DB37 T 3802-2019 花生品种鉴定技术规程 SSR标记法.pdf
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1、ICS 65.020 B 04 DB37 山东省 地 方 标 准 DB 37/T 3802 2019 花生品种鉴定技术规程 SSR 标记法 Protocol for identifying peanut variety SSR marker method 2019 - 12 - 24 发布 2020 - 01 - 24 实施 山东省市场监督管理局 发布 DB37/T 3802 2019 I 前 言 本标准按照 GB/T 1.1 2009给出的规则起草。 本标准由山东省农业农村厅提出并组织实施。 本标准由山东省农业标准化技术委员会归口。 本标准起草单位:山东省花生研究所 。 本标准主要起草人:闫
2、彩霞、单世华、赵小波、李春娟、王娟、苑翠玲、孙全喜、宋秀霞。 DB37/T 3802 2019 1 花生品种鉴定技术规程 SSR 标记法 1 范围 本标准规定了利用简单重复序列( Simple sequence repeat, SSR)标记法进行花生( Arachis hypogaea L.)品种鉴定的术语与定义、仪器设备、试剂与溶液配制、引物信息、鉴定方法、数据读取 与判定方法。 本标准适用于花生品种的鉴定。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引 用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
3、GB/T 3543.2 农作物种子检验规程 扦样 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 19557.1 植物新品种特异性、一致性和稳定性测试指南 总则 NY/T 2237 植物新品种特异性、一致性和稳定性测试指南 花生 3 术语与定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 简单重复序列 simple sequence repeat, SSR 由几个核苷酸( 1 6个)为重复单位聚集而成的长达几十个至几百个 bp(一般为 100 200)的串联 重复序列 ,又称微卫星序列或短串联重复序列,其多态性主要来源于串联数目的不同。 3.2 推荐引物 recommended prim
4、er 根据最少引物区分最多品种的原则筛选出的一套 SSR引物,具有条带清晰、多态性高、重复性好、 均匀分布的特点,用于 DNA分子数据的采集和品种鉴定。 3.3 参照品种 reference variety 具有推荐 SSR位点上不同等位变异的花生品种,用于辅助确定送检样品的等位变异扩增片段的大小, 校正仪器设备的系统误差。 4 仪器设备 DB37/T 3802 2019 2 所用仪器设备见附录 A。 5 试剂、溶液配制及引物信息 5.1 试剂及溶液配制 试剂及溶液 配制见附录 B(除特殊说明外,所用试剂均为分析纯)。 5.2 引物信息 推荐引物的相关信息见附录 C。 6 鉴定方法 6.1 样
5、品准备 6.1.1 样品为花生种子及其他植物组织。种子样品的分样和保存,按照 GB/T 3543.2 的规定执行。 6.1.2 每份样品中至少随机抽取 10个个体,每个个体单独分析。如样品为种子,水培法种植,至第三 片真叶长出后备用。参照品种(见附录 D)各种植 2粒,混合分析。 6.2 样品的 DNA 提取 6.2.1 DNA 提取 取花生幼嫩组织 50 mg,放入组织破碎仪中,液氮研磨。十六烷基三甲基溴化铵( CTAB)法提取基 因组 DNA,室温风干,加入 100 L 1 TE( pH8.0)溶液溶解 DNA。完全溶解后每管加入 5 L RNAase, 37 温育 1 h, 20 下保存
6、留用。 6.2.2 DNA 浓度和质量检测 利用 0.8 %琼脂糖凝胶电泳检测 DNA完整性, Gold View染料进行染色。测定 DNA溶液的 OD260/OD280值, 在 1.8 2.0范围内最佳。测定其 OD260的吸光度,以 1个 OD260值相当于 50 mg/L DNA浓度来计算 DNA的浓度。 稀释至工作浓度为 30 ng/ L,置于 4 下备用。 6.3 PCR 扩增 6.3.1 参照品种的使用 在进行 PCR扩增和等位基因检测时,不同 SSR引物的参照品种参见附录 C。 6.3.2 反应体系 总体系为 10 L,包括 4.5 ng/ L DNA, 0.8 mol/L F/
7、R引物, 1 Dream Taq Green PCR Master Mix, 1.9 L蒸馏水,混匀。 6.3.3 反应程序 95 预变性 3 min; 95 变性 45 s, 55 退火 45 s, 72 延伸 45 s,进行 35个循环; 72 延伸 5 min; 4 下保存备用。 6.4 PCR 产物检测 DB37/T 3802 2019 3 6.4.1 玻璃板组装 清洗玻璃板和样品梳,晾干。用无水乙醇擦拭凹板和平板各 2遍,待玻璃板彻底干燥后,将 1.0 mm 厚的塑 料边条整齐摆放在平板两侧,盖上凹板,对齐,夹紧,用水平仪调平。 6.4.2 制胶 根据凝胶的面积和数量,调整 6%聚丙
8、烯酰胺凝胶溶液的用量,分别加入 1 的 APS和 1 的 TEMED, 轻轻摇匀,防止产生气泡,迅速灌胶。待胶液充满玻璃板夹层,在上部凹面处轻轻插入样品梳平端,深 度约 0.8 cm。室温下静置 1 h,使胶液聚合,如室温较低可适当延长聚合时间。 6.4.3 电泳准备 将制好的胶板固定于垂直电泳槽上,凹板向内。上下槽中各加入 1 TBE缓冲液,至下槽液面约为槽 高的 1/3,上槽液面高于玻璃板凹面约 1 cm。拔去梳子,冲洗胶孔,清除底 层气泡和杂质。将样品梳齿 端插入凝胶 1 mm 2 mm处。 6.4.4 上样 PCR产物中加入 1/6体积的 6 loading buffer,微量移液器上
9、样,每孔加入 2 L PCR扩增产物(上 样量可根据加样孔的大小适当调整)。 20 bp DNA Ladder分子量标记加入两侧加样孔中,对应参照品种 的 PCR产物加入中间加样孔中,检测样品 PCR产物加入其余加样孔中。 6.4.5 电泳 电压为 200 V,根据指示剂位置调整时间,至青蓝色的二甲苯青指示带到达胶板底部,停止电泳, 电泳时间一般为 2 h。 6.5 银染显色 6.5.1 水洗 电泳结束后,分开两块玻璃 板,取出凝胶,用蒸馏水快速漂洗 2次,不超过 10 s。 6.5.2 银染 将凝胶转移至适量染色液中,使其完全浸没,在摇床上轻摇 10 min。 6.5.3 水洗 将凝胶从染色
10、液中取出,在蒸馏水中快速漂洗 2次,时长 8 s 10 s。 6.5.4 显影 将凝胶转移至适量显色液中,使其完全浸没,在摇床上轻摇至带纹清晰。 6.5.5 漂洗 将凝胶转移到蒸馏水中清洗,直至蒸馏水澄清。 6.6 成像 将凝胶置于凝胶成像系统的工作台上,选用透射紫外光观察,调节至图像最清晰,保存。 DB37/T 3802 2019 4 7 数据读取与判定方法 7.1 数据读取 利用凝胶分析软件 Quantity one读取条带,每个 SSR位点的等位 变异大小用扩增片段长度表示,单 位为 bp。与对应的参照品种进行比较,校正系统误差,确定送检样品在每个位点的等位变异大小,获得 送检样品 27
11、个 SSR位点的指纹图谱。 7.2 判定方法 根据送检样品与相应品种指纹图谱的差异位点数,对送检样品进行鉴定。 当送检样品与相应品种指纹图谱的差异位点数 2,则判定为“不同品种”; 当差异位点数 =1,判定为“近似品种”; 当差异位点数 =0,判定为“疑同品种”。 对于差异位点数 1个的送检样品,应按 GB/T 19557.1给出的原则和 NY/T 2237给出的方法进行田间 测试,确定送检样品 在表型性状上是否与对应品种一致。 DB37/T 3802 2019 5 A A 附 录 A (规范性附录) 仪器设备 A.1 组织破碎仪 温控范围为 40 室温。 A.2 高压灭菌锅 灭菌温度为 10
12、5 136 ,最大工作压力为 0.22 MPa。 A.3 凝胶成像系统 分辨率不低于 400百万像素。 A.4 高速冷冻离心机 最大离心力不小于 15 000 g。 A.5 PCR扩增仪 控温范围为 0 100 。 A.6 紫外可见分光光度计 波长范围为 190 nm 1 100 nm。 A.7 恒温水浴锅 温度范围为室温 99 。 A.8 水平摇床 转速为 0 rpm 230 rpm。 A.9 微波炉 最高耐温 120 。 A.10 电子天平 DB37/T 3802 2019 6 精确到 0.01 g。 A.11 电泳槽 样品通量为 1.0 mm厚。 A.12 磁力搅拌器 转速为 0 r/m
13、in 2 500 r/min,控温范围为室温 100 。 A.13 酸度计 测量范围为 0.00 pH 14.00 pH。 A.14 微量移液器 量程分别为 2 L、 10 L、 100 L、 200 L、 500 L和 1 000 L。 DB37/T 3802 2019 7 B B 附 录 B (规范性附录) 试剂及溶液配制 B.1 试剂 B.1.1 乙二胺四乙酸钠( EDTA-Na2)。 B.1.2 三羟基甲基氨基甲烷( Tris)。 B.1.3 盐酸( HCl, 36 %)。 B.1.4 十六烷 基三甲基溴化铵( CTAB)。 B.1.5 氯化钠( NaCl)。 B.1.6 硼酸( Bo
14、rate)。 B.1.7 丙烯酰胺。 B.1.8 甲叉双丙烯酰胺。 B.1.9 四甲基乙二胺( TEMED)。 B.1.10 无水乙醇。 B.1.11 过硫酸铵( APS)。 B.1.12 硝酸银( AgNO3)。 B.1.13 琼脂糖。 B.1.14 6 loading buffer。 B.1.15 Gold View染料。 B.1.16 RNAase( 10 mg/mL)。 B.1.17 酚 :氯仿 :异戊醇(体积比 25:24:1)。 B.1.18 异丙醇。 B.1.19 四硼酸钠。 B.1.20 甲醛。 B.1.21 2 Dream Taq Green PCR Master Mix。
15、B.1.22 SSR引物( 10 mol/L)。 B.1.23 20 bp DNA Ladder。 B.1.24 重蒸水或符合 GB/T 6682规定的一级水 . B.2 溶液配制 B.2.1 1mol/L NaOH 4 g NaOH,加蒸馏水定容至 100 mL。 B.2.2 1mol/L Tris-Cl( pH8.0)溶液 称取 121.1 g Tris,加蒸馏水定容至 1 L,浓盐酸调至 pH8.0,高压灭菌备用。 B.2.3 0.5mol/L EDTA( pH8.0)溶液 DB37/T 3802 2019 8 称取 186.1 g EDTA-Na2, 800 mL蒸馏水,加热定容至 1
16、 L, 1 mol/L NaOH调至 pH8.0,高压灭菌备用。 B.2.4 1 TE 1 mL 1 mol/L Tris-HCl( pH8.0), 0.2 mL 0.5 mol/L EDTA( pH8.0),加蒸馏水定容至 100 mL。 B.2.5 DNA提取液 4 g CTAB, 16.364 g NaCl, 20 mL 1 mol/L Tris-Cl( pH8.0), 8 mL 0.5 mol/L EDTA( pH8.0), 加蒸馏水定容至 200 mL, 4 条件下保存。使用前加入 2 %的巯基乙醇,实验前预热至 65 。 B.2.6 70 %乙醇 700 mL无水乙醇,加蒸馏水定容
17、至 1 L。 B.2.7 10 TBE缓冲液 分别称取 108 g三羟基氨基甲烷, 55 g硼酸,加入 800 mL蒸馏水 加热溶解,再加入 0.5 mol/L EDTA ( pH8.0)溶液 37 mL,加蒸馏水定容至 1 L。 B.2.8 1 TBE缓冲液 100 mL 10 TBE,加蒸馏水定容至 1 L。 B.2.9 10 %APS 0.5 g APS溶于 5 mL蒸馏水中。 B.2.10 6 %聚丙烯酰胺凝胶溶液( 29:1) 分别称取 58 g丙烯酰胺, 2 g甲叉双丙烯酰胺, 100 mL 10 TBE,加蒸馏水定容至 1 L, 4 条件下 保存。 B.2.11 染色液 称取 1
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