DB33 T 537-2005 动物组织中莱克多巴胺的测定.doc

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1、 ICS 65.120 B 46 备案号： 浙 江 省 地 方 标 准 DB33 DB33/T 537 2005 动物组织中莱克多巴胺的测定 Determination of ractopamine in animal tissue 2005-02-17 发布 2005-03-18 实施 浙江省质量技术监督局 发布 DB33/T 537 2005 I 前 言 本标准由浙江省农业厅提出并归口。 本标准由浙江省畜产品质量安全检测中心 、浙江省疾病预防控制中心负责起草，浙江一星集团饲料有限责任公司参与起草。 本标准主要起草人： 吴平谷、应永飞、朱聪英、陆春波、林仙军、陈勇、周文海、浦琴华。 DB33

2、/T 537 2005 1 动物组织中莱克多巴胺的测定 1 范围 本标准规定了以酶联免疫（ ELISA）法、高效液相色谱（ HPLC）法和气相色谱质谱（ GC MS）法检测动物组织中莱克多巴胺的方法，规定 GC MS法为仲裁法。 本标准适用于动物组织中莱克多巴胺的测定。 酶联免疫（ ELISA）法为筛选方法，检测限为 5 g/kg，高效液相色谱（ HPLC）法和气相色谱质谱（ GC MS）法为定量方法，定量限 HPLC法为 5 g/kg、 GC MS法为 1 g/kg。线性范围：酶联免疫（ ELISA）法为 0.005ng-0.05ng，高效液相色谱（ HPLC）法为 2.5ng-10ng，气

3、相色谱质谱（ GC MS）法为0.05ng-1.0ng。 2 规范性引用文件 下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是注日期的引用文件，其随后所有的修改单（不包括勘误的内容）或修订版均不适用于本标准，然而， 鼓励根据本标准达成协议的各方研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件，其最新版本适用于本标准。 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法。 3 试样制备 肌肉、肝脏、肾脏等动物组织，去筋后切成小块，制成肉糜后，于 18以下温度冷冻保存。 第一法 酶联免疫法 4 原理与方法 4.1 原理 本测定方法是酶联免疫法中的竞争性测定法，其主要原理是：吸附在孔内

4、的莱克多巴胺与标准或样品中的莱克多巴胺竞争性地与莱克多巴胺抗体相结合，与标准品或样品相结合的莱克多巴胺抗体被洗涤去除后，只剩下与微孔内药物相结合的 抗体，其再与加入的酶标记的第二抗体相结合，酶底物在酶作用下产生蓝色产物，吸光度的高低与样品中莱克多巴胺的含量成反比。 4.2 方法 采用莱克多巴胺酶联免疫试剂盒或类似产品，按试剂盒说明书操作。 5 5 试剂和溶液 5.1 除非另有说明，本法所用试剂均为分析纯，水巍去离子水，符合 GB/T 6682 二级水的规定。 5.2 PBS 缓冲液：用水 10 倍稀释厂商提供的浓缩 PBS 缓冲液。 5.3 工作洗液：用水 20 倍稀释厂商提供的浓缩洗液。 5

5、.4 乙酸乙酯。 5.5 碳酸盐缓冲液：称取 4.3g 碳酸钠（ Na2CO310H2O）， 2.9g 碳酸氢钠（ NaHCO3），加水至 1000mL，摇匀，调节 pH 值至 9.5。 5.6 提取液：取 10mL 甲醇，加 90mLPBS 缓冲液，摇匀。 5.7 甲醇。 DB33/T 537 2005 2 5.8 第二 抗体 工作液：用第二抗体稀释液 2500 倍稀释第二抗体。 6 仪器与设备 6.1 微孔板酶标仪 (带 450nm 滤光片 )。 6.2 振荡器。 6.3 冷冻离心机。 6.4 微量加样器及配套吸头： 20 L, 50 L, 100 L, 200 L 。 6.5 冰箱。 6

6、.6 洗板机。 6.7 生化培养箱。 6.8 氮吹仪。 6.9 分析天平：感量 0.01g。 7 测定步骤 7.1 注意事项 不同品牌的试剂盒其操作步骤可能略有差别，实际操作过程中，操作步骤可根据试剂盒使用说明书略作调整。 7.2 样品处理 取 2.0g试样于 50mL离心管中，加入 6mL提取液（ 5.5），用匀浆器匀浆，加入 6mL碳酸盐缓冲液（ 5.4），用匀浆器匀浆，再定量加入 10mL乙酸乙酯（ 5.3），振荡 30min；以 4000rpm的转速离心 5min，移取 2.0mL上层有机相至另一新试管中，氮吹至干。加入 50 L甲醇（ 5.6）溶解残余物后，再加入 450 LPBS缓

7、冲液（ 5.1），即为供试溶液，取 50 L进行 ELISA测定。 7.3 测试程序 根据所测定样品及标准数，计算出所需微孔条数，将微孔条插入微孔架，标准和样品做两个孔的平行重复，记录标准和样品的位置。 加入 50 L 的标准品和处理好的样品到各自的微孔中，标准和样品做两个平行重复。 加入 100 L 第一抗体溶液到每一个微孔中，在 37孵育 30 分钟后倒出孔中的液体，将微孔架倒置在洗水纸上拍打（每轮拍打 3 次）以保证完全除去孔中的液体，再加入工作洗液（ 5.2） 250 L，重复操作两遍。最后用吸水纸吸干。 加入 150 L 稀释的酶标记的第二抗体（ 5.7） 37孵育 30 分钟后倒出

8、孔中的液体，将微孔架倒置在洗水纸上拍打（每轮拍打 3 次）以保证完全除去孔中的液体，再加入工作洗液（ 5.2） 250 L，重复操作两遍。最后用吸水纸吸 干。 加入 100 L 底物液到微孔中，充分混合并在室温孵育 3-8min。 加入 50 L 反应终止液到微孔中，混合后在 450nm 处测量吸光度值。 8 结果计算 以空白（浓度为 0的标准溶液）吸光度值为 100%计算，折算出各标准和样品的相对吸光度值。 标准的吸光度值 (或样品 ) 相对吸光度值（ %） = 100 空白的吸光度值 计算出的标准相对吸光度值绘成为一个对应浓度 (ng/L)的半对数坐标系统曲线图，校正曲线在200-2000

9、ng/L范围内应当 成为线性。相对应每一个样品的浓度 (ng/L)可以从校正曲线上读出。 DB33/T 537 2005 3 第二法 高效液相色谱法 9 方法原理 用乙腈提取试样中的莱克多巴胺，经固相萃取柱净化，浓缩后用 2乙酸溶液定容，用高效液相色谱荧光检测法分离测定。 10 试剂和溶液 10.1 除非另有说明，本法所用试剂均为分析纯，水为去离子水，符合 GB/T 6682 二级水的规定。 10.2 乙腈：色谱纯。 10.3 甲醇。 10.4 乙腈。 10.5 乙酸 乙酯。 10.6 冰醋酸 。 10.7 无水硫酸钠。 10.8 戊烷磺酸钠：色谱级。 10.9 正己烷。 10.10 氯化钠

10、。 10.11 饱和 氯化钠溶液：取过量氯化钠溶解于水中而得。 10.12 2乙酸溶液： 5mL 冰醋酸加水至 250mL，混匀。 10.13 3甲醇 /乙酸乙酯溶液：取 15mL 甲醇加乙酸乙酯至 500mL，混匀。 10.14 50甲醇 /乙酸乙酯溶液：取 250mL 甲醇加乙酸乙酯至 500mL，混匀。 10.15 戊烷磺酸钠溶液：取 800mL 水，加 20mL 冰醋酸和 0.87g 戊烷磺酸钠（ 10.7， C5H11O3SNaH2O），混匀。 10.16 固相萃取柱 1） ：每根柱填料量为 500mg，柱体积 5mL。 10.17 莱克多巴胺标准溶液 ： 莱克多巴胺贮备液（ 250

11、 g/mL） 精密称取莱克多巴胺对照品 25mg，置 100ml容量瓶中，用甲醇 （ 10.2） 溶解并定容至刻度，其浓度为 250 g/mL，置 -20冰箱中，可保存 3个月。 莱克多巴胺稀释液 (5 g/mL) 精密量取 1ml莱克多巴胺贮备液 （ 10.16.1） ，置 50mL棕色容量瓶中，用甲醇 （ 10.2） 稀释并定容至刻度，为莱克多巴胺工作液。 莱克多巴胺工作溶液 分别准确吸取一定量的标准稀释液 （ 10.16.3） ，用 2乙酸溶液 （ 10.11） 稀释、定容，配制成浓度为 0.05 g/mL、 0.1 g/mL、 0.2 g/mL、 0.5 g/mL、 1.0 g/mL、

12、 2.0 g/mL的标准溶液。 11 仪器设备 11.1 高效液相色谱仪（配荧光检测器）。 11.2 冷冻离心机。 11.3 振荡器。 11.4 分液漏斗 100mL 。 11.5 微孔滤膜 0.45 m。 11.6 涡旋混合器。 1固相萃取柱的填充料为硅藻土和硅胶。 DB33/T 537 2005 4 11.7 分析天平 精度 0.0001g。 11.8 旋转蒸发仪。 11.9 鸡心瓶 50mL。 11.10 离心管 50mL,10mL。 11.11 氮吹仪。 12 测定步骤 12.1 试样提取 称取试样 10.0g至 50mL离心管中，加 10mL乙腈 （ 10.3） 提取，涡旋 2min

13、， 7000rpm离心 5min，取上清液于分液漏斗中，加入 10mL正己烷 （ 10.8） 充分振摇，静置后分离乙腈相；残渣另取 10mL乙腈重复提取一次，再用同一份正己烷分配，合并两次分离的乙腈相，加入 10mL饱和氯化 钠溶液 （ 10.10） 充分振摇，静置后分离乙腈相，经无水硫酸钠 （ 10.6） 过滤，用 2mL乙腈洗涤无水硫酸钠，旋转蒸干。 12.2 试样净化 用 2mL乙酸乙酯 （ 10.4） 溶解鸡心瓶中的残留物，过固相萃取柱（ 10.15，先经 5mL甲醇和 5mL乙酸乙酯润洗）；另取 5mL 3甲醇 /乙酸乙酯 （ 10.12） 洗涤鸡心瓶中的残留物一次，过柱；再用 5m

14、L 50甲醇 /乙酸乙酯 （ 10.13） 洗脱，氮吹至干。 12.3 定容 用 2乙酸溶液（ 10.11）定容到 1mL，过膜，上机。 12.4 测定 高效液相色谱条件 色谱柱： C18柱，长 250mm，内径 4.6mm，粒度 5 m，或相当者。 保护柱： C18柱，长 20mm，内径 3.9mm，粒径 5 m，或相当者。 流动相：戊烷磺酸钠溶液（ 10.14）：乙腈（ 10.1） 80： 20，使用前脱气。 流速： 1.0mL/min。 激发波长： 226nm。 发射波长： 306nm。 进样量： 50 L。 上机测定 取相应浓度的标准工作液和样品制备液，分别注入液相色谱仪，作单点或多点

15、校准，以色谱峰面积按外标法积分定量。 13 结果计算 试样中莱克多巴胺的含量按下式计算： 1000 Ai Cs Vs X As M 式中： X 样品中莱克多巴胺的含量 ( g/kg)； Ai 样品峰面积； As 对照溶液峰面积； Cs 对照溶液浓度（ g/ mL）； M 样品重量（ g）； Vs 定容体积（ mL）。 测定结果用平行测定的算术平均值表示，保留 2 位有效数字。 DB33/T 537 2005 5 14 精密度 14.1 重复性 实验室内平行测定间的 相对偏差 不大于 10。 14.2 再现性 实验 室间测定的 相对偏差 不大于 15。 第三法 气相色谱 -质谱法 15 方法原理

16、 用乙腈为提取剂提取试样中游离的莱克多巴胺，然后用固相萃取柱净化， BSTFA（双三甲基硅基三氟乙酰胺） +TMCS（三甲基氯硅烷）衍生，最后用 GC MS法进行定性定量分析。 16 仪器与试剂 16.1 气 -质联用仪。 16.2 烘箱。 16.3 BSTFA（双三甲基硅基三氟乙酰胺） +1%TMCS （三甲基氯硅烷）。 16.4 莱克多巴胺标准贮备溶液（ 5mg/mL）：准确称取 50mg 莱克多巴胺于 10 mL 容量瓶中，用甲醇溶解并定容至刻度，存放在冰箱中备用。 16.5 莱克多巴胺标准工作溶液：取 莱克多巴胺标准贮备溶液，用甲醇稀释至所需浓度。 16.6 甲苯。 16.7 其它仪器

17、，同 11。 16.8 其它试剂，同 10。 17 测定步骤 17.1 试样提取 同 HPLC法 11.1。 17.2 试样净化 同 HPLC法 11.2。 17.3 试样衍生 蒸发剩余物加 0.1 mL BSTFA+1%TMCS（ 16.3），加盖后于旋涡混合器上震荡，在 80的烘箱中加热 1.0 h，氮气吹干，加 0.2mL甲苯（ 16.5）溶解。 取适量的莱克多巴胺标准工作溶液，氮气吹干，与试样同法进行衍生化。 17.4 色谱条件 色谱柱： 5%苯基 甲基聚硅氧烷弹性石英毛细管柱 (30 m 0.25 mm 0.25 m)，或相当者。 进样口温度： 300。 柱温程序：初温 150，保持

18、 3 min，然后以 10 min升至 230，保持 10min，再以 20 min升至 280保持 10min。 载气：高纯氦气（ 99.999%）。 流速： 1.0mL/min，不分流进样。 进样量： 1.0L。 17.5 质谱条件 EI源：源温 230。 电子能量： 70eV。 DB33/T 537 2005 6 接口温度： 280。 电子倍增器电压： 1506V。 质量扫描范围： 30 550U。 选择离子监测方式（ SIM）。 监测离子（ m/z）： 267、 250 、 179、 502 。 溶剂延迟： 5 min 。 17.6 上机测定 莱克多巴胺 对照 溶液和试液分别注入气相色谱质谱联用仪，记录谱图，按外标法以峰面积进行计算。 18 结果计算 结果按下式计算： X=m1 n/m 式中： X 样品中莱克多巴胺含量（ g/kg） m1 质谱测定对应莱克多巴胺量（ ng） m 取样量（ g） n 稀释倍数 测定结果用平行测定的算术平均值表示，保留 2 位有效数字。 19 精密度 19.1 重复性 实验室内平行 测定 间的 相对偏差 不大于 10。 19.2 再现性 实验室间测定的 相对偏差 不大于 15。