DB37 T 3801-2019 花生品种纯度鉴定技术规程—SSR标记法.pdf
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1、ICS 65.020.01 B 05 DB37 山东省 地方标准 DB 37/T 3801 2019 花生品种纯度鉴定技术规程 SSR 标记法 Protocol of purity identification for peanut variety using SSR markers 2019 - 12 - 24 发布 2020 - 01 - 24 实施 山东省市场监督管理局 发布 DB37/T 3801 2019 I 目 次 前言 . II 1 范围 . 1 2 规范性引用文件 . 1 3 术语和定义 . 1 4 原理 . 2 5 仪器设备 . 2 6 试剂 . 2 7 溶液配制 . 2 8
2、 引物信息 . 2 9 操作步骤 . 2 9.1 样品准备 . 2 9.2 单粒种子的 DNA提取 . 2 9.3 PCR扩增 . 3 9.4 PCR产物检测 . 3 10 判定方法与原则 . 4 10.1 判定方法 . 4 10.2 判定原则 . 4 附录 A(规范性附录) 溶液配制 . 5 附录 B(资料性附录) 推荐引物 . 7 附录 C(资料性附录) 参照品种名单 . 9 DB37/T 3801 2019 II 前 言 本标准按照 GB/T 1.1-2009给出的规则起草。 本标准由山东省农业农村厅提出并组织实施。 本标准由山东省农业标准化委员会归口。 本标准起草单位:山东省 花生研究
3、所。 本标准主要起草人:单世华、闫彩霞、赵小波、李春娟、王娟、苑翠玲、孙全喜、宋秀霞。 DB37/T 3801 2019 1 花生品种纯度鉴定技术规程 -SSR 标记法 1 范围 本标准规定了利用简单重复序列( Simple sequence repeat, SSR)标记法进行花生( Arachishypogaea L.)品种鉴定的原理、仪器设备及试剂、操作步骤、判定方法与原则。 本标准适用于试验样品为种子的花生品种的纯度鉴定。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。 凡是不注日期的引用 文件,其最新版本(包括所有的修改单)
4、适用于本文件。 GB/T 3543.2 农作物种子检验规程 扦样 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 品种纯度 Variety purity 品种在 SSR标 记带型 上 典型一致的程度,反映鉴定品种的特征特性。 3.2 简单重复序列 Simple sequence repeat( SSR) 由几个核苷酸( 1 6个)为重复单位聚集而成的长达几十个至几百个 bp(一般为 100 200)的串联 重复序列,又称微卫星序列或短串联重 复序列,其多态性主要来源于串联数目的不同。 3.3 推荐引物 Recommended primer
5、 根据最少引物区分最多品种的原则,筛选出多态性高,条带清晰、重复性好的一套 SSR引物。 3.4 参照品种 Reference variety 具有推荐 SSR位点上不同等位变异的花生品种,用于辅助确定送检样品的等位变异,校正仪器设备 的系统误差。 DB37/T 3801 2019 2 4 原理 不同花生品种由于遗传组成不同,基因组中重复单位的数目存在差异,造成了品种间的多态性。可 根据其两端的高度保守序列设计特异引物,通过 PCR扩增及电泳检测,从而鉴定花生品种 的 纯度 。 5 仪器设备 高压灭菌锅( 105 136 ,最大工作压力 0.22 MPa);凝胶自动扫描仪( 400百万像素);
6、高 速冷冻离心机(最大离心力不小于 15000 g); PCR扩增仪( 0 100 );紫外分光光度计(波长 190 nm 1100 nm);恒温水浴锅(室温 99 );水平摇床( 0 rpm 230 rpm);微波炉(耐温 120 ); 电子天平(最小显示 0.01 g);电泳槽(样品通量 1.0 mm厚);磁力搅拌器( 0 r/min 2500 r/min, 室温 100 );酸度计( -2.00 20.000 pH);微量移液器( 2 l、 10 l、 100 l、 200 l、 500 l 和 1000 l)。 6 试剂 乙二胺四乙酸钠( EDTA-Na2);三羟基甲基氨基甲烷( Tr
7、is);盐酸( HCl, 36 %);十六烷基三 甲基溴化铵( CTAB);氯化钠( NaCl);硼酸( Borate);丙烯酰胺;甲叉双丙烯酰胺;四甲基乙二胺 ( TEMED);无水乙醇;过硫酸铵( APS);硝酸银 ( AgNO3) ;琼脂糖; 6loading buffer; Gold View 染料; RNAase( 10 ugL-1);酚 :氯仿 :异 戊醇(体积比 25:24:1);异丙醇;四硼酸钠;甲醛; 2Frements Mix; SSR引物( 10 molL-1); 20 bp DNA Ladder;重蒸水或符合 GB/T 6682规定的一级水。除特殊说 明外,所用试剂均为
8、分析纯试剂。 7 溶液配制 相关溶液配制方法见附录 A。 8 引物信息 推荐引物的序列信息与等位变异见附录 B。 9 操作步骤 9.1 样品准备 鉴定样品的分样和保存,应符合 GB/T 3543.2的规定 。 随机取 100粒花生种子,取其父母本材料各 10 份,另取参照品种(见附录 C)各 2粒。水培法种植,至第三片真叶长 出后备用。 9.2 单粒种子的 DNA 提取 9.2.1 DNA 提取 取单株幼苗的根、茎、叶等器官 50 mg,放入 1.5 mL离心管中,液氮研磨。 CTAB法提取基因组 DNA, 加入 100 l 1TE( pH 8.0)溶液溶解 DNA。完全溶解后 每管 加入 5
9、 l RNAase, 37 温育 1 h, 20 保存留用。 DB37/T 3801 2019 3 9.2.2 DNA 浓度和质量检测 测定 DNA溶 液的 OD260/OD280值,确保在 1.7 2.0范围内。测定其 OD260的吸光度,以 1个 OD260值相当于 50 mgL-1 DNA浓度来计算纯化 DNA的浓度。用 0.8 %琼脂糖凝胶电 泳检测 DNA完整性, Gold View染料进行染 色。稀释至工作浓度为 30 ngL-1,置于 4 备用。 9.3 PCR 扩增 9.3.1 反应体系 总体系为 10 L,包括 1.5 L DNA, 1.9 L水, 5 L 2Frements
10、 Mix, 0.8 L F/R引物,混匀。 9.3.2 反应程序 95 预变性 3 min; 95 变性 45 s, 55 退火 45 s, 72 延伸 45 s,进行 35个循环; 72 延伸 5 min; 4 保存备用。 9.4 PCR 产物检测 9.4.1 非变性聚丙烯酰胺凝胶制备 9.4.1.1 玻璃板组装 清洗玻璃板和 52齿梳,晾干;用 95 %乙醇擦凹板和平板,两板间插入 1.0 mm厚的边条,对齐,夹紧, 凹板朝上,水平放置,用水平仪调平。 9.4.1.2 灌胶 在小烧杯中加入 7.5 mL 6 %聚丙烯酰胺凝胶溶液、 37 mL水,然后加 500 L 10 %APS及 20
11、L TEMED, 轻轻摇匀,防止产生气泡;迅速灌胶,将梳子齿朝外,轻轻插入胶中,至凹板玻璃面约 0.8 cm处,静置 1 h。 9.4.2 电 泳检测 9.4.2.1 玻璃板 组 装 将制好的胶板固定于垂直电泳槽上,凹板向内。上下槽中各加入 1TBE缓冲液,至下槽液面约为槽 高的 1/3,上槽液面高于凹板玻璃面约 1 cm。 9.4.2.2 清洗胶孔 拔去梳子,冲洗胶孔,赶走底层气泡和杂质。 9.4.2.3 上样 在 10 L PCR产物中加入 2 L 6loading buffer,用微量移液器上样,每孔加入 2 L PCR扩增产 物;同时,在两侧样品孔中加入 20 bp DNA Ladde
12、r分子量标记。 9.4.2.4 电泳 电压为 200 V,根据指示剂位置调整时间,至青蓝色的二甲苯青指示剂到达胶板的 2/3处,停止电泳, 电泳时间约 2 h。 9.4.3 银染显色 DB37/T 3801 2019 4 9.4.3.1 水洗 电泳结束后,分开两块玻璃板取出凝胶,用水漂洗 10 s 20 s,重复 2次。 9.4.3.2 银染 转移至 400 mL 0.1 % AgNO3溶液 中,在摇床上轻摇 10 min。 9.4.3.3 水洗 从染色液中取出,在水中快速漂洗 2次,时长 8 s 10 s。 9.4.3.4 显影 转移至 400 mL显色液中,在摇床上轻摇至带纹清晰 , 用水
13、冲洗至溶液澄清。 9.4.3.5 成像 将凝胶置于凝胶成像工作台,选用透射 UV光,调节 focus至图像最清晰,保存。 10 判定方法与原则 10.1 判定方法 每个 SSR位点的等位变异采用扩增片段长度的形式表示,利用凝胶分析软件 Quantity one读取条带。 比较每份样品在每个位点的等位变异,统计带型。用具有本品种特异带型的种子粒数占检测样品种子粒 数的百分率表示纯度,计算公式如式 1: % = 1 0 0 %具 有 本 品 种 特 异 带 型 的 种 子 粒 数纯 度 检 测 样 品 种 子 粒 数 . (1) 10.2 判定原则 如差异位点数 =0,则说明该品种纯度为 100
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