DB21 T 3094-2018 种猪场欧洲型猪蓝耳病净化技术规范.pdf
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1、ICS 11.220 B 41 DB21 辽宁省 地 方 标 准 DB21/T 3094 2018 种猪场欧洲型猪蓝耳病净化技术规范 The technical specifications for removing european genotype porcine reproductive and respiratory syndrome in breeding pig farm 2018 - 12 - 25 发布 2019 - 01 - 25 实施 辽宁省市场监督管理局 发布 DB21/T 3094 2018 I 目 次 前 言 . II 1 范围 . 1 2 规范性引用文件 . 1 3
2、 术语和定义 . 1 3.1 欧洲型猪蓝耳病 . 1 3.2 可疑感染猪群 . 1 3.3 假定健康猪群 . 1 4 净化群的建立 . 1 4.1 采样数量和采样时间 . 1 4.2 检测方法 . 2 4.3 处理 . 3 5 净化群的维持 . 4 5.1 日常检测 . 4 5.2 后备猪的检测 . 4 5.3 引进猪只的检疫 . 4 5.4 病死猪的检测 . 4 6 净化场的认定 . 4 7 净化场的维持 . 4 7.1 引进猪只的检疫 . 4 7.2 病死猪的检测 . 4 7.3 人员和车辆等物品的消毒 . 4 7.4 场内及舍内环境的消毒 . 5 7.5 无害化处理措施 . 5 7.6
3、杀虫防蝇灭鼠措施 . 5 附录 A(规范性附录) 附录 A . 6 DB21/T 3094 2018 II 前 言 本标准按照 GB/T1.1-2009给出的规则并起草。 本标准由辽宁省畜牧兽医局 提出并归口。 本标准起草单位:锦州医科大学 、辽宁省动物卫生监测预警中心、锦州市动物疫病预防控制中心等 单位。 本标准主要起草人: 李冰 、 刘全、 高慎阳、刘英姿、 陈勇、李宁、张建平、马强、赵岩、田苗、张 娜、夏伟、邵奎龙、路畅、李红伟、郭雪峰、孙洪广、刘宏艳、李强、刘晓宇、王军、徐畅、何礼。 DB21/T 3094 2018 1 种猪场欧洲型猪蓝耳病净化技术规范 1 范围 本标准规定了种猪场欧
4、洲型猪蓝耳病净化的术语和定义、检测方法与判定标准、净化群的建立、净 化群的维持、净化场的认定和净化场的维持。 本标准适用于种猪场欧洲型猪蓝耳病净化工作。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB/T 27517 鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株 复合 RT-PCR方法 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB 16548 病害动物和病害动物产品生物安全处理规程 NY/T 1168 畜禽粪便无害化处理技术规范 3 术语和定义
5、3.1 欧洲型猪蓝耳病 欧洲型猪蓝耳病( European Genotype Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome ; EU-PRRS):由欧洲型猪繁殖与呼吸综合征病毒 引起 猪 的 一种 高度接触性传染病, 该病 不但引起猪只免 疫抑制,母猪流产,也可引起仔猪死亡,同时影响高致病性猪蓝耳病的防控工作 , 是 世界上危害 养猪业 最严重的传染病之一。 3.2 可疑感染猪群 可疑感染猪群( Suspiciously infected swine herd):未发现任何症状,但与患病猪群及其污染 的环境有过明显接触的猪群,称为可疑感染猪群。 3
6、.3 假 定健康猪群 假定健康猪群( Hypothesis of healthy swine herd): 除了患病 猪群 和可疑感染 猪群 外 , 疫区其 他易感 猪群 都属于假定健康 猪群。 4 净化群的建立 4.1 采样数量和采样时间 4.1.1 假定健康猪群 DB21/T 3094 2018 2 种公猪按 100%比例采血,或同时按 100%比例采集精液,连续采集 2次,间隔 14天。种母猪按 25%比例 采血,或同时采集活体扁桃体,连续采集 2次,间隔 14天。 4.1.2 可疑感染猪群 种公猪、种母猪分别按 100%比例采血,或同时按 100%比例采集精液,连续采集 2次,间隔 1
7、4天。 4.1.3 感染猪群 种公猪、种母猪、后备猪分别 按 100%比例采血,或同时按 100%比例采集精液,连续采集 2次,间隔 14天。 4.2 检测方法 4.2.1 检测试剂和仪器 本技术规范中使用的试剂,除另有说明外,所用试剂均为分析纯;所有试剂均用无 RNA酶的容器分 装,水为符合 GB/T 6682-1992标准 的灭菌双蒸水或超纯水。 本技术规范中需应用下列试剂和材料: Trizol( RNA抽提试剂,外观为粉红色,分装至棕色瓶中, 于 4 8 保存)、氯仿( 4 预冷)、异丙醇( 4 预冷)、 75%乙醇(用新开启的无水乙醇和 DEPC水 配制, 20 预冷)、 DEPC水(
8、 1000mL双蒸水中加入 1mL DEPC, 室温下持续搅拌过夜 , 121 高压灭菌 25min)、 RNA酶抑制剂( 40 U/L) 、 Taq DNA聚合酶( 5 U/L) 、 dNTP(2.5 mmol/L)、 AMV反转录酶( 5 U/L)、三羟甲基氨基甲烷 -乙酸电泳缓冲液( TAE)、溴化乙锭( EB)、 DL2000 DNA Marker、上游引 物: 5- TAACCGAGCATACGCTGTGAGAAAG-3,下游引物: 5-CAAATTAACTTGCACCCTGACTGGC-3。 本技术规范中使用的 设备包括: PCR扩增仪,高速冷冻离心机 (离心力在 12000g以上
9、),核酸电泳 仪和水平电泳槽,组织均浆机或研钵,凝胶成像系统、微量移液器。 4.2.2 样品的采集与处理 4.2.2.1 组织样品 :按照 GB/T 27517 标准中关于组织样品处理方法执行。 采集时应釆取有明显病变的 淋巴结、扁桃体、肺脏、脾脏、肾脏、胸腺等组织样品。用无菌的剪刀和镊子剪取待检样品 0.5g 左右 于组织匀浆器或研钵中充分匀浆或研磨 , 再加 0.3mL 0.5mL PBS 混匀 , 然后将组织悬液转入无菌 Eppendorf 管中 , 4 条件下 5000r/min 离心 10min, 取上清 液 转入新的无菌 Eppendorf 管中 , 编号备用。 4.2.2.2 血
10、清或抗凝血 : 用无菌注射器自耳静脉或前腔静脉釆集血液 3mL 5mL, 待血清析出后直接吸 取 血清 至无菌 Eppendorf 管中 ,血清量不少于 0.5mL, 编号备用 ; 用无菌注射器先吸入抗凝剂 ( 阿氏液 ) 2mL 3mL, 再自耳静脉或前腔静脉采集等量血液快速混匀后转入无菌 Eppendorf 管中 , 编号备用。 4.2.2.3 存放与运送 :采集的样品密封后,采用保温壶或保温桶加冰密封,尽快运送到实验室。 采集或 处理的样品在 2 8 条件下保存应不超过 24h; 若需长期保存 , 应放置 -70 冰箱 , 但应避免反复冻 融。 4.2.2.4 RNA 提取及 cDNA
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