DB51 T 818-2008 《马铃薯脱毒种薯生产技术规程》.pdf

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1、 B 23 ICS 65.020.20 DB51四川省地方标准DB51/T 8182008马铃薯脱毒种薯生产技术规程 Technical Procedures of Virus-free Seed Potato Production 2008-6-6 发布 2008-9-1 实施四川省质量技术监督局发布DB51/T 8182008 I 目 次 前言- 1.范围-1 2.规范性引用文件-1 3.术语和定义-1 4.脱毒组培苗快繁-2 5.原原种生产-3 6.原种生产-4 7.脱毒种薯繁育体系（见附录 G）-4 附录 A MS 培养基贮备液的配制-5 附录 B（规范性附录） 酶联免疫吸附试验法 -

2、6 附录 C（规范性附录） 往复双向聚丙烯酰胺凝胶电泳法-8 附录 D 种薯切块操作程序 -12 附录 E 主要病虫害防治-12 附录 F（规范性附录） 马铃薯主要虫害症状与防治方法-13 附录 G 脱毒种薯繁育体系 -15 DB51/T 8182008 II 前 言 本标准附录B 、附录C 、附录F 为规范性附录。 本标准由四川省农业厅提出并归口。 本标准由四川省质量技术监督局批准。 本标准由四川省农业技术推广总站、成都市农林科学院作物研究所负责起草。 本标准主要起草人：陈涛、章锐、周孝强、梁南山、何卫等。 DB51/T 8182008 1 马铃薯脱毒种薯生产技术规程 1 范围 本规程规定了

3、马铃薯脱毒苗的培育、繁殖，各级脱毒种薯的生产、扩繁栽培和各级脱毒种薯的检验、收获、贮藏等技术操作规程。 本规程适用于四川省马铃薯脱毒种薯生产。 2 规范性引用文件 下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是注日期的引用文件，其随后所有的修改单（不包括勘误的内容）或修订版均不适用于本标准，然而，鼓励根据本标准达成协议的各方研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件，其最新版本适用于本标准。 GB 3243-82 马铃薯种薯生产技术操作规程 GB 7331-2003 马铃薯种薯产地检疫规程 GB 18133-2000 马铃薯脱毒种薯 3 术语和定义 下列术语和定义适用于

4、本标准。 3.1 脱毒组培苗（Virus-free in-vitro plantlets ） 简称脱毒苗，是应用茎尖组织培养技术获得的、经检测确认不带马铃薯卷叶病毒（PLRV ）、马铃薯Y 病毒（PVY）、马铃薯 A 病毒（PVA ）、马铃薯 X 病毒（PVX）、马铃薯 M 病毒（PVM ）或马铃薯 S病毒（PVS ）等病毒和马铃薯纺锤块茎类病毒（PSTVd ）的再生试管苗，经过组织培养方法大量扩繁的且不带上述病毒和类病毒用于生产原原种的试管苗。 3.2 试管薯 (In-vitro micro tuber) 脱毒苗经诱导培养，直接在试管(或瓶)内结的小薯。 3.3 扦插苗 (Trans-pla

5、nts) 脱毒苗切段在网室扦插成活或马铃薯试管薯直播于网室出苗后，剪取其主茎及侧枝顶端扦插成活的苗。 3.4 脱毒种薯 (Virus-free seed potato) 从繁殖脱毒苗开始，经逐代繁殖增加种薯数量的种薯生产体系生产出来的各级种薯。 脱毒种薯分为原原种、原种、生产用种薯。 3.4.1 原原种 (Pre-basic seed) （脱毒小薯） 利用组培苗或系选苗（clonal selection ）在防虫网室和温室条件下生产出来的、不带马铃薯病毒、类病毒及其他马铃薯病虫害的、质量在 1 g10 g 之间的小薯。 3.4.2 原种 (Basic seed) 用原原种作种薯，在良好隔离条件

6、下生产的符合质量标准的种薯。 3.4.3 生产用种薯 (Certified seed) 用原种或其加代繁殖一代后作种薯，在隔离条件下生产出的符合一级种薯质量标准的种薯。 3.5 病毒病株允许率 (Maximum virus-infected plant percentage allowed) 脱毒种薯繁殖田中病毒病株的允许百分率。 3.6 细菌病株允许率 (Maximum bacterial- infected plant percentage allowed) DB51/T 8182008 2 脱毒种薯繁殖田中细菌病株的允许百分率。 3.7 真菌病株及其它病株允许率 (Maximum fun

7、gal or other pathogen infected plant percentage allowed) 脱毒种薯繁殖田中真菌病株和其它病株的允许百分率 3.8 混杂植株允许率 (Maximum off-type plant percentage allowed) 脱毒种薯繁殖田中混杂的其它马铃薯品种植株的允许百分率。 3.9 有缺陷薯 (Defect tuber) 指畸形、次生、龟裂、虫害、冻伤、黑心和机械损伤的薯块。 3.10 隔离栽培 (Isolated planting) 指在与病虫害相对隔离条件下进行的栽培方式。 3.11 扩繁栽培 (Multiplication plant

8、ing) 主要指 l g 以上脱毒原原种直接种入大田，采取调节播种期、喷药防虫、剔除病、杂株等综合保护措施，生产脱毒原种的种植方式。 4 脱毒组培苗快繁 4.1 脱毒组培苗的培育 4.1.1 选材： 应选用生产上主栽的、或具有某种特性( 如抗马铃薯癌肿病) 优良品种块茎的休眠芽或刚出土幼苗的茎尖、或田间成株上的叶芽作茎尖剥离材料。 4.1.2 培养基的制备：在每l000 mlMS 培养基( 见附录A) 中加 GA30.2 mg0.3 mg、 6-BA0.1 mg0.2 mg、NAA0.01 mg0.05 mg、泛酸钙 1.5 mg2.5 mg，分装入管( 或瓶) 。 4.1.3 灭菌：在 0.

9、15 Mpacm2压力下灭菌 15 min20 min ，冷却备用。 4.1.4 茎尖剥离接种：将入选材料放入纱布袋，用自来水冲洗 1 h 后，在无菌条件下，放入 70 75酒精中浸 2 s3 s ，再用 0.1 升汞液消毒 3 min6 min( 或用 3 次氯酸钠液加 24 滴吐温振荡消毒 15 min20 min) ，取出用无菌水冲洗 3 5 次，用灭菌滤纸吸干材料表面水分，在体视解剖镜下用手术刀等工具轻、准、快速地剥去幼叶，切取带 l2 个叶原基(0.1 mm 0.4 mm 大小) 的生长点，迅速接入装有茎尖分化培养基的试管或培养瓶中，每管（瓶）放 1 个生长点。注明品种，茎尖号，接种

10、期。 4.1.5 培养条件： 日温 25 ，夜温 15 ，光照时数 l 2 hd 14 h d，光照强度 2 000 3 000 1x 条件下培养。 4.2 病毒检测 本单位自检，然后送国家法定植检部门复检认定。 用于检测的数量不低于总数的 10 %。根据检测结果出具检验结果报告单，如果脱毒苗没有检出PLRV、PVY 、PVA、PVX、PVM 或 PVS 和 PSTVd 等病毒和类病毒，则应批准进行组培苗生产。不合格的脱毒苗不得用于组培快繁。 4.2.1 检测方法： 马铃薯 PLRV、 PVY、 PVA、 PVX、 PVM 或 PVS 等病毒，用酶联免疫吸附（ELISA）法检测（见附录 B），

11、无阳性反应再用指示植物鉴定。纺锤块茎类病毒(PSTVd)用往复双向聚丙烯酰胺凝胶电泳法（R-PAGE ）检测（见附录 C），鉴定筛选出不带 PLRV、PVY 、PVA 、PVX 、PVM 、PVS和 PSTVd 的脱毒苗。 4.2.2 脱毒苗复检：继代扩繁中选留的脱毒苗，每年至少作一次病毒复检。 4.3 脱毒苗组培快繁 4.3.1 脱毒组培苗来源：经 4.2.1 检测，脱除了所列病毒的组培苗。 4.3.2 培养基：用 MS 培养基。灭菌同 5.1.3。 4.3.3 快繁： 将脱毒苗剪切成 1 cm 左右，带一叶一芽的茎段接种于继代培养基上，每瓶培养基接种 1015 个茎段，待茎段长成高 10

12、cm 左右小苗（培养 15 d 30 d），进行切段转接，如此，反复继代培养繁殖。 4.3.4 培养条件：同 4.1.5 DB51/T 8182008 3 4.4 脱毒组培苗的保存 4.4.1 培养基：Ms+B95 mg/l10 mg/l+ 甘露醇 40 mg/l+琼脂 7000 mg/l+40000 mg/l。pH5.8. 每瓶装培养基 45 ml70 ml，灭菌同 4.1.3。 4.4.2 接种：选继代培养中生长健壮的组培苗，进行切段，每瓶接种 10 个茎段。 4.4.3 培养：置弱光（1000 lx）和较低温度（5 10 ）下保存。3 6 个月转接一次。3 y 4 y 更新一次用于快繁的

13、脱毒组培苗。 5 原原种生产 用脱毒组培苗或试管薯在60目以上网室内隔离栽培。 5.1 隔离网室的建立 5.1.1 环境条件：选择四周无高大建筑物，水源、电源、交通便利，通风透光的地方建网室。 5.1.2 建设要求： 隔离网室用热镀锌钢管作支撑，高 3 m 3.5 m，宽 6 m10 m 。网室内地表及网室四周 2 m 内，应建成水泥地面，网室周围 10 m 范围内不能有其它可能成为马铃薯病虫害侵染源或可能成为蚜虫寄主的植物。严防网室内地表积水和网室外水流入。用于隔离的的网纱孔径要达到 6080 目。 5.2 扦插 (或播种) 前准备 5.2.1 炼苗：将长到 78 片叶，苗龄 30 d 左右

14、的组培苗拔去瓶塞，炼苗 2 d3 d。 5.2.2 基质： 蛭石、草炭、珍珠岩或细砂均可作基质。生产原原种以蛭石、珍珠岩混合基质为好，混合比例 2：1，将混合基质装入规格适宜的育苗盘，基质装填前应充分吸水。每茬薯收后基质必须严格蒸煮消毒，一般反复使用 3 y4 y。 5.2.3 消毒： 工作人员进出棚必须更换鞋和工作服，并用肥皂洗净手。 扦插（或播种）工具每次使用前均应蒸煮消毒，不能蒸煮的用肥皂水认真清洗后用 75 酒精浸泡消毒。 5.2.4 切段：将经炼苗的脱毒试管苗用镊子轻轻取出，用剪刀剪为 3 cm 4 cm 长的茎段，供扦插用。 5.2.5 剪尖： 扦插的脱毒苗高 5 cm 7 cm、

15、直播薯苗高 8 cm 10 cm，侧枝长5 cm6 cm 时，剪取 3 cm4 cm 长的主茎顶端或侧枝尖端（每株只剪 34 次），供扦插用。 5.3 切段和扦插苗处理 将切段和扦插苗放入20 ppmNAA+1 克露+1 威力特的混合液中浸泡10 min15 min后取出备插。 5.4 试管薯播种与剪尖苗扦插 5.4.1 选薯：生产原原种用的试管薯，必须是通过休眠、萌芽整齐的薯。 5.4.2 密度：生产原原种的组培苗切段扦插株行距为2.5 cm2.5 cm；扦插苗为 3.33.3 cm。 5.4.3 放盘：将插、播好的育苗盘规范整齐放置于网室，分厢放置，每厢 24 30 盘，每厢间隔 80 c

16、m。 5.5 管理 5.5.1 拱棚盖膜： 脱毒苗（或薯）插（播）好后，轻细均匀喷水，使基质充分饱和吸水，及时拱棚盖膜，小拱棚内相对湿度保持在 90 95 。 5.5.2 施肥： 从小苗生根成活（插后 7 d d）及时撤拱棚到收薯前 10 d，根据苗情喷施 0.2 0.3 N:P:K2:1:3 的营养液4 6 次，每厢（3.5 m2）喷 7500 ml（出拱棚后喷第一次肥浓度应减半，每7 d10 d喷一次）。 5.5.3 浇水：勤浇、细浇、少浇，保持基质湿润，持水量 50 60 ，收前7 d 10 d 停止浇水。 5.5.4 病虫害防治：防治对象、时期、方法按附录 D执行。发现病株连同薯块拔除

17、，带出网室外销毁。 5.6 收获、包装贮存 5.6.1 原原种收获：早熟种在插后 60 d 65 d，中早熟种65 d 70 d，晚熟种在插后75 d 80 d 即可收获。收获时避免机械损伤和品种混杂。收后摊晾 4 d 7 d，剔除烂薯、病薯，伤薯及杂物。 5.6.2 分级标准：按种薯个体重量大小依次分为 5 g 以上、3 g5 g、1 g3 g 三个等级。 5.6.3 包装：包装采用尼龙网袋包装，每袋 2000 粒左右，按等级和收获期分品种装袋，作好标记，双标签，袋内袋外各一。 DB51/T 8182008 4 5.6.4 贮存方式： 根据当地气候，种薯生产量、收期、设备条件及用种季节，将种

18、薯置于常温或低温室(平摊或上架)内避光贮存。 5.6.5 贮存条件：低温贮存5 8 。相对湿度80 90 。 5.6.6 贮存 (包装) 量：装袋不超过网袋体积的三分之二，平堆厚度为 30 cm 左右。 6 原种生产 6.1 选地：选择海拔 1500 m 以上的高寒少蚜山区或中低海拔地区自然隔离条件良好(500 m 内无茄科、十字花科作物，无商品薯种植) 土质疏松、肥力中上、排灌方便两年内未种植过茄科和十字花科作物向阳的地块（最好是砂壤土）。 6.2 种薯准备： 选用通过休眠、芽短壮的原原种做种薯。播种前2个月，将在低温室或专用库内贮藏的原原种薯取出，剔除病薯，烂薯后，置于20 3O ，有散射

19、光的室内，让其自然通过休眠发芽，促芽变绿。10 g以上的薯可切块播种，每块带2个以上芽眼(见附录D)。 6.3 播种 6.3.1 双行高厢垄作：行距60 cm，株距20 cm。5555 株/667 m2株。 6.3.2 底肥：腐熟农家肥1500 kg 2000 kg/667m2，尿素5 kg，过磷酸钙20 kg，硫酸钾l0 kg。 6.3.3 播种期：春播在 2 月3 月，秋播在 7 月9 月。 6.4 田间管理 6.4.1 追肥、中耕、培土： 齐苗后及时追施尿素 5 kg667 ，结合第一次中耕除草进行。78片叶时第二次中耕，培土成低垄。现蕾开花期第三次中耕，培土成高垄。第二、三次培土前喷施

20、KH 2PO4。每次200 g667 。 6.4.2 去杂去劣 现蕾至盛花期，两次拔除混杂植株，异常株，包括地下块茎。 6.4.3 病虫害防治 防病：病害防治主要防治早、晚疫病、清枯病，发现中心病株及时拔除带出田外处理。并喷施杀菌剂保护，每 7 10d 一次（见附录E、F）。 严格防蚜：齐苗后选用不同杀虫剂，每 7 d 10 d 防治蚜虫一次，连续3 4 次（见附录E、F）。 6.5 收获、包装、贮存：按 5.6 有关规定执行。 7 脱毒种薯繁育体系（见附录 G） DB51/T 8182008 5 附 录 A MS 培养基贮备液的配制 贮备液 成 分 用量（mg/l) 每升培养基取用量(ml)

21、 A 硝酸铵(NH 4NO3) 硝酸钾(KNO 3) 磷酸二氢钾(KH 2PO4) 硫酸镁(MgSO 47H 2O) 氯化钙(CaC l22H 2O) 33000 38000 3400 7400 8800 50 B 硫酸亚铁(FeSO 47H 2O) 乙二胺四乙酸二钠(Na 2EDTA) 5570 7450 5 C 碘化钾(KI) 钼酸钠(Na 2MoO42H 2O) 硫酸铜(CuSO 45H 2O) 氯化钴(CoCl 26H 2O) 硫酸锰(MnSO 44H 2O) 硫酸锌(ZnSO 47H 2O) 硼酸(H 3BO3) 166 50 5 5 4460 1720 1240 5 D 盐酸硫胺素

22、(VB 1) 盐酸吡哆素(VB 6) 甘氨酸 烟酸 肌醇 20 100 400 100 20000 5 E 蔗糖 琼脂 30000 7 注：在配制贮备液A时，最后加氯化钙；在配制贮备液B时，分别溶解FeSO47H2O和Na2EDTA在各自的450 ml蒸馏水中，适当加热并不停搅拌。然后将两种溶液混合在一起，PH值到5.5，最后加蒸馏水定容到1000 ml。培养基PH值5.8。 DB51/T 8182008 6 附 录 B （规范性附录） 酶联免疫吸附试验法 应用双抗体夹心法 （Double Antibody Sandwich Method） 检测马铃薯脱毒苗是否带有PVX、 PVY、PVS、P

23、LRV等主要马铃薯病毒。 B.1 仪器和设备 B.1.1 聚乙烯微量滴定板： 有40孔和96孔两种规格，均可使用。 B.1.2 微量可调进样器： 需2-10 L、10-50 L和10-200 L三种规格，并附相应规格的塑料头。 B.1.3 冰箱。 B.1.4 保温箱： 温度设置为37。 B.1.5 直径8cm的瓷研钵及钵锤。 B.1.6 酶联免疫检测仪： 检测辣根过氧化物酶（Horseradish P eroxidase. HRP）标记的酶标记抗体用490nm，波长检测，碱性磷酸（ Alkaline Phosphatase AKP）标记的酶标抗体用 405nm波长检测。 B.2 应用的化学试剂

24、 所用为分析纯级规格、用水为蒸馏水。 B.2.1 抗体免疫球蛋白（r-glo bulin）和酶标记抗体（Coniugate） ： 从某一马铃薯病毒抗血清提取的免疫球蛋白，将其浓度调为1 mg/ml，做为包被 微量滴定板的抗体。用辣根过氧化物酶标记的某一病毒的免疫球蛋白的酶标记抗体、浓度为1:1000以上，贮藏条件为4 。 B.2.2 碳酸盐包被缓冲液： pH9.6:1.59 gNaCO3（碳酸钠） ，2.93 gNaHCO 3（碳酸氢钠）加水至1升。 B.2.3 PBS一TWeen20缓冲液，pH 7.4:8 gNaCl（氯化钠）0.2 gkH 2PO4（磷酸二氢钾） 、2.2gNa 2HPO

25、47H 2O（磷酸氢二钠）或2.9 gNa 2HPO412H 2O，0.2 gKCl（氯化钾）加水至1升，然后加0.5 ml Tween-20，洗涤微量滴定板用。 B.2.4 样品缓冲液： 取PBSTween-20缓冲液100 mL，加聚乙烯吡咯烧酮（PVP）2 g。 B.2.5 底物缓冲液： 取0.2 M Na 2HPO412H 2O溶液25.7mL加0.1 M柠檬酸溶液24.3 mL加水50 mL，pH调至5.0（现用现配）临用前加磷苯二胺40 mg，30 H 2O， （过氧化氢）0.15 ml混匀，避光放置，应为白色或微黄色溶液。 B.2.6 终止液： 为0.2 M硫酸溶液，用1体积浓硫

26、酸加9份水。 B.3 操作步骤 B.3.1 包被微量滴定板： 把免疫球蛋白用包被缓冲液按1:100 0稀释，用微量进样器向微量滴定板的每一样品孔内加入稀释的免疫球蛋白200L。在37条件孵育1h。 （或在4 条件下过夜） 。 B.3.2 洗涤包被的微量滴定板： 甩掉微量滴定板中的免疫球蛋白稀释液，再在吸水纸上敲打微量滴定板，除尽残留溶液。向微量滴定板的样品孔中加满洗涤缓冲液，停留30min，甩掉洗涤缓冲液，共洗涤3次，以除尽未吸附的免疫球蛋白。 B.3.3 加被检测的样品 B.3.3.1 取样： 在无菌条件下，从瓶苗上剪下长2 cm茎 段，放在小研钵内，把取样的试管苗放回原瓶内，封好瓶口，把样

27、品编好号，以便检测结果决定取舍。 B.3.3.2 向小研钵内加样品缓冲液，加入液量依每个样品上样的孔数而定，例如每个样品准备上样一个样品孔时，可加入0.4 mL样品缓冲液，研磨后可得200 L清液，够上一个样品孔用。 DB51/T 8182008 7 B.3.3.3 加入检测样品： 向编好号、洗涤完的微量滴定板的样品孔内，按样品编号、逐个加入提取的样品液200L，每一块微量滴定板上，可设两个阳性对照孔。两个阴性对照孔和两个空白对照孔。 B.3.3.4 把加完样品的微量滴定板，在37 条件下孵育4-6 h，或在40条件下过液，然后按A3.2洗涤微量滴定板。 B.3.3.5 加酶标记抗体： 把酶标

28、记抗体用样品缓冲液按1:1000稀释，向每个样品孔中加入200 L稀释的酶标记抗体。 B.3.3.6 洗涤微量滴定板： 按3:2方法洗涤微量滴定板，以除掉未结合的酶标记抗体。 B.3.3.7 加底物： 使用国产酶标检测仪器测定光密度时，向每一样品孔内加底物缓冲液100L。如果用进口Bio-Rad 550型等进口酶标检测仪时则可 加入200L底物，当观察到阴性对照孔与阳性对照孔显现的颜色可以明确区分时（辣根过氧化物酶标记的酶标记抗体显现桔红色，碱性磷酸酶标记的抗体显现鲜黄色） ；或未设对照样品孔的微量滴定板的一些样品孔之间显现的颜色可以明确区分时，每孔加入30L终止液，如加入200 L底物缓冲液

29、时则加入50 L终止液。 （碱性磷酸酶标记的抗体一般可不加终止液）。 B.4 结果判定 B.4.1 目测观察： 显现颜色的深浅与病毒相对浓度呈正比。显现白色为阴性反应，记录为“” ；显现淡桔红色即为阳性反应，记录为“”，依颜色的逐渐加深记录为“”和“”。 B.4.2 用酶联检测仪测定光密度值： 样品孔的光密度值大于阴性对照孔光密度值的2倍、即判定为阳性反应， （阴性对照孔的光密度值应0.1） 。 B.5 计算结果： l100 m n 式中； l马铃薯病毒检出率 m呈阳性反应样品数量 n实验室样品数量 结果用两次重复的算术平均值表示，脱毒苗病毒检出率修约间隔为1，并标明经舍进或未舍未进。 DB5

30、1/T 8182008 8 附 录 C （规范性附录） 往复双向聚丙烯酰胺凝胶电泳法 （Two-dimensional Polyacrylamide Gel Electrophoresis） 应用本法检测脱毒苗是否感染有马铃薯纺缍块茎类病毒。 C.1 范围 规定了马铃薯纺缍块茎类病毒（PSTVd）的检测方法。 适于检测马铃薯纺缍块茎类病毒。 C.2 引用标准 GB 18133-2000 马铃薯脱毒种薯 NY/T 401-2000 脱毒马铃薯种薯（苗）病毒检测技术规程（检测方法引用NY/T 401-2000） C.3 原理 类病毒分子在自然和变性条件下电泳迁移率不同，变性所引起类病毒核酸的环状结

31、构使其电泳迁移率明显慢于桢分子量的其它线性RNA分子，因而第二向电泳中类病毒核酸的环状结构明显滞后，据此，结合可靠灵敏的银染色技术测定类病毒。 C.4 试剂 本方法所用化学试剂为分析纯极规格，用水为蒸馏水，个别要求无菌水。 C.4.1 盐酸溶液 （HCl）=1+4 量取盐酸10 mL，加入40 mL水，混匀。 C.4.2 核酸提取缓冲液 （CH 2OH） 3CNH3=12.11 gL-1，（C 10H14N2O8Na22H 2O）=3.72 gL-1，（NaCl）=5.88 gL-1 称取三羟甲基氨基甲烷（(CH 2OH)3CNH3）12.11 g，乙二胺四乙酸二钠（C 10H14N2O8Na

32、22H 2O）3.72 g，氯化钠（NaCl）5.88 g溶于900 mL水中，用盐酸溶液（4.1）通过酸度计（5.1）调pH值为9.09.5，定容至1000mL。 C.4.3 TAE缓冲液贮液 （CH 2OH） 3CNH3=48.46 gL-1，（CH 3COONa）=16.40 gL-1，（C 10H14N2O8Na22H 2O）=7.44 gL-1，称取三羟甲基氨基甲烷（(CH 2OH)3CNH3）48.46 g，无水乙酸钠（CH 3COONa）16.40g，乙二胺四乙酸二钠（C 10H14N2O8Na22H 2O）7.44 g，溶于900 mL水中，用冰乙酸通过酸度计（5.4）调pH值

33、为8.1，定容至1000 mL。 C.4.4 TAE缓冲液工作液 （(CH 2OH)3CNHa3）=4.85 gL-1，（CH 3COONa）=1.64 gL-1，（C 10H14N2O8Na22H 2O ）=0.74 gL-1量取TAE缓冲液贮液（4.3）200 mL，加水1800 mL。 C.4.5 TBE电泳缓冲液贮液 （(CH 2OH)3CNH3）=107.8 gL-1，（H 3BO3）=55.0 gL-1，（C 10H14N2O8Na22H 2O）=9.3 gL-1 称取三羟甲基氨基甲烷（(CH 2OH)3CNH3）107.8 g ，硼酸（H 3BO3）55.0 g，乙二胺四乙酸二钠

34、（C 10H14N2O8Na22H 2O）9.3 g溶于少量水中，定容至1 000 mL。 C.4.6 TBE电泳缓冲液工作液 （(CH 2OH)3CNH3）=10.78 gL-1，（H 3BO3）=5.50 gL-1，（C 10H14N2O8Na22H 2O）=0.93gL-1量取变性电泳缓冲液贮液（4.5）200 mL，加水1800 mL。 C.4.7 低盐溶液 （NaCl）=11.7 gL-1称取9.35g氧化钠（NaCl）溶于800 mLTAE缓冲液工作液（4.4）中，0.1MPa灭菌30 min。 C.4.8 高盐溶液 （NaCl）=87.75 gL-1 称取氧化钠（NaCl）70.

35、13 g ，溶于800 mL TAE 缓冲液工作液（4.4）中，0.1 MPa灭菌30 min。 。 DB51/T 8182008 9 C.4.9 丙烯酰胺贮液 （CH2CHCONH2）=290.0gL-1，（CH2CHCONH2）2CH2=10gL-1 称取丙烯酰胺（CH2CHCONH2）29.0g，甲叉双丙烯酰胺（(CH2 CHCONH2)2CH2）1g， 37溶于100 mL水 中。冰箱冷藏室（5.13）保存。 C.4.10 过硫酸铵溶液 （(NH 2)2S208）=222.2gL-1 称取过硫酸铵（NH 2） 2S208）1.0g，溶于4.5 mL灭菌水中，冰箱冷藏室（5.13）保存。

36、 C.4.11 四甲基乙二胺（CH 3N（CH 2） 2NCH3）。 C.4.12 核酸固定液 （CH 3CH2OH）10，（CH 3COOH）=0.5 量取.50 mL 95乙醇（CH 3CH2OH） ；2.5 mL冰乙酸（CH 3COOH）加水定容至500 mL。 C.4.13 染色液 （AgNO 3）=2.0gL-1 称取1.0g硝酸银（AgNO 3）溶于水，定容至500 mL。 C.4.14 核酸显影液 （NaOH）=16gL-1，（HCHO）0.4 称取8g 氢氧化钠（NaOH） ，溶于500 mL水中，用前加2mL甲醛（HCHO） ，现用现配。 C.4.15 增色液 （Ha2CO3

37、）=7.5gL-1取3g 碳酸钠（Ha2CO3） ，溶于400 mL水中。 C.4.16 指示剂 （ C25H27N2NaO7S2）=1.0gL-1，（C 19H10O5Br4S）=1.0gL-1，（C 12H22O11）0.4gL-1称取100 mg二甲苯兰（C 25H27N2NaO7S2） 、100 mg溴酚兰 （C 19H10O5Br4S） 、40 g蔗糖（C 12H22O11） ，溶于10 mL TBE电泳缓冲液贮液（4.5）中，然后加入90 mL水，混匀。 =C.4.17 琼脂糖溶液 称取1 g琼脂糖，量取10 mL TBE电泳缓冲液贮液（4.5） ，加入90 mL灭菌水中，加热溶解

38、。 C.4.18 聚丙烯酰胺凝胶 量取丙烯酰胺贮液（4.9）8.3 mL，TBE电泳缓冲液贮液（4.5）5 mL，四甲基乙二胺（4.11）5060L，溶解并用无菌水定容至50 mL混匀，灌胶前加过硫酸胺溶液（4.10）450L，混匀，立即灌胶，此液应现配现用。 C.5 仪器设备 C.5.1 DYY-6B电泳仪和DYY-28C电泳槽。 C.5.2 TGL-16G高速台式离心机 最高转速：21000 r/min。 C.5.3 Sigma 3K30高速冷冻离心机 控制范围： （-20 40），最大转速：30000r/min。 C.5.4 PHS-3C酸度计 量程：pH（0 14） ，精度：0.01p

39、H。 C.5.5 DL-101-2S电热鼓风干燥箱 量程：RT+20 300，精度：1。 C.5.6 移液器 20 L，40 L，200 L，1 000 L。 C.5.7 752w 紫外分光光度计 量程220 800nm，精度：2nm C.5.8 一次性注射器 5 mL，50 mL。 C.5.9 量筒 50 mL，100 mL，200 mL，2 000 mL。 C.5.10 容量瓶 50 mL，100 mL，500 mL。 C.5.11 吸量管 5 mL，10 mL，20 mL。 C.5.12 MDF-U332低温保存箱。 C.5.13 BCD-261冰箱。 C.6 试剂制备 C.6.1 样品

40、粗提液制备 取样品（脱毒苗、薯块的薯肉）3 g左右放入干 燥的研钵中，加入液氮进行研磨。研碎后向小研钵中加入10 mL核酸提取缓冲液（4.2），SBS粉（十二烷基磺酸钠）约0.1g、皂土约0.1 g，再研磨6 10 min。向小研钵中加入120L-巯基乙醇，再研磨6 10 min。加入11 mL苯酚。研磨6 10 min。加入12mL氯仿，再研磨6 10min。将研好的样倒入50 mL干净的离心管中，用氯仿平衡。高速冷冻离心机（5.3）4 、900010000r/ min离心20 25min，用移液器（5.6），将上层水相（样品粗提液）转移到另一清洁的离心管中，可现用，也可冻存（-20）。 D

41、B51/T 8182008 10 C.6.2 核酸纯化 将6.1中有上清液的离心管拿出备用。在100 mL无菌水中加入一定量的可溶性纤维素，混匀备用。 装柱：用带孔的橡皮塞和细纱装入5 mL的一次性注射器（ 5.8），向注射器中加纤维素液，直至纤维素沉积至3.5 mL左右处，期间要不断加入无菌水。 上样：将上清液缓慢加入到柱中，直到加完为 止。用低盐溶液（4.7）洗脱，每次加入2 mL，共20次约40 mL左右。待柱中低盐将流尽时，加入1 mL高盐溶液（4.8）进行清洗，然后将50mL干净离心管置于柱下分4次（每次2 mL）加入8 mL高盐溶液（4.8），待高盐洗液全部流入50 mL离心管为止

42、。向装有高盐洗液的50mL离心管中加入冻存的95乙醇，加入量是离心管中液体的3倍左右，摇匀，放入低温保存箱（5.12）-20 以下冷冻，时间不得少于2 h。 C.6.3 总核酸提取 将冻存的离心管拿出来， 用95 的乙醇平衡， 然后用高速冷冻离心机 （5.3） 1 4 、 10000 r/min离心20 min，倒掉上清液，将离心管倒立放在 铺好的干净滤纸上。待水分吸干后，向离心管中加75 的乙醇，加入量是离心管容积的1/3，进行清洗，时间为10 min 20 min。用75 乙醇平衡，用高速冷冻离心机 （5.3）1 4 、10000 r/min离心1 0min，倒掉乙醇，将剩余乙醇全部挥发掉

43、。 C.6.4 试样获得 将TAE缓冲液工作液（4.4） 200 L加入到盛有总核酸的50 mL 离心管中进行溶解，然后用移液器（5.6）将其移到1.5 mL干净的离心管中，再次用200 L TAE缓冲液工作液 （4.4）进行清洗，将清洗液全部转移到1.5 mL离心管中。 C.7 测定步骤 C.7.1 试料 将盛有试样（6.4）的离心管在漩涡混合器上振混匀，然后用高速台式离心机（5.2）4 000 r/min离心3 min 5 min。 然后量取15 L样品，用3 000 L TAE缓冲液工作液（4.4）稀释，以不加样品的TAE缓冲液工作液（4.4）为空白对照，紫外分光光度计（5.7）260 nm处，测定各试样光吸收值。 （RNA）/gL-1= =8.04 A260 A260201一般电泳加样试料的RNA质量（m）要求相对一致，据V = ，计算试料体积（V） C.7.2 测定 C.7.2.1 制板 取洁净电泳槽，琼脂糖溶液（4.17）封底，注入聚丙烯酰胺凝胶（4.18），反加样梳插入做成泳道。 C.7.2.2 加样 按7.1中计算试料体积，混入指示剂（4.16）和TBE缓冲工作液（4.6） ，总量为40 L60 L。 C.7.2.3 正向电泳 加入TBE电泳缓冲液工作液（4.6） ，进行从负极到正极电泳，电泳仪（5.1）电压调到150 V。当示踪染料二甲苯兰迁移到距凝胶底部 1