28 1.492.915.074.854.735.25 5.425.78 5.896.506.194.626.664.443.004.203.933.163.

17、671.692.610.230.862.301.162.001.590.430.66NL:1.88E4TIC F:+c ESI SRM ms2 152.000 92.999-93.001,134.999-135.001 MS 20201216-13NL:2.11E4TIC F:+c ESI SRM ms2 167.000 140.999-141.001,149.999-150.001 MS 20201216-13RT:0.00-7.020.00.51.01.52.02.53.03.54.04.55.05.56.06.57.0Time(min)0102030405060708090100Rela

18、tive Abundance0102030405060708090100Relative Abundance5.334.745.575.194.846.536.296.025.666.634.566.754.394.253.764.050.350.940.671.003.152.772.051.710.063.722.521.462.322.912.631.925.194.872.492.064.775.36 5.606.055.724.666.37 6.544.364.053.161.433.733.320.290.740.601.25NL:1.33E3TIC F:+c ESI SRM ms

19、2 152.000 92.999-93.001,134.999-135.001 MS 20201216-38NL:4.57E4TIC F:+c ESI SRM ms2 167.000 140.999-141.001,149.999-150.001 MS 20201216-38DB37/T 46862023 7 图A.3 金刚烷胺加标样品色谱图（金刚烷胺添加量为 5.0 g/kg）RT:0.00-7.020.00.51.01.52.02.53.03.54.04.55.05.56.06.57.0Time(min)0102030405060708090100Relative Abundance010

20、2030405060708090100Relative Abundance2.915.315.134.825.765.605.986.27 6.37 6.594.602.996.734.444.193.153.58 3.780.410.672.522.401.322.051.730.311.442.831.120.792.914.97 5.074.874.775.21 5.48 5.74 5.80 6.216.50 6.60 6.684.444.363.993.143.893.340.151.802.792.201.330.781.511.100.570.432.45NL:1.63E4TIC

21、F:+c ESI SRM ms2 152.000 92.999-93.001,134.999-135.001 MS 20201216-31NL:2.25E4TIC F:+c ESI SRM ms2 167.000 140.999-141.001,149.999-150.001 MS 20201216-31DB37/T 46862023 8 附录B （资料性）方法的准确度 方法精密度和正确度汇总数据见表B.1、表B.2。表B.1 空白样品加标方法精密度 序号 名称 加标量 g/kg 实验室内相对标准偏差%实验室间相对标准偏差%重复性限r g/kg 再现性限R g/kg 1 大菱鲆 10 1.96

22、 2.63 1.01 0.85 50 2.59 3.06 4.65 3.68 100 2.50 3.33 9.58 7.28 2 刺参 10 1.77 2.93 1.05 0.94 50 3.97 3.40 4.98 3.69 100 2.85 3.40 8.97 7.98 3 海带 10 3.87 3.34 1.03 0.82 50 2.28 2.15 5.02 3.65 100 2.19 2.89 9.26 8.26 4 南美白对虾 10 2.54 2.71 1.04 0.86 50 4.60 3.31 5.13 4.98 100 3.36 3.05 9.64 8.26 5 四角蛤蜊 10

23、 4.01 4.25 1.06 0.75 50 3.47 6.38 5.26 4.95 100 5.87 6.17 8.79 7.69 DB37/T 46862023 9 表B.2 空白样品加标方法正确度 序号 名称 加标量 g/kg 加标测定平均值 g/kg 加标回收率%加标回收率最终值%1 大菱鲆 10 9.54 95.4 95.41.87 50 48.4 96.7 96.72.51 100 94.1 94.1 94.12.36 2 刺参 10 9.33 93.3 93.31.65 50 46.2 92.5 92.53.67 100 94.6 94.6 94.62.70 3 海带 10 9.38 93.8 93.83.63 50 47.2 94.3 94.32.15 100 93.2 93.2 93.22.04 4 南美白对虾 10 9.39 93.9 93.92.39 50 46.6 93.3 93.34.29 100 95.4 95.4 95.43.20 5 四角蛤蜊 10 8.73 87.3 87.33.50 50 45.3 90.6 90.63.14 100 86.2 86.2 86.25.06