SN T 5174-2021 国境口岸蜱传立克次体实时荧光PCR检测方法.pdf

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1、以正式出版文本为准 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 SN/T 51742021 国境口岸蜱传立克次体实时荧光 PCR 检测方法 Real-time fluorescence PCR detection method for tick-borne Rickettsia at frontier ports ICS 11.020 CCS C 62 2021-06-18 发布 2022-01-01 实施 中华人民共和国海关总署发 布 以正式出版文本为准 以正式出版文本为准 I SN/T51742021 前 言 本文件依据 GB/T 1.12020标准化工作导则 第 1 部分：标准化文件的结构和起

2、草规则的规 定起草。 本文件由中华人民共和国海关部署提出并归口。 本文件起草单位：中国检验检疫科学研究院、中华人民共和国北京海关、深圳市检验检疫科学 研究院。 本文件主要起草人：杨宇、柏亚铎、曹姗姗、王静、聂聪、赵婷婷、王建成、史蕾。 以正式出版文本为准 以正式出版文本为准 1 SN/T51742021 国境口岸蜱传立克次体实时荧光 PCR 检测方法 1 范围 本文件规定了国境口岸蜱传立克次体检测的生物安全要求，标本的采集、运输和保存，标本的 处理，立克次体实时荧光 PCR 检测方法。 本文件适用于国境口岸入出境人员或媒介蜱携带的立克次体的实时荧光 PCR 检测。 2 规范性引用文件 下列文件

3、中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文 件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适 用于本文件。 GB 19489 实验室生物安全通用要求 SN/T 1293 国境口岸蜱类监测规程 WS/T 230 临床诊断中聚合酶链反应（PCR）技术的应用 人间传染的病原微生物名录（中华人民共和国卫生部 卫科教发200615 号） 可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本运输管理规定（中华人民共和国卫生部令第 45 号） 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 蜱传立克次体 tick-borne Rick

4、ettsia 立克次体 (Rickettsia) 是原核细胞型、微小短杆或球杆状多形态、革兰染色阴性的专性细胞内繁 殖的微生物。属立克次体目 (Rickettsiales) 立克次体科 (Rickettsiaceae) 立克次体属 (Rickettsia)。对人 类有致病性的立克次体迄今已经约有 20 余种，蜱传立克次体病 (Tick-borne Rickettsia diseases) 是世界 范围内严重威胁人和动物健康的自然疫源性疾病。 3.2 实时荧光 PCR real-time fluorescence PCR 实时荧光 PCR 方法是在常规 PCR 的基础上，加入一条特异性的荧光探针

5、。该探针为一段寡核苷 酸，两端分别标记一个报告基团和一个淬灭荧光基团。探针完整时，报告基团发射的荧光信号被淬灭 基团吸收；PCR 扩增时，利用 Taq 酶的 5-3外切酶活性将探针酶切降解，使报告荧光基团和淬灭 基团分离，从而荧光监测系统可以接受到荧光信号。 3.3Ct 值 实时荧光 PCR 检测中每个反应管内的荧光信号达到设定的阈值时所经历的循环数。 以正式出版文本为准 2 SN/T51732021 4 缩略语 下列缩略语适用于本文件。 BHQ1 ：黑洞淬灭基团 BHQ1（Black Hole Quencher1） FAM ：6- 羧基荧光素 FAM（ 6-carboxy-fluoresce

6、in） 5 生物安全和 PCR 防污染要求 按照 GB 19489、人间传染的病原微生物名录和可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒） 种或样本运输管理规定确定的要求，立克次体相关材料的生物安全要求如下： 立克次体危害程度分类为第二类； 立克次体相关的病原培养和动物感染实验操作应在生物安全级（BSL3 或 ABSL3）实验室 内进行； 立克次体相关的未经培养的感染性材料的操作应在生物安全级（BSL2 或 ABSL2）实验室 内进行； 立克次体相关的灭活材料及无感染性材料的操作可在生物安全级（BSL1 或 ABSL1）实验 室内进行； 立克次体感染性材料运输包装分类为 A 类，UN 编号为 UN

7、2814 ； PCR 防污染措施按照 WS/T 230 确定的规定执行。 6 检测对象 国境口岸发现的可疑病例或媒介蜱。 7 仪器 本方法使用的主要仪器如下： 荧光定量 PCR 仪； 超净工作台； II 级生物安全柜； 高压灭菌锅； 低温高速离心机：最大离心力 20 000 g ； 涡旋振荡器； 冰箱：4 、-20 和 -70 ； 移液器：1 mL、10 mL、20 mL、100 mL、200 mL 和 1 mL。 8 试剂 本方法使用的主要试剂如下： 以正式出版文本为准 3 SN/T51742021 核酸提取试剂：德国 Qiagen 公司 QNeasy Blood Tissue Kit 提取

8、病毒核酸 1） ； PCR 试剂：美国 ThermoFisher 公司 TaqMan Universal Master Mix II 1） ； 引物和探针序列见表 1。 表 1 立克次体荧光 PCR 检测反应体系 名称 体积 2 PCR 缓冲液 12.5 L 上游引物（终浓度） 200 nmol/L 下游引物（终浓度） 200 nmol/L 探针（终浓度） 100 nmol/L 水 补足到 25 L 上游引物（5-3）：TTTATGTCYACTGCTTCTTG 下游引物：TAATAGCCATAGGATGAGAAG 探针：FAM-CACCTATATAGACGGTGATAAAGGAATCTTGCG

9、GC -BHQ1 注：等效的引物和探针或其他等效的商品化检测试剂盒也可使用。 9 检验程序 9.1 样本的采集、运输和保存 9.1.1 人血清 无菌采集疑似病例发病 14 天内静脉血 3 mL 5 mL，室温静置 30 min 使其凝固，500 g 离心 10 min，收集血清于 2 mL 无菌螺口塑料管中，用耐低温油性记号笔记上编号，低温送到实验室检测。 如 24 h 内不能送到实验室，将血清置于 -70 保存。 9.1.2 蜱 按照 SN/T 1293 要求采集蜱标本，将蜱装至大小适合、带螺旋盖、内有垫圈的冻存管内，用耐低 温油性记号笔记上编号，低温运输或 -70 以下保存待检。 9.2

10、样本处理 人血清样本不需进行处理，直接可用于核酸提取。单只蜱虫标本用 75% 酒精浸泡 10 min 后，用 无菌蒸馏水反复冲洗 3 次。最后加入 500 mL 生理盐水研磨，研磨液用于提取 DNA。 9.3 核酸提取 核酸提取采用 QNeasy 血液组织核酸提取试剂盒进行或其它等效提取方法，以下给出所提供试剂 盒具体操作步骤案例，实际操作时按说明书进行。 吸取 200 mL 血清样本或蜱研磨液加入加 20 mL 蛋白酶 K ； 加入 200 mL 缓冲液 AL，涡旋震荡充分混匀，56 孵育 10 min ； 加入 200 mL 的（96%100%）酒精，涡旋震荡充分混匀； 移取混合液至离心柱

11、上，离心柱放在 2 mL 收集管上。6 000 g 离心 1 min，弃收集液。 离心柱放至新的 2 mL 收集管上，加 500 mL 缓冲液 AW1， 6 000 g 离心 1 min，弃收集管 / 液； 1）由指定单位提供，给出这一信息是为了方便本标准的使用者，并不表示对该产品的认可。如果其他等效产品 具有相同的效果，则可使用这些等效产品。 以正式出版文本为准 4 SN/T51732021 离心柱放至新的 2 mL 收集管上，加 500 mL 缓冲液 AW2，20 000 g 离心 1 min，弃收集管/ 液； 将离心柱放在一个新的 1.5 或 2 mL 收集管上，吸 200 mL 缓冲液

12、 AE 在吸附膜上，室温 1 min， 6 000 g 离心 1 min ； 收集滤出液，即为核酸 DNA 溶液，做好标记，-70 储存待用。 9.4 配制反应体系 荧光定量 PCR 采用 TaqMan Universal Master Mix II 试剂盒进行或其它等效 Taqman 荧光 PCR 方法， 以下给出所提供试剂盒具体操作步骤案例，实际操作时按说明书进行。 9.5 荧光 PCR 扩增反应 上述分装好的 PCR 管中加入 5 L 模板 DNA，每个反应体系均设立阴性对照和阳性对照，阳性对 照模板为用立克次体扩增片段构建的阳性质粒 DNA，阴性对照为不含立克次体核酸的标本或无菌水。

13、将上述 PCR 管放入荧光定量 PCR 仪上进行扩增反应。以 ABI 7500 型荧光定量 PCR 仪为例，设定为 Reporter Dye ：FAM，Quencher Dye ：NONE，Passive Reference ：ROX。不同实验室可根据所使用的 试剂和仪器参考上述反应条件做适当调整。见表 2。 表 2 立克次体荧光 PCR 检测反应程序 步骤 反应温度 反应时间 循环数 变性 95 8 min 1 扩增及荧光收集 95 5 s 45 60 30 s 9.6 结果分析 9.6.1 阈值确定 以荧光 PCR 反应的前 3 15 个循环的荧光信号作为荧光本底信号，以本底信号标准差的

14、10 倍 作为荧光阈值，以样品扩增产生的荧光信号达到荧光阈值时所对应的循环数为循环阈值 (Ct 值 )。 9.6.2 质量控制 反应结果应同时符合以下 2 个条件： 阴性对照无扩增曲线； 阳性对照 Ct35 并有明显扩增曲线。 如不满足以上两个条件，此次检测结果无效，需重做。 9.7 检验结果判断及报告 当同时进行的阳性对照和空白对照试验结果正常，本方法检验结果判定及报告如下： 检测样品有明显的荧光增幅曲线，且 Ct 值 40，判为阳性，报告“检出蜱传立克次体特异 性基因（实时荧光 PCR 法）”； 检测样品荧光增幅曲线的 Ct 值介于 40 和 45 之间时，建议采用浓缩方式处理核酸样本，再

15、 重新进行荧光 PCR 检测。若重新检测的 Ct 值仍介于 40 和 45 之间，且曲线有明显的对数增长期，判 为阳性，报告“检出蜱传立克次体特异性基因（实时荧光 PCR 法）”，此类样本建议用其他方法进一 步验证；否则判为阴性，报告“未检出蜱传立克次体特异性基因（实时荧光 PCR 法）”； 检测样品无荧光增幅现象，判为阴性，报告“未检出蜱传立克次体特异性基因（实时荧光 P C R 法 ）”。 以正式出版文本为准 以正式出版文本为准 中华人民共和国出入境检验检疫 中国海关出版社有限公司出版发行 北京市朝阳区东四环南路甲 1 号（100023） 编辑部：（010）65194242-7531 网址 www. hgcbs. com. cn 中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷 开本 8801230 1 / 16 印张 0.75 字数 16 千字 2021 年 7 月第一版 2021 年 7 月第一次印刷 印数 1500 书号：15517571 定价 12.00 元 国境口岸蜱传立克次体实时荧光 PCR 检测方法 行 业 标 准 SN/T 51742021 * * * SN/T 5173 2021