DB11 T 1046-2013 百合种球繁育技术规程.pdf
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1、ICS 65.020.20 B 62 备案号 :40359-2014 DB11 北京市 地 方 标 准 DB11/T 1046 2013 百合种球繁育技术规程 Technical regulations for bulb propagation of lily 2013 - 12 - 20 发布 2014 - 04 - 01 实施 北京市质量技术监督局 发布 DB11/T 1046 2013 I 目 次 前言 . II 1 范围 . 1 2 规范性引用文件 . 1 3 术语和定义 . 1 4 缩略语 . 2 5 脱毒原原种繁殖 . 2 6 脱毒原种球生产 . 3 7 生产用种球生产 . 5 8
2、 种球采 后处理 . 6 附录 A(资料性附录) 百合常用杀菌剂及其使用方法 . 8 参考文献 . 9 DB11/T 1046 2013 II 前 言 本标准按照 GB/T 1.1 2009 给出的规则起草。 本标准由北京市园林绿化局提出并归口。 本标准由 北京市园林绿化局组织实施。 本标准起草单位: 北京市农林科学院 、 中国农 业 科 学 院蔬菜花卉研究所 。 本标准主要起草人: 王贤、周涤、 刘春、 卫尊征、熊敏。 DB11/T 1046 2013 1 百合种球繁育技术规程 1 范围 本标准规定了观赏百合 ( Lilium spp.) 品 种 脱毒原原种繁 育 及商品种球生产的技术要求。
3、 本标准适用于百合种球 的 繁育 。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 NY/T 1744 2009 切 花百合脱毒种球 GB/T 18247.6 主要花卉产品等级 第 6 部分:花卉种球 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 脱毒 virus-elimination 用物理、化学及生物技术等方法将百合体内感染的有害病毒脱除。 3.2 脱毒原原种 virus-free pro-elite 由脱毒核心材料采用组培技术手段生产出的符合质量
4、要求的组培原原种,可以是组培苗或试管小籽球 。 3.3 脱毒原种 virus-free elite 用 原原种 作种源,在良好隔离条件下种植培育出的符合质量要求的原种 材料 。 3.4 鳞茎 bulb 在短缩茎盘上 着生的肉质叶鞘膨大而成的变态器官。 3.5 鳞片 scale DB11/T 1046 2013 2 着生在鳞茎盘上的叶基或者叶鞘膨 大而成的变态叶。 3.6 籽 球 bulblet 通过组培苗 或鳞片繁殖 形成的 周长小于 3cm 的 小鳞茎。 3.7 商品球 commercial bulb 种球规格达到 生产商品切花和盆花的百合鳞茎。 4 缩略语 下列缩略语适用于本文件。 6-B
5、A: 6-苄基腺嘌呤( 6-benzylaminopurine) NAA:萘乙酸( 1-naphthlcetic acid) 5 脱毒原原种繁殖 5.1 脱毒材料的获得 5.1.1 外植体 选择外观无病毒症状的植株,以其饱满 、无病虫害、无损伤的健康种球做繁殖材料,取中层鳞片作为外植体。 5.1.2 灭菌 将鳞片洗净后,用自来水冲洗 1h。取出后,在超净工作台上用 70%酒精消毒 30s,无菌水冲洗 3次,再加入 15%的 次氯酸钠 消毒液 (有效氯为 5.1% 6.9%)浸泡 15min,无菌水冲洗 3 4次,无菌滤纸吸干水分 。 5.1.3 组培苗 将鳞片切成 1cm 1cm 小块,放入
6、MS 基本培养基中,附加 6-BA1.0mg/L 2.0mg/L 和 NAA0.1mg/L0.5mg/L, pH 值为 5.8。 培养条件为 24 26,光照 12h,光照强度 2000Lx 2500Lx。接 种后 30d 左右可得到不定芽。将不定芽切下,基部带少量鳞片组织, 继代 培养成小植株。 5.1.4 热处理 将无菌组培苗在 温度 39 1 、 光照 14h和温度 25 1 、 黑暗 10h的条件下培养 20d。 5.1.5 茎尖培养 以经过热处理后的组培苗为脱毒材料,剥取 0.2mm 0.5mm茎尖 , 放入含有病毒 唑 6mg/L的培养基中培养。茎尖培养基为 MS基本培养基,附加
7、6-BA0.3mg/L 0.5mg/L, NAA0.1mg/L 0.3mg/L, pH值为 5.8。培养条件同 5.1.3。 5.2 试管鳞茎的诱导和增殖 DB11/T 1046 2013 3 茎尖培养 30d后,将增殖的芽丛切下,转入 鳞茎诱导培养基。培养基成分为 MS基本 培养基,附加6-BA0.2 mg/L 0.5 mg/L, NAA0.5mg/L 1.0mg/L, pH值为 5.8。 30d 40d后 分化出小 鳞茎 。 再将小鳞茎放入 蔗糖 浓度为 40g/L 60g/L、生长调节剂种类和浓度同上的培养基中进行增殖培养。 培养条件同5.1.3。 5.3 试管鳞茎生根 将 增殖培养后的
8、鳞茎 转入生根培养基中生根。培养基成分为 1/2MS,附加 NAA0.2mg/L 0.5mg/L。pH值为 5.8。 培养条件同 5.1.3。 5.4 试管鳞茎出瓶标准 试管内鳞茎直径达到 0.5cm 1cm。 5.5 试管鳞茎低温处理 试管鳞茎放入 5 0.5 冷库中,经过 4周 6周 低温处理,可打破休眠。如果不能立即栽植,需要放 置 在 -0.5 0 冷库中冻藏 。 5.6 病毒检测 脱毒原原种的抽样、检测和生产维护分别按照 NY/T 1744 2009中 5.1、 5.2、 6.1、 6.2和 6.3执行。 6 脱毒原种球生产 6.1 生产地域选择 选择地势高燥,排水良好,水源 和光照
9、 充足,气候凉爽,夏季最高气温(或经过遮阳处理后温度)低于 25 的区域 。 6.2 设施 使用加装遮 阳 网 、 防虫网和 防雨膜 的保护地,安装喷灌或滴灌系统 。 6.3 基质 栽培基质宜具备疏松、透气、排 水良好等特性,需经过消毒。可选用草炭和蛭石 1:1 比例混匀 。 基质厚度 15cm 18cm。基质中氯化物含量应小于 1.5mmol/L。种植东方百合杂交系,基质 pH 值 5.5 6.5;基质 EC 值小于 0.9mmhos/cm;种植亚洲百合杂交系,基质 pH 值 6.0 7.0,基质 EC 值小于 1.5mmhos/cm。种植前 宜 对基质进行取样化验,如果达不到上述要求,需对
10、基质进行改良。栽培基质应每年更换。基质消毒方法 参见 DB11/T 680 2009 附录 B。 6.4 栽植床 床面 宽 100cm 120cm, 床深 15cm 30cm, 两床间距离 25cm 30cm。 6.5 种植前材料处理 6.5.1 试管鳞茎 (籽球) DB11/T 1046 2013 4 经 5低温处理的 试管鳞茎 从瓶内取出,洗去培养基。 可直接种植; 长期冻藏的试管鳞茎 ,在 5环境下放置 1d,解冻后 清洗, 立即种植。如果 种植 环境温度过高,需将试管 鳞茎 置于 12 13催芽,现芽后立即种植。种植之前需 要对 试管鳞茎 进行 消毒。 杀菌剂用法参见附录 A。 6.5
11、.2 一年生球 经 5低温处理的 一年生球 ,可直接种植; 长期冻藏的一年生球, 在 5条件下放置 1d,解冻后立即种植。如果种植环境温度过高,需将 一年生球 置于 12 13催芽,芽长 2cm 3cm时,应立即种植。种植之前需要对 一年生球 进行消毒。 杀菌剂用法参见附录 A。 6.6 种植密度 试管鳞茎 , 100 粒 /m2 140 粒 /m2;周长 6 cm 9cm 的种球 , 80 粒 /m2 100 粒 /m2;周长 10cm 12cm的种球 , 50 粒 /m2 60 粒 /m2; 周长 12cm 以上的种球 , 40 粒 /m2。 6.7 基质覆盖厚度 试管鳞茎 ,覆盖基质 1
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