DB37 T 2037-2012 牛白细胞黏附缺陷症(BLAD)基因分子检测技术规程.pdf
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1、ICS 11.220 B 41 DB37 山东省地方标准 DB37/T 20372012 牛白细胞黏附缺陷症(BLAD)基因分子 检测技术规程 Technical Specification of Molecular Detection for Bovine Leukocyte Adhesion Deficiency (BLAD) Gene 2012 - 02 - 09 发布 2012 - 03 - 01 实施 山东省质量技术监督局 发布 DB37/T 20372012 I 前 言 本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。 本标准由山东省畜牧兽医局提出。 本标准由山东省畜牧业标准化
2、技术委员会归口。 本标准起草单位:山东省农业科学院奶牛研究中心、山东省畜牧总站、山东奥克斯生物技术有限公 司、济南佳宝乳业有限公司。 本标准主要起草人:黄金明、张思聪、鞠志花、李秋玲、李建斌、李荣岭、王长法、赵鲲、侯明海、 曲绪仙、仲跻峰。 DB37/T 20372012 1 牛白细胞黏附缺陷症(BLAD)基因分子检测技术规程 1 范围 本标准规定了牛BLAD分子检测的技术方法。 本标准适用于牛BLAD分子检测。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
3、GB/T 6682 分析实验室用水规格和实验方法 NY/T 1672 绵羊多胎主效基因FecB分子检测技术规程 SN/T 1193 基因检验实验室技术要求 SN/T 1917-2007 牛地方流行性白血病聚合酶链反应操作规程 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 牛白细胞粘附缺陷症(BLAD) 是由常染色体上的白细胞表面整合素(CD18)基因编码区第383位碱基发生AG 错义突变引起的隐 性遗传缺陷病。 4 检测原理 牛BLAD发病原因是由于CD18亚单位编码区的383位碱基由A 突变为G 引起的。基于该点突变设计引 物,进行PCR扩增,对扩增产物进行测序分析,根据DNA测序的
4、峰图及碱基序列比对结果,判断其基因型, 确认是否携带BLAD基因。 5 主要试剂配制 除另有规定,所用试剂均为分析纯,水为符合GB/T 6682规定的双蒸水; 高压灭菌条件为1.03410 5 Pa压力,蒸汽灭菌20min。试剂配制见附录A。 6 主要仪器设备 见附录B。 DB37/T 20372012 2 7 检测方法 7.1 样本采集 静脉采集血样35 mL,ACD抗凝,4或-20保存。对公牛,亦可采集23剂细管精液,液氮保存。 7.2 DNA 提取 7.2.1 血液 DNA 的提取 用酚-氯仿抽提法从抗凝血或者血凝块中提取基因组DNA。抗凝血和血凝块的预处理按照SN/T 1917-200
5、7 的规定执行。DNA的提取按照 NY/T 1672-2 008中的规定执行。也可用商业化DNA提取试剂盒 提取DNA。 7.2.2 精液 DN A 提取 从细管中取出精液放入1.5mL离心管中,然后,加入500 L生理盐水,混匀,除去卵黄稀释液及精 清等蛋白成份;12000rpm离心1min,弃除废液,保留底部的白色沉淀。重复上述步骤一次。加入精子DNA 抽提液 400 L及5 L蛋白酶K,旋涡混合器悬浮;56消化1012h,至溶液澄清透明;加入300 L苯酚, 轻轻混匀,12000rpm离心10min;吸取上清液,转至1.5mL离心管中,加入150 L酚和150 L氯仿,轻轻 混匀5min
6、;吸取上清液,加入500 L无水乙醇(4保存),轻轻颠倒混合;用灭菌枪头将白色沉淀挑 出,1mL的70%乙醇洗涤,凉干,加入400 L双蒸水,充分溶解,4或-20保存。 7.2.3 DNA 浓度和纯度检测 按照 NY/T 1672 的规定执行。 7.3 引物序列 上游引物:5-ATTGACAAGGAA AGAAGTCGTTAC-3; 下游引物:5-CTGGCACTCCTT CTCCTTGTT-3。 扩增产物为874bp。 7.4 PCR 扩增 7.4.1 PCR 扩增体系 25L反应体系:10Buffer2.5 L、50mmol/L MgCl2 1.2 L、10mmol/L dNTP 0.6
7、L、Taq DNA聚 合酶2U、10 mol/L引物各1.0 L、模板DNA 50100ng,加双蒸水至总体积25 L。 7.4.2 PCR 扩增循环参数 94预变性5 min;94变性30s,59退火30s,72延伸30s,35个循环;72延伸5min,4保 存。 7.5 PCR 产物琼脂糖凝胶电泳检测 7.5.1 先用水清洗制胶板,再用 1TAE 冲洗一次,水平放置。 7.5.2 根据电泳胶板的规格和检测样品的数量,配制 1%的琼脂糖溶液,在微波炉中加热融化至溶液澄 清透明,室温下冷却至 60左右时,加入溴化乙锭并混匀,使 EB 的终浓度为 0.5g/mL。 DB37/T 20372012
8、 3 7.5.3 将混合液缓慢倒入制胶板中,排除气泡,插入多齿梳子。待凝胶凝固后,拔出梳子,将凝胶转 移至水平电泳槽中,往电泳槽中加入 1TAE 缓冲液,使电泳缓冲液没过胶面。 7.5.4 将待检 PCR产物 5 L 和上样缓冲液(6DNA Loading Buffer)以 5:1 的比例混合均匀,加入 点样孔;同时选择点样孔点上 5 L 2000 bp DNA Marker 作参照。恒压 100V,电泳 30min。电泳结束后 于凝胶成像系统观察,并分析记录。 7.6 测序分析 将扩增的PCR产物直接进行测序分析。 8 结果判定 8.1 PCR 产物琼脂糖凝胶电泳检测 牛CD18基因PCR扩
9、增产物仅出现874 bp的条带(图1),则表示扩增特异性好,可进行下一步的测序 分析。 图1 牛 CD18 基因 PCR 扩增产物琼脂糖凝胶电泳图谱 注:M: DNA marker DL2000; 15: 不同个体的PCR 产物 8.2 结果判定与表述 PCR扩增的CD18基因片段测序结果见附录C。如图2 所示,将PCR产物测序结果利用DNAstar软件进行 比对,CD18 基因PCR扩增产物的第501位碱基为A时,且测序峰图为单峰,表明是纯合基因型AA,该个体 表述为正常牛;第501位碱基为A或G时,且测序 峰图为套峰,表明是基因型AG,属于杂合子,该个体表 述为BLAD携带牛;第501位碱
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