DB35 T 1822-2019 水禽圆环病毒感染PCR鉴别诊断技术.pdf
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1、ICS 11.220 B 41 DB35 福建省地方标准 DB35/T 18222019 水禽圆环病毒感染 PCR 鉴别诊断技术 PCR diagnostic techniques for differentiating circovirus infection in waterfowls 2019 - 04 - 18 发布 2019 - 07 - 18 实施 福建省市场监督管理局 发布 DB35/T 1822 2019 I 目 次 前言 . . II 1 范围 . . 1 2 疫病简述 . . 1 3 PCR 鉴别诊断. . 1 附录 A(规范 性附录) 相关试剂的配制 . 4 附录 B(资
2、料 性附录) 参考序列 . 6 附录 C(资料性附录) PC R 检测结果 电泳图例 . . 7 DB35/T 1822 2019 II 前 言 本标准按照GB/T 1.12009给出的规则起草。 本标准由福建省农业科学院提出。 本标准由福建省农业农村厅归口。 本标准起草单位:福建省农业科学院畜牧兽医研究所、福州海关技术中心、江西省萍乡市科学技术 情报研究所、宁德海关检验检疫技术中心。 本标准主要起草人:傅光华、施少华、黄勇、彭春香、傅秋玲、黄瑜、白泉阳、叶洪、万春和、 程龙飞、陈红梅、刘荣昌、陈珍、陈翠腾、朱春华、吴波平、庄晓东。 DB35/T 1822 2019 1 水禽圆环病毒感染 PC
3、R 鉴别诊断技术 1 范围 本标准规定了水禽圆环病毒感染PCR鉴别诊断的操作技术要求。 本标准适用于鸭圆环病毒、鹅圆环病毒感染的鉴别诊断。 2 疫病简述 水禽圆环病毒(Waterfowl circovirus)为圆环病毒科圆环病毒属的成员,主要包括鸭圆环病毒 (Duck circovi rus,DuCV)和鹅圆环病毒(Goo se circovirus,GoCV),基因组均为环状单股正链 DNA。 DuCV可感染不同品种、日龄的鸭,GoCV可感染不同品种、不同日龄的鹅。水禽圆环病毒主要侵害水 禽免疫系统,导致宿主免疫应答机能下降,临床上造成被感染动物生长迟缓,并易引起其他细菌和病毒 的继发或混
4、合感染。 3 PCR 鉴别诊断 3.1 仪器设备 3.1.1 PCR 仪。 3.1.2 台式冷冻离心机(转速不低于 12 000 r/min)。 3.1.3 微量移液器。 3.1.4 组织匀浆器。 3.1.5 电泳仪。 3.1.6 电泳槽。 3.1.7 紫外凝胶成像系统。 3.2 试剂 3.2.1 蛋白酶 K。 3.2.2 10%十二烷基苯磺酸钠(SDS):配制方法见附录 A 的 A.1。 3.2.3 Tris 饱和苯酚。 3.2.4 酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)。 3.2.5 3 mol/L 的醋酸钠溶液:配制方法见附录 A 的 A.2。 3.2.6 无水乙醇。 3.2.7 75%乙醇
5、:配制方法见附录 A 的 A.3。 3.2.8 溴化乙锭溶液:配制方法见附录 A 的 A.4。 3.2.9 1TAE 缓冲液:配制方法见附录 A 的 A.5。 3.2.10 1.0%琼脂糖凝胶:配制方法见附录 A 的 A.6。 3.2.11 DNA 相对分子质量标准物:100 bp ladder。 3.2.12 10加样缓冲液:配制方法见附录 A 的 A.7。 DB35/T 1822 2019 2 3.3 样品的采集与处理 样品的采集与处理依照国家采样标准执行,具体如下:无菌采集生长不良、羽毛紊乱、体况消瘦或 发病鸭(鹅)的法氏囊、脾脏等器官,剪碎后与磷酸盐缓 冲液(PBS,见附录A的A.8)
6、按体积比1:5的 比例制成组织匀浆液,反复冻融3次,8 000 r/min 离心30 min,取上清,用于DNA抽提,或置-20 冻 存备用。 若采集的样品需放置6 h以上再进行处理,应先置 -20 条件下保存备用,需托运时应确保冷藏或 冰冻状态运输。 3.4 引物设计 根据水禽(鸭、鹅)圆环病毒两个主要蛋白基因3 之间的间隔序列差异设计3条特异性引物: CVF:5 - AAY CWC GCG GGA AGT GGT GGG A -3; DuCVR:5 - TTC TAR GCA TAA ACG AGA TC -3; GoCVR:5 - ATA MGA TTC GGA CAA TGG ACT
7、G -3。 其中,CVF为共用上游引物,CVF与DuCVR用于检测DuCV,扩增条带为554 bp大小的基因片段,CVF 与GoCVR用于检测GoCV,扩增条带为407 bp大小的基因片段。各引物的工作浓度均为 10 mmol/L,保存 于4 8 条件下。 3.5 样品中病毒 DNA 提取 3.5.1 常规 DNA 提取步骤: 3.5.1.1 取 540 L 匀浆液上清,加入 60 L 10%的 SDS,加入蛋白酶 K 至终浓度 5 mg/mL,充分混 匀 15 s,56 水浴 2 h。 3.5.1.2 加入等体积 Tris 饱和苯酚,充分混匀 15 s,在 4 条件下 12 000 r/mi
8、n 离心 15 min。 3.5.1.3 吸取离心后各管中的上清液转移至灭菌管(注意不要吸出中间层), 加入与上清液等体积的酚/ 氯仿/异戊醇混合物(混合物中三者比例依次为 25:24:1),颠倒混匀 15 s,静置 5 min 后,在 4 条 件下 12 000 r/min 离心 15 min。 3.5.1.4 重复 3.5.1.3 步骤 1 次。 3.5.1.5 吸取离心后各管中的上清液转移至相应的管中,加入 1/10 体积的 3 mol/L 的醋酸钠溶液(pH 值为 5.2)、2.5 倍体积的无水乙醇,颠倒混匀 15 s,-20 沉淀 2 h。 3.5.1.6 于 4 条件下,13 00
9、0 r/min 离心 15 min。轻轻倾去上清液,加入 800 L 75%乙醇清洗 沉淀 2 次,2 000 r/min 离心 15 s,用无菌枪头吸尽残余液体,室温静置 5 min。 3.5.1.7 加入 50 L 灭菌去离子水重悬,轻轻混匀溶解管壁上的 DNA,冰上保存备用。提取的 DNA 应 在 2 h 内进行 PCR 扩增或保存于-20 冰箱,将核酸转移至反应混合物配制区。 3.5.2 商品化试剂盒 DNA 提取方法 也可采用市售商品化的DNA提取试剂盒,完成样品中病毒DNA的提取。 3.6 对照 分别以鸭圆环病毒、鹅圆环病毒DNA样品作为阳性对照。以番鸭细小病毒或其他病毒(如鸭瘟病
10、毒、 产蛋综合征病毒等)DNA样品作为阴性对照。以上对照样品均由指定单位提供。 3.7 PCR 反应 3.7.1 常规 PCR 反应操作 DB35/T 1822 2019 3 3.7.1.1 PCR 反应液配置为:每个反应管的 PCR 反应体系为 25 L,依次加入 17.75 L 灭菌去离子 水,2.5 L Taq 聚合酶 10缓冲液,0.5 L dNTP s (2.5 mmo l/L each),0.5 L Taq DNA 聚合 酶(1 U/L),引物 CVF 0.75 L(10 mmol/L),引物 DuCVR 和 GoCVR 各 0. 5 L(10 mmol /L), 样品 DNA 2
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