DB31 T 1702-2026 种猪场猪繁殖与呼吸综合征净化技术规范.pdf

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1、ICS11.220CCS B 4131上海市地方标准DB31/T 17022026种猪场猪繁殖与呼吸综合征净化技术规范Technical specification for eradication of Porcine Reproductive andRespiratory Syndrome in breeding pig farm2026-07-27 发布2026-11-01 实施上海市市场监督管理局 发 布DB31/T 17022026I目次前言.II1范围.12规范性引用文件.13术语和定义.14缩略语.25分级标准.26净化途径.37净化场维持.48净化场评估.4附录 A（资料性）本底

2、调查阶段抽样和监测样品种类.5附录 B（规范性）净化场维持的风险评估.6附录 C（规范性）净化场维持的监测和动态评估.9附录 D（规范性）生产管理措施.10附录 E（资料性）净化场评估抽样.11DB31/T 17022026II前言本文件按照GB/T 1.12020标准化工作导则第1部分：标准化文件的结构和起草规则的规定起草。请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。本文件由上海市农业农村委员会提出并组织实施。本文件由上海市畜牧业标准化技术委员会归口。本文件起草单位：上海市动物疫病预防控制中心、中国农业科学院上海兽医研究所、上海市浦东新区畜牧水产技术推广中心、上

3、海市崇明区动物疫病预防控制中心、上海市松江区动物疫病预防控制中心、上海市嘉定区动物疫病预防控制中心。本文件主要起草人：杨德全、鞠厚斌、赵洪进、杨显超、陈琦、李国新、王建、吴秀娟、卢军、李鑫、沈海潇、沈素芳、王晓旭、葛杰、唐文红、葛菲菲、朱九超、俞向前、叶惠萍、李闽、曹传闺、唐燕婷、何随彬、向蒙、冯桂丹、裴建武。DB31/T 170220261种猪场猪繁殖与呼吸综合征净化技术规范1范围本文件规定了种猪场猪繁殖与呼吸综合征净化的分级标准、净化途径、净化场维持和净化场评估等技术要求。本文件适用于上海市种猪场的猪繁殖与呼吸综合征净化。2规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不

4、可少的条款。其中，注日期的引用文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB/T 17823集约化猪场防疫基本要求GB/T 17824.3规模猪场环境参数与环境管理GB/T 18090猪繁殖与呼吸综合征诊断方法GB 19489实验室 生物安全通用要求GB/T 27517鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合 RT-PCR 方法GB/T 35912猪繁殖与呼吸综合征病毒荧光 RT-PCR 检测方法GB/T 36195畜禽粪便无害化处理技术规范NY/T 541兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范NY/T 1569畜禽养殖场质量管

5、理体系建设通则NY/T 1952动物免疫接种技术规范NY/T 2968种猪场建设标准3术语和定义下列术语和定义适用于本文件。3.1疫情发生场porcine reproductive and respiratory syndrome outbreak farm猪繁殖与呼吸综合征病毒的野毒株在猪群内发生水平传播或垂直传播，导致猪群出现急性暴发或存在猪只持续被感染。经由病原学和血清学检测，可明确判定猪繁殖与呼吸综合征病原和抗体均呈阳性的种猪场。3.2阳性不稳定场positive unstable farm猪繁殖与呼吸综合征病毒的野毒株在猪群内持续通过水平传播或垂直传播，导致猪群中持续出现新的感染个体

6、疫情处于动态发展状态。经由病原学和血清学检测，可明确判定猪繁殖与呼吸综合征病原和抗体均呈阳性，且猪群的阳性率及感染状态存在波动变化的种猪场。3.3阳性稳定场positive stable farmDB31/T 170220262猪群中虽存在猪繁殖与呼吸综合征野毒感染的带毒猪，但未发现病毒传播的明确证据，即带毒猪不向外排毒。通过实验室检测，猪群抗体检测持续呈阳性，然而对抗凝血、血清、家族口腔液、舌尖渗出液、处理液等样品进行病原学检测时，长期无法检出病毒核酸；或仅在极少数情况下偶尔检测到病原，但猪群内未出现新的感染病例，未形成病毒传播链，猪群整体阳性率保持稳定，无上升趋势的种猪场。3.4暂时阴性

7、场provisional negative farm引入的阴性后备母 60 天以上未发生抗体转阳，且除母猪群外其余猪群抗体检测均呈阴性，同时，场内所有猪群病原检测结果均呈阴性的种猪场。3.5阴性场negative farm成为暂时阴性场后 1 年内仍保持病原和抗体双阴性的种猪场，或者是完全新建的病原和抗体双阴性的种猪场或者是清群后重新建群的病原和抗体双阴性的种猪场。4缩略语下列缩略语适用于本文件。ELISA：酶联免疫吸附试验（Enzyme Linked Immunosorbent Assay）FOF：家族口腔液（Family Oral Fluids）PF：处理液（Processing Flui

8、ds）PRRS：猪繁殖与呼吸综合征（Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome）PRRSV：猪繁殖与呼吸综合征病毒（Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus）RT-PCR：反转录聚合酶链式反应（Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction）TTF：舌尖渗出液（Tongue Tips Fluids）5分级标准5.1本底调查5.1.1根据种猪场养殖量，按照 50%预期流行率、95%置信区间，应分别从种公猪、生产母猪、后备种猪、保育猪和育肥猪

9、等不同生产阶段猪群中随机采集病原学和血清学样品，同步检测 PRRSV 抗体和核酸，以全面掌握各生产阶段猪群 PRRS 感染状况。不同存栏数量的抽样参见附录 A 中表 A.1。5.1.2各生产阶段猪群监测样品种类参见附录 A 中表 A.2。样品采集、保存和运输应符合 NY/T 541的要求。5.1.3病原学检测方法，应按照 GB/T 18090 或 GB/T 35912 或 GB/T 27517，采用 RT-PCR 或实时荧光 RT-PCR 检测 PRRSV 核酸。5.1.4血清学检测方法，应按照 GB/T 18090，采用 ELISA 方法检测 PRRSV 抗体。5.1.5实验室检测中涉及的生

10、物安全，应符合 GB 19489 的规定。5.2类别划分根据本文件 5.1 本底调查中的病原学与血清学检测结果，结合生产性能、健康状况、引入种猪监测结果及各生产阶段猪只持续性监测结果等辅助指标，对种猪场猪只的 PRRSV 感染状态进行分类。依据种猪场猪只 PRRSV 感染状态分级标准（见表 1），可将其分为阴性场、暂时阴性场、阳性稳定场、阳性不稳定场和疫情发生场五类。DB31/T 170220263表 1种猪场猪只 PRRSV 感染状态分级标准种猪场猪只PRRSV感染状态分类划分标准病原学结果血清学结果辅助指标疫情发生场阳性阳性出现急性暴发或存在持续感染阳性不稳定场阳性阳性种猪群生产稳定，保育

11、育肥或后备猪群反复存在感染发病个体阳性稳定场阴性阳性种猪群生产稳定，无临床症状；90 天内多个批次的断奶仔猪群体（断奶前 7 天至断奶后 3 天）血清学检测无病毒血症；保育、育肥或后备猪群病原学检测为阴性暂时阴性场阴性阳性种猪群生产稳定，持续引入的阴性种猪混群饲养 60 天以上不发生抗体转阳；如有保育、育肥猪群，血清学检测为抗体阴性阴性场阴性阴性种猪生产性能良好，如有保育、育肥猪群，血清学检测为抗体阴性6净化途径6.1疫情发生场6.1.1疫情发生场应通过采取 2 次强化免疫，每次间隔 20 天，待达到阳性稳定场后，方可进行净化。6.1.2种猪场为阳性稳定场时，应采取封群净化法、检测淘汰法等不

12、同的净化措施，逐步建立病原阴性种猪群。6.1.3净化可采取以下方法进行：a)封群净化法：由引入 PRRS 阴性后备种猪、封群、同群感染三个部分组成，即一次性引入未来 5 个月所需的 PRRS 阴性后备种猪；随即实施为期 200 天以上的封闭管理，期间不应引入任何后备种猪和断奶猪群；通过全群免疫 2 次疫苗，间隔 30 天或者驯化的方式实现同群统一感染；同时严格落实生物安全措施，有效阻断外部 PRRSV 传入及内部循环传播，并持续开展病原学监测，直到猪群 PRRSV 逐步转为阴性；在此基础上，挑选病原学检测呈阴性的后备种猪，建立净化基础群，该群所产后代仔猪在断奶后，应与原种猪群隔离饲养，独立培育

13、成阴性猪群，用于净化基础群扩群；b)检测淘汰法：全群同步强化免疫疫苗后，停止免疫且不应引入后备种猪；待实施封群管理 200天后，对猪群进行病原学检测，及时淘汰病原学阳性种猪，持续该流程，直至猪群中无病原学阳性种猪，方可引入 PRRS 阴性后备种猪。6.1.4建立病原阴性种猪群后，不应使用疫苗免疫。应采取封群净化法、检测淘汰法等不同的净化措施，逐步建立暂时阴性场。6.1.5采用封群净化法时，自封群后 90 天开始，应对未免疫 PRRS 疫苗的临床断奶仔猪开展病原学检测，每次应随机采集不少于 30 头仔猪的抗凝血样品，且样品应覆盖所有窝次，检测间隔为 14 天。若连续 4 次病原学检测结果均呈阴性

14、该场可判定为暂时阴性场。6.1.6采用检测淘汰法时，应着重对新引入的阴性后备种猪群体开展抽样检测。当阴性后备种猪与场内种猪群混群饲养 60 天后，应对全群采集血清样品进行血清学检测。若检测结果均为阴性，可认定该群体中无病毒循环。场内种猪群因前期免疫可能出现抗体阳性，但病原学检测结果应呈阴性。若场内存在保育、育肥等生长猪群，其血清学检测结果也应为阴性，满足上述条件方可判定该场为暂时阴性场。6.1.7在成为暂时阴性场后，应连续监测猪群抗体，逐步降低猪群抗体阳性比例，待抗体阳性率降至10%以下时，应全群采集血清逐头检测，及时淘汰抗体阳性种猪，最终使猪群达到病原抗体双阴性的猪群。6.1.8一旦发现病

15、原阳性，立即淘汰病原阳性猪只，如果阳性范围扩大，发生 PRRS 疫情，该场应重DB31/T 170220264新开始净化。6.2阳性不稳定场6.2.1阳性不稳定场应通过采取 2 次强化免疫，每次间隔 20 天，待达到阳性稳定场后，方可进行净化。6.2.2达到阳性稳定场后，应按照本文件 6.1.2 6.1.8 规定的净化途径净化。6.3阳性稳定场应按照本文件 6.1.2 6.1.8 规定的净化途径净化。6.4暂时阴性场应按照本文件 6.1.6 6.1.8 规定的净化途径净化。6.5阴性场6.5.1阴性场可直接进入净化场维持。6.5.2一旦发现病原阳性，应立即淘汰病原阳性猪只，如果阳性范围扩大，发

16、生 PRRS 疫情，该场应重新开始净化。7净化场维持7.1种猪场为阴性场时，应采取净化维持措施。7.2每季度应开展风险评估，按照附录 B 执行。根据种猪场所处风险等级，应针对关键风险因素采取措施持续完善生物安全体系建设。7.3应持续开展监测和动态分析评估。监测采用定期监测和异常监测相结合方式，应按照附录 C 执行。应根据定期监测和异常监测结果，结合生产管理、发病诊疗情况等，分析场内疫病流行状况，评估猪群状态。7.4猪舍温湿度、饲养密度、粪污无害化处理、防疫管理、疫苗免疫和质量管理体系应分别符合相应标准，按照附录 D 中 D.1 执行。引种应按照附录 D 中 D.2 执行。8净化场评估种猪场应符

17、合下列所有条件，即达到 PRRS 的净化标准：a)净化场维持在 12 个月以上且无临床病例；b)抽检种公猪、生产母猪和后备种猪，PRRS 病原学和血清学（仅检测 N 蛋白抗体）检测结果均为阴性。净化场评估不同存栏数量的抽样参见附录 E 中表 E.1。DB31/T 170220265附录A（资料性）本底调查阶段抽样和监测样品种类A.1本底调查阶段抽样本底调查阶段，对种公猪、生产母猪、后备种猪、保育猪和育肥猪等不同生产阶段猪群分别抽样，进行 PRRS 病原学和血清学检测，以全面掌握各生产阶段猪群 PRRS 感染状况。按照 50%预期流行率、95%置信区间，各生产阶段不同存栏数量所需的抽样数量见表

18、A.1。表 A.1本底调查阶段抽样参考表存栏数量（头）抽样数量（头）存栏数量（头）抽样数量（头）5033120089100491500912006520009230073350094400785000955008175009575086100009610008897注：对不同胎次或者不同妊娠阶段母猪的健康状态和带毒情况，可根据其存栏比例，按规模大小成比例的概率抽样方式进行抽样。A.2监测样品种类各生产阶段猪群监测样品种类见表 A.2。表 A.2各生产阶段猪群监测样品种类监测样品类型血清EDTA 抗凝血组织（肺脏、淋巴结等）处理液（PF）a家族口腔液（FOF）b舌尖渗出液（TTF）精液对象个体监

19、测个体监测个体监测群体监测群体监测群体监测个体监测检测方法血清学和病原学病原学病原学病原学病原学病原学病原学适用阶段各生产阶段猪群各生产阶段猪群各生产阶段猪群2 日龄5日龄仔猪群18 日龄断奶仔猪群，保育、育肥和后备种猪群去势-断奶期间的新生仔猪种公猪a 处理液指仔猪断尾和去势睾丸渗出液。b 家族口腔液指采集的每窝仔猪的群体口腔液。DB31/T 170220266附录B（规范性）净化场维持的风险评估B.1风险评估方法B.1.1输入性风险评估根据输入性风险评估原则和步骤，建立 PRRS 输入的风险评估模型，见表B.1。对照输入性风险评估模型，查找种猪场是否存在模型所列的 3 种类型、14 种病原

20、输入主风险及其对应的 19 个风险事件，将结果带入输入性风险评估模型，确定每条风险因素导致的输入风险等级和不确定度（见表B.2）。以实际存在的最高风险等级作为 PRRS 的输入性风险级别。表 B.1输入性风险评估模型类型病原输入主要风险风险事件暴露概率不确定度风险水平种猪场位置周边猪场密度种猪场周边 3 km 内存在其它猪场中低中临近猪场情况临近猪场（3 km）PRRSV 有流行极高低极高屠宰场距离种猪场与屠宰场距离 3 km中低中地势环境种猪场周边无天然屏障高低高引种因素引进带毒猪只（近 2年内）猪只混群前隔离检疫发生漏检或检测假阴性极高低极高猪只混群前隔离但不检疫、不检测猪只不隔离直接混群

21、购入带毒精液或胚胎出场前检测发生漏检或检测假阴性极高低极高出场前不检测直接使用管理因素进入带毒犬、猫无有效防范，自由进入低低低进入带毒鼠无有效防范，自由进入低中低进入带毒鸟无有效防范，自由进入低中低飘入气溶胶周边 0.5 km 存在带毒气溶胶，空气未过滤或灭活病毒不彻底极高低极高周边 0.5 km 1 km 存在带毒气溶胶，空气未过滤或灭活病毒不彻底高低高周边 1 km 3 km 存在带毒气溶胶，空气未过滤或灭活病毒不彻底中中中食用污染的饲料、水源未灭活病毒或灭活病毒不彻底极高低极高带猪肉制品进场未灭活病毒或灭活病毒不彻底中低中使用污染的运输工具或器具未消毒或消毒不彻底高低高进入带病原人员未消

22、毒或消毒不彻底高低高注：查找种猪场是否存在所列病原进入主风险和风险事件，确定导致的风险等级和不确定度。以实际存在的最高风险等级作为猪繁殖与呼吸综合征的输入性风险级别。DB31/T 170220267表 B.2不确定度的级别级别描述低数据确凿、完整；报道相互验证；证据充分、有力中等数据不够完整；报道不多；证据不够有力高数据极度缺乏；几乎无相关报道；仅基于观察而得B.1.2内部风险评估采用逻辑回归方法，确定种猪场内部风险因素，并建立 PRRS 内部风险评估模型，见表B.3。对照内部风险评估模型，查找种猪场是否存在模型所列的 6 种类型、17 种内部主风险及其对应的 21 个内部风险因素，将结果带入

23、内部风险评估模型，确定每条风险因素导致的内部风险等级和不确定度。以实际存在的最高风险等级作为 PRRS 的内部风险级别。表 B.3内部风险评估模型类型内部主要风险风险因素暴露概率不确定度风险水平感染状况疫病暴发情况种猪场 3 年内有 PRRS 疫情*高低极高临床病例3 年以来存在 PRRS 临床病例*高低极高免疫状况疫苗使用使用 PRRSV 弱毒疫苗中低中内部管理病死猪收集点设置病死猪收集点设在场区内中低中流产物处理未及时收集且未消毒*高低极高患病猪处理方式患病猪隔离治疗但未采用隔离饲养中低中内部人员串棚情况内部生产技术人员在不同功能分区和栋舍存在频繁串棚中低中物品、器具等使用不同猪舍物品、器

24、具频繁交叉使用中低中免疫、治疗时更换针头情况免疫、治疗时未做到一猪一针*高低高场区消毒频率消毒频率少于 3 次/周低中低内部布局净、污道设置净道、污道未分开中低中净道、污道有交叉，且无有效防止交叉的措施低中低栏舍设置栏舍间无实体间隔中低中隔离猪舍设置无隔离猪舍*高低极高设备投入未使用空气高效过滤装置低中低饲养模式养殖密度养殖密度超过设计饲养密度低低低饲养方式未采用“全进全出”饲养方式中低中采用单点式饲养中低中场群健康协同病原猪肺炎支原体感染中低中猪圆环病毒感染中低中猪流感病毒感染中低中注：带*风险因素，只要符合其中 1 个的种猪场，则判定为内部风险极高。其它风险因素，符合其中 1 个的种猪场，

25、则判定为内部风险低；符合 2 个的，则判定为内部风险中等；符合 3 个及以上的，则判定为内部风险高。DB31/T 170220268B.2组合风险将种猪场输入性风险级别与内部风险级别带入风险组合矩阵，输入性风险评估模型见表 B.1，内部风险评估模型见表 B.3，确定组合风险等级见表 B.4。表 B.4风险组合矩阵内部风险水平输入性风险水平低中高极高低低中中高中等中中高高高中高高极高极高高高极高极高B.3风险评估分级B.3.1高风险场满足以下条件之一的种猪场，判定为 PRRS 高风险场：a)PRRS 输入性风险和内部风险的组合风险分级为高或极高的种猪场；b)近 2 年内，适龄猪只全群 PRRS

26、病原学监测有阳性的，或有 PRRS 临床病例的种猪场。B.3.2中风险场满足以下条件之一的种猪场，判定为 PRRS 中风险场：a)PRRS 输入性风险和内部风险的组合风险分级为中等的种猪场；b)近 2 年内，适龄猪只全群 PRRS 病原学监测均为阴性，且无 PRRS 病临床病例，但近 3 年内有 PRRS 病原学监测阳性或临床病例的种猪场。B.3.3低风险场同时满足以下两个条件的种猪场，判定为 PRRS 低风险场：a)PRRS 输入性风险和内部风险的组合风险分级为可忽略或低的种猪场；b)近 3 年内，所有适龄猪只全群 PRRS 病原学监测均为阴性，且无 PRRS 临床病例的种猪场。DB31/T

27、 170220269附录C（规范性）净化场维持的监测和动态评估C.1定期监测C.1.1每季度应采集血清样品开展血清学检测。种公猪，应 100%采集；生产母猪应按照妊娠 30 d60 d，妊娠 60 d90 d，产后 3 周，各群体随机采集不少于30头/次；保育、育肥等生长猪群，应按照 8 周龄、12 周龄14 周龄、20 周龄22 周龄，各群体随机采集不少于 30头/次；后备种猪、引进种猪混群前应全群采集。C.1.2每季度应采集病原学样品开展病原学检测。应按照证明无疫公式，95%置信区间、5%预期流行率计算抗凝血抽样量，见表C.1；5 份10 份种公猪精液；5 窝10 窝仔猪家族口腔液；5 窝

28、10窝仔猪处理液；5 窝10 窝仔猪舌尖渗出液。表 C.1定期监测抽样参考表存栏数量（头）抽样数量（头）存栏数量（头）抽样数量（头）5035120058100451500582005120005830054350058400555000595005675005975057100005910005759注：对不同胎次或者不同妊娠阶段母猪的健康状态和带毒情况，可根据其存栏比例，按规模大小成比例的概率抽样方式进行抽样。C.2异常监测对异常猪只应采集样品进行病原学检测。异常猪只包括出现流产、早产、死胎或木乃伊胎等症状的生产母猪；出现体温升高、采食量下降、有呼吸道症状等临床症状的发病猪只以及出现异常死亡

29、的病死猪。收集样品种类包括病死猪的肺脏、扁桃体、淋巴结等组织、血液、口鼻拭子、仔猪舌尖渗出液及母猪所产的弱仔、死胎、流产胎儿等。C.3动态评估对定期监测、异常监测结果进行汇总分析，结合生产管理、发病诊疗情况等，应定期分析场内疫病流行状况，掌握猪群健康状态。DB31/T 1702202610附录D（规范性）生产管理措施D.1饲养管理采取自繁自养、全进全出、分点或分区饲养、母猪分胎次饲养等，有条件的应配备空气过滤系统。猪舍温湿度应符合 GB/T 17824.3 的要求，不同生产阶段猪只的饲养密度应符合 NY/T 2968 的要求，粪污无害化处理应遵守 GB/T 36195 的规定，防疫管理应遵守

30、GB/T 17823 的规定，疫苗免疫操作应遵守 NY/T 1952 的规定，质量管理体系应遵守 NY/T 1569 的规定。D.2引种D.2.1引种要求引进种猪（包括精液）应从取得种畜禽生产经营许可证和动物防疫条件合格证，且猪繁殖与呼吸综合征病原和抗体双阴性的种猪场引入。跨省调运种猪时，应符合产地检疫规程的要求，同时提供口蹄疫、非洲猪瘟、猪瘟、PRRS 和伪狂犬病病原学阴性的检测报告。D.2.2隔离检测引进的种猪需隔离饲养 45 d 以上，无临床症状，全群采集抗凝血和血清，经病原学和血清学检测，确认为 PRRS 病原和抗体双阴性后才能并入本场种猪群。DB31/T 1702202611附录E（资料性）净化场评估抽样种猪场净化评估时，抽检种公猪时，存栏不大于 50 头，100%采样；不少于 50 头，应按照证明无疫公式，95%置信区间、3%预期流行率计算抽样量，见表 E.1。抽检生产母猪和后备种猪时，按照证明无疫公式，95%置信区间、3%预期流行率计算抽样量，见表 E.1，按群体存栏比例分配至生产母猪和后备种猪群进行随机抽样。表 E.1净化场评估抽样参考表存栏数量（头）抽样数量（头）存栏数量（头）抽样数量（头）5043120095100631500952007820009630084350097400885000985009075009875093100009910009499_