DB11 T 379-2006 豆芽中4-氯苯氧乙酸钠、6-苄基腺嘌呤、2,4-滴、赤霉素、福美双的测定.pdf

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1、 ICS 67.080.20 B 31 备案号：19170-2006 北 京 市 地 方 标 准 DB DB11/T 3792006 豆芽中4-氯苯氧乙酸钠、6-苄基腺嘌呤、2,4-滴、赤霉素、福美双的测定 Determination of 4-chlorphenoxyacetic sodium, 6-benzylam inopurine, 2,4-D, gibberellic acid and thiram residues in soybean sprout and mung bean sprout 2006-07-25发布 2006-09-01实施 北京市质量技术监督局 发布 DB11/

2、T 3792006 I目 次 前 言.II 1 范围.1 2 4-氯苯氧乙酸钠残留量的测定.1 3 6-苄基腺嘌呤残留量的测定.3 4 2,4-滴（2,4-二氯苯氧乙酸）残留量的测定 .5 5 赤霉素残留量的测定.7 6 福美双残留量的测定.9 DB11/T 3792006 II前 言 本标准由通州区质量技术监督局提出。 本标准起草单位：北京市海淀区产品质量监督检验所（国家食品质量安全监督检验中心）。 本标准主要起草人：曹红、金瑛、刘艳琴、许华、王浩、田艳玲、林立。 DB11/T 3792006 1豆芽中4-氯苯氧乙酸钠、6-苄基腺嘌呤、 2,4-滴、赤霉素、福美双的测定 1 范围 本标准规定

3、了豆芽中4-氯苯氧乙酸钠、6-苄基腺嘌呤、2,4-滴、赤霉素、福美双的测定方法。 本标准适用于豆芽中4-氯苯氧乙酸钠、6-苄基腺嘌呤、2,4-滴、赤霉素、福美双的残留量分析。 2 4- 氯苯氧乙酸钠残留量的测定 2.1 原理 试样中的4-氯苯氧乙酸钠用稀碱提取后，在酸性条件下用固相萃取柱将样品中的4-氯苯氧乙酸吸附，使其与基体干扰物分离，再用甲醇洗脱并用高效液相色谱法测定，以保留时间定性，外标法峰面积定量。 2.2 试剂与材料 2.2.1 氢氧化钠（AR）。 2.2.2 盐酸（AR）。 2.2.3 磷酸（AR）。 2.2.4 冰醋酸（AR）。 2.2.5 甲醇（HPLC）。 2.2.6 氢氧化

4、钠溶液（0.01 mol/L）：称取0.40 g氢氧化钠，溶于水并稀释至1000 mL。 2.2.7 亚铁氰化钾溶液：称取 10.6 g 亚铁氰化钾K4Fe(CN)6 3H2O溶于少量水中，并用水稀释至100 mL。 2.2.8 乙酸锌溶液：称取 22.0 g乙酸锌Zn(CH3COO)2溶于少量水中，然后加入 3 mL冰醋酸并加水稀释至100 mL。 2.2.9 磷酸盐缓冲液（0.01 mol/L）：称取1.56 g的磷酸二氢钠（NaH2PO42H2O）加水溶解，并定容至1000 mL，用50 %的磷酸溶液调节pH值至4.0。 2.2.10 4-氯苯氧乙酸标准溶液：精密称取4-氯苯氧乙酸（含量

5、99%）0.1 g(精确到0.0001 g)，用甲醇溶解并移入 100 mL容量瓶中，稀释至刻度。此溶液每毫升相当于1.00 mg 4-氯苯氧乙酸。临用时甲醇稀释浓度为每毫升相当于0.10 mg 4-氯苯氧乙酸。 2.2.11 固相萃取小柱（3 m L /500 mg）：ODS-C18 小柱，用时先经10 mL甲醇洗脱活化，再用10 mL水洗去残留甲醇，保持萃取柱润湿状态待用。 2.2.12 本标准所用水为经纯水制备系统制备后的水。 2.3 仪器与设备 2.3.1 高效液相色谱仪（带紫外检测器，配ZORBAX SB C18色谱柱）。 2.3.2 超声波仪。 2.3.3 酸度计。 2.3.4 组

6、织捣碎机。 2.3.5 Milli-Q纯水制备系统。 2.4 分析步骤 2.4.1 试样制备 称取捣碎混匀的豆芽样品20 g（精确至0.1 g）于100 mL容量瓶中，加入40 ml氢氧化钠溶液振摇，然后分别加入亚铁氰化钾溶液和乙酸锌溶液各5 mL，混匀，超声提取30 min，用氢氧化钠溶液稀释至DB11/T 3792006 2 刻度，过滤。取50.0 mL的滤液，用浓磷酸调pH至2.5，然后以3 mL/min的流速通过活化的ODS-C18小柱。先用3.0 mL水洗去水溶性杂质后，再用甲醇洗脱并定容至3.0 mL，过0.45m滤膜后，供液相色谱分析。 2.4.2 标准曲线的制备 准确吸取每毫升

7、相当于0.10 mg的4-氯苯氧乙酸0.20 mL、0.50 mL、1.00 mL、2.00 mL、4.00 mL于100 mL容量瓶中，加甲醇稀释至刻度。制成浓度依次为0.20 mg/L、0.50 mg/L、1.00 mg/L、2.00 mg/L、4.00 mg/L的标准使用液，供液相色谱分析。 2.4.3 色谱条件 色谱柱：ZORBAX SB C18柱（4.6 mm250 mm5 m）（或相当型号色谱柱）。 检测波长：228 nm。 流动相：甲醇+0.01 mol/L磷酸盐缓冲液（50+50）(V/V)。 流速：1.0 mL/min。 柱温：30 。 2.4.4 测定 吸取10.0L标准使

8、用液和试样液分别注入液相色谱仪，按照2.4.3项条件进行检测，以保留时间定性，标准曲线法定量。标样及试样图谱见图1及图2。 2.5 计算 按式（1）计算。 12.110001000 = m fAX （1） 式中： X试样中4-氯苯氧乙酸钠的含量，单位为毫克每千克（mg/kg）； A从标准曲线上求出的试样液中4-氯苯氧乙酸的质量，单位为微克（g）； f试样的稀释倍数； m试样的取样量，单位为克（g）； 1.124-氯苯氧乙酸转换为4-氯苯氧乙酸钠的系数。 计算结果保留两位有效数字。 2.6 精密度 在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10 %。 2.7 检测限 在本

9、试验条件下，豆芽中4-氯苯氧乙酸钠的定量检测限为0.10 mg/kg。 图1 4氯苯氧乙酸标样色谱图 DB11/T 3792006 3图2 豆芽样品中4氯苯氧乙酸色谱图 3 6- 苄基腺嘌呤残留量的测定 3.1 原理 豆芽中残留的6-苄基腺嘌呤经酸化甲醇提取后，高效液相色谱法测定，以保留时间定性，外标法峰面积定量。 3.2 试剂与材料 3.2.1 乙酸（AR)。 3.2.2 1% 乙酸溶液。 3.2.3 乙腈（HPLC）。 3.2.4 甲醇（HPLC）。 3.2.5 酸化甲醇溶液：每100 mL甲醇+水（60+40）(V/V)中加入乙酸50L，混匀。 3.2.6 6-苄基腺嘌呤标准溶液：精密称

10、取6-苄基腺嘌呤0.1 g（精确到0.0001 g）（含量99.0%）于100 mL容量瓶，用甲醇溶解并定容至刻度。此溶液每毫升相当于 1.00 mg 6-苄基腺嘌呤。临用时用甲醇稀释浓度为每毫升相当于0.010 mg 6-苄基腺嘌呤。 3.2.7 固相萃取小柱（3 mL/500 mg）：ODS-C18 小柱，用时先经 10 mL 甲醇洗脱活化，再用 10 mL水洗去残留甲醇，保持萃取柱润湿状态待用。 3.2.8 本标准所用水为经纯水制备系统制备后的水。 3.3 仪器与设备 3.3.1 高效液相色谱仪（带紫外检测器，配ZORBAX SB C18色谱柱）。 3.3.2 Ultra-Turrax搅

11、拌器。 3.3.3 离心机（4500 r/min）。 3.3.4 旋转蒸发仪。 3.3.5 组织捣碎机。 3.3.6 Milli-Q纯水制备系统。 3.4 分析步骤 3.4.1 试样制备 称取捣碎混匀的豆芽样品10 g（精确至0.1 g）于50 mL聚丙烯离心管中，加入15 mL酸化甲醇溶液，用Ultra-Turrax搅拌器混匀3 min, 然后以4500 r/min离心10 min，上清液转入100 mL梨形瓶中，样品再用15 mL酸化甲醇溶液提取，再次离心，合并上清液。上清液用旋转蒸发仪蒸发，以去除甲醇，剩余水相以3 mL/min的流速通过活化的ODS-C18小柱，先用3.0 mL水洗去水

12、溶性杂质后，再用甲醇洗脱并定容至5.0 mL，过0.2m 有机膜滤过后，供液相色谱分析。 3.4.2 标准溶液系列的配制 准确吸取每毫升相当于0.010 mg的6-苄基腺嘌呤0 mL、0.20 mL、0.40 mL、0.80 mL、1.0 mL、DB11/T 3792006 4 2.0 mL、5.0 mL于25mL容量瓶中，用甲醇稀释至刻度。配制成浓度依次为0 mg/L 、0.08 mg/L、0.16 mg/L、0.32 mg/L、0.40 mg/L、0.80 mg/L、2.00 mg/L的标准溶液系列，供液相色谱分析。 3.4.3 色谱条件 色谱柱：ZORBAX SB C18柱（4.6 mm

13、250 mm5 m）（或相当型号色谱柱）。 检测波长：267 nm。 流动相：甲醇+乙腈+1%乙酸溶液（60+5+35）(V/V)。 流速：1.0 mL/min。 柱温：30 。 3.4.4 测定 准确吸取10.0 L标准系列溶液和试样溶液分别注入液相色谱仪中，按照3.4.3条件进行检测，以保留时间定性，峰面积外标法定量。标样及试样图谱见图3及图4。 3.5 计算 按式（2）计算。 10001000=mfAX （2） 式中： X试样中6-苄基腺嘌呤的含量，单位为毫克每千克（mg/kg）； A从标准曲线上求出的试样溶液中6-苄基腺嘌呤的质量，单位为微克（g）； f试样的稀释倍数； m试样的取样量

14、，单位为克（g）； 计算结果保留两位有效数字。 3.6 精密度 在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。 3.7 检测限 在本试验条件下，豆芽中6-苄基腺嘌呤的定量检测限为0.02 mg/kg。 min0 1 2 3 4 5 6 7mAU 0102030405060 4.1616-benzylaminopurine图3 6苄基腺嘌呤标样色谱图 DB11/T 3792006 5min0 1 2 3 4 5 6 7mAU 0204060801001201406-benzylaminopurine图4 豆芽样品中6苄基腺嘌呤色谱图 4 2,4- 滴（2,4-二氯苯氧

15、乙酸）残留量的测定 4.1 原理 试样中2,4-滴用有机溶剂提取，用三氟化硼甲醇溶液将2,4-滴衍生成2,4-滴甲酯，液-液萃取，凝胶渗透色谱净化除去干扰物质，以气相色谱电子捕获检测器测定。根据色谱峰保留时间定性，外标法峰面积定量。 4.2 试剂与材料 4.2.1 乙腈（AR）。 4.2.2 甲醇（AR）。 4.2.3 正己烷（AR）。 4.2.4 环己烷（AR）。 4.2.5 乙酸乙酯（AR）。 4.2.6 pH 2的酸性水溶液：用50稀硫酸调节水的pH为2。 4.2.7 氯化钠（AR）。 4.2.8 50 g/L氯化钠溶液。 4.2.9 无水硫酸钠：650 灼烧4 h后,保存于干燥器中。

16、4.2.10 三氟化硼乙醚溶液：47 (V/V)。 4.2.11 衍生剂(14 三氟化硼甲醇溶液)：量取29.5 mL三氟化硼乙醚溶液，用甲醇定容至100 mL。 4.2.12 2,4-滴标准使用液：精密吸取1 mL 2,4-滴的甲醇标准溶液（浓度100g/L），用甲醇溶解并定容至100 mL。此溶液浓度为每毫升相当于1.00g 2,4-滴。 4.2.13 本标准所用水除另有规定外，均为蒸馏水。 4.3 仪器与设备 4.3.1 气相色谱仪：配有电子捕获检测器。 4.3.2 凝胶渗透色谱净化系统。 4.3.3 组织捣碎机。 4.3.4 恒温水浴锅。 4.3.5 旋转蒸发器。 4.3.6 电动振荡

17、器。 4.3.7 顶空分析用20 mL玻璃瓶，配套的铝盖和密封垫（或密封紧密的密封瓶）。 4.4 分析步骤 4.4.1 提取 称取捣碎混匀的豆芽样品50.0 g（精确到0.1 g）于具塞锥形瓶内，加入20 mL酸性水溶液和50 DB11/T 3792006 6 mL乙腈，振荡提取30 min，过滤，滤渣用20 mL乙腈洗涤两次,合并滤液于250 mL分液漏斗中，于上述分液漏斗中加入15 g氯化钠，振荡混匀，静置40 min，分层，提取乙腈层，用旋转蒸发器除去乙腈，用5mL甲醇分次转移至20 mL顶空分析玻璃瓶中。 4.4.2 衍生化 加5 mL衍生剂于上述顶空分析玻璃瓶中，将玻璃瓶加盖密封，在

18、65 水浴中保持45 min后，取出玻璃瓶迅速置于冰浴中冷却，将衍生反应液转移至盛有10 mL 50g/L氯化钠溶液的50 mL具塞比色管中，用正己烷提取二次，每次5 mL，合并有机相，经无水硫酸钠脱水，旋转蒸发器挥至近干，用乙酸乙酯:环己烷（1:1，V/V）定容至10mL。 4.4.3 2,4-滴甲酯标准工作液的制备 取5mL 2,4-滴标准使用液，依4.4.2方法制备2,4-滴甲酯标准工作液，经无水硫酸钠脱水，旋转蒸发器挥至近干后，用正己烷准确定容至5mL。此溶液浓度为每毫升相当于1.00g 2,4-滴。 4.4.4 凝胶渗透色谱净化 选择凝胶渗透色谱柱规格（200 mm22 mm i.d

19、.），柱填料为Bio Beads S-X3 200-400目，流动相乙酸乙酯:环己烷（1:1，V:V），流速为4.7 mL/min，进样量5 mL，样品收集时间11 min15 min。衍生化后样品按照上述条件净化，将约20 mL收集液旋转蒸发至近干，用正己烷准确定容至5 mL。 4.4.5 气相色谱条件 气相色谱仪：附电子捕获检测器（ECD，Ni63）。 色谱柱：HP-1MS石英毛细管色谱柱，30 m250 m0.25 mm 。 载气: 高纯氮,纯度99.99。 载气流速：1.0 mL/min。 进样方式：不分流。 程序升温：柱初始温度50 ，保持1 min，以25 /min速率升温至220

20、 ，保持20 min。 进样口温度: 250 。 检测器温度: 300 。 4.4.6 测定 分别吸取2,4-滴经衍生化的标准工作液、试液各1.0L注入气相色谱仪,按照 4.4.5的条件进行检测，以保留时间定性，色谱峰面积外标法定量。标样及试样图谱见图5和图6。 4.5 计算 按式（3）计算。 1000100020 =mAVCAX （3） 式中: X 2,4-滴残留量,单位为毫克每千克（mg/kg）； A 样液中2,4-滴(衍生物)峰面积； A0 标准工作溶液中2,4-滴(衍生物)峰面积； C 标准工作溶液中相当于2,4-滴(衍生物)浓度,单位为微克每毫升（g/mL）； m 取样量，单位为克（

21、g）； V 样液的定容体积，单位为毫升（mL）。 4.6 精密度 在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10。 4.7 检测限 DB11/T 3792006 7在本试验条件下，豆芽中2,4-滴的定量检测限为0.002 mg/kg。 1溶剂峰 22,4-滴峰 3未知峰 图5 2,4-滴标样色谱图 1溶剂峰 22,4-滴峰 3未知峰 图6 豆芽样品中2,4-滴色谱图 5 赤霉素残留量的测定 5.1 原理 豆芽中赤霉素经提取后，先经乙酸乙酯液液萃取初步净化，再利用凝胶渗透色谱（GPC）使目标化合物与基体干扰物分离，达到分离和净化的目的。用反相高效液相色谱法DAD 检测器进

22、行色谱分析，采用标准物质的保留时间、辅助峰扫描光谱纯度对照两种方式对样品峰进行定性，采用外标法以峰面积计算定量。 5.2 试剂与材料 5.2.1 甲醇（AR）。 5.2.2 丙酮（AR）。 5.2.3 乙酸乙酯（AR）。 5.2.4 50硫酸溶液(V/V)。 5.2.5 pH 2.5的酸性水溶液：用50稀硫酸调节水的pH为2.5。 DB11/T 3792006 8 5.2.6 无水硫酸钠（AR）。 5.2.7 冰乙酸（AR）。 5.2.8 固相萃取小柱：Waters SEP-PAK，用时先经10 mL甲醇洗脱活化，再用10 mL水洗去残留甲醇，保持萃取柱润湿状态待用。 5.2.9 赤霉素标准储

23、备液：精密称取赤霉素（含量99.0%）0.1 g（精确到0.0001g），用甲醇溶解并定容至100 mL。此溶液浓度为每毫升相当于1.00 mg赤霉素。 5.2.10 本标准所用水除另有规定外，均为蒸馏水。 5.3 仪器与设备 5.3.1 高效液相色谱仪（配DAD检测器）。 5.3.2 旋转蒸发仪。 5.3.3 组织捣碎机。 5.3.4 电动振荡器。 5.3.5 凝胶渗透色谱仪（GPC）。 5.4 分析步骤 5.4.1 试样制备 称取捣碎后样品50 g（精确到0.1 g）于锥形瓶中，加20 mL蒸馏水和100 mL丙酮，震荡提取30 min。混合物经布氏漏斗抽滤，残渣放回锥形瓶中，再用 100

24、 mL丙酮震荡提取15 min，用布氏漏斗抽滤,之后分别两次用50 mL丙酮洗涤锥形瓶并倒在滤渣上，抽滤。 将上述多次提取的丙酮-水提取液收集于1000 mL圆底烧瓶中，在30 水浴上，用旋转蒸发器减压蒸发除去丙酮。剩下的试样水溶液用滤纸过滤，用50 mL蒸馏水洗涤烧瓶并通过同一滤器过滤，用20 mL蒸馏水分别两次洗涤滤纸。将滤液转入烧杯中，用50 %的硫酸溶液调至滤液pH为2.50.2。将样液转入250 mL分液漏斗中，以少量蒸馏水洗涤烧杯。然后用150 mL乙酸乙酯分3次提取样液，收集乙酸乙酯提取液，并通过约15 g无水硫酸钠滤入250 mL圆底烧瓶中，于30 水浴中旋转蒸发至干。用15

25、mL 环己烷+乙酸乙脂（1：1）(V/V)混合液充分溶解，准备待分析样品溶液10 mL，进入渗透色谱柱分离，作用时间13 min，流速4.7 mL/min。收集6min13 min的流出液。收集凝胶渗透色谱（GPC）流出液，于30水浴中旋转蒸发至干，再用2 mL甲醇溶解；用0.45 m有机膜过滤后，供液相色谱分析。 5.4.2 标准溶液系列的配制 准确吸取标准储备液0 mL、0.50 mL、1.00 mL、1.50 mL、2.00 mL、5.00 mL于100 mL容量瓶中，用甲醇稀释定容至刻度。制成浓度依次为0 g/ mL、50 g/ mL、100 g/ mL、150 g/ mL、200 g

26、/ mL、500 g/ mL的标准溶液，供液相色谱分析。 5.4.3 色谱条件 色谱柱：ZORBAX SB-C18柱：5 m，4.6 mm250 mm（或相当型号色谱柱）。 流动相：甲醇水（5545） (V/V) (溶液用冰乙酸调pH 3.6)。 流速：0.6 mL /min。 柱温：40 。 检测波长：206 nm。 5.4.4 测定 分别吸取5.0 L标准使用液和试样液注入高效液相色谱仪，按照5.4.3项条件进行检测，采用标准物质的保留时间辅助峰扫描光谱纯度对照两种方式对样品峰进行定性，采用外标法以峰面积计算定量。标样及样品中赤霉素图谱分别见图7和图8。 5.5 计算 按式（4）计算。 D

27、B11/T 3792006 910001000=mFCX （4） 式中： X样品中赤霉素的含量，单位为毫克每千克（mg/kg）； C样品测定液中赤霉素的含量，单位为微克每毫升（g/ mL）； F稀释倍数； m样品量，单位为克（g）。 计算结果保留两位有效数字。 5.6 精密度 在重复条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10 %。 5.7 检测限 在本试验条件下，豆芽中赤霉素的定量检测下限为0.20 mg/kg。 图7 赤霉素标样色谱图 图8 豆芽样品中赤霉素色谱图 6 福美双残留量的测定 6.1 原理 豆芽中残留福美双与盐酸-氯化亚锡在密封反应瓶中共热放出二硫化碳，用气相

28、色谱法（FPD）测定，以保留时间定性，外标法峰面积定量。 6.2 试剂与材料 DB11/T 3792006 10 6.2.1 盐酸（AR）。 6.2.2 5 mol/L 盐酸溶液：量取42mL盐酸定容至100mL。 6.2.3 氯化亚锡（AR）。 6.2.4 二硫化碳（AR）。 6.2.5 二氯甲烷（AR）。 6.2.6 盐酸-氯化亚锡溶液：称取2 g SnCl22H2O溶于100 mL 5 mol/L HCl中。 6.2.7 处理水：经纯水制备系统制备的去离子水煮沸数分钟，冷却后待用。 6.2.8 福美双标准溶液：精密称取福美双（纯度98.0）22.4 mg，以二氯甲烷溶解，并移入100 m

29、L容量瓶中，稀释至刻度。此溶液浓度为每毫升相当于224 g福美双。 6.3 仪器与设备 6.3.1 气相色谱仪：带火焰光度检测器（FPD）硫滤光片。 6.3.2 气密注射器：100 L。 6.3.3 恒温水浴或烘箱。 6.3.4 顶空瓶或具密封塞的250 mL玻璃反应瓶。 6.3.5 组织捣碎机。 6.3.6 Milli-Q纯水制备系统。 6.4 分析步骤 6.4.1 试样制备 称取20 g（精确到0.1 g）经组织捣碎机匀浆处理的豆芽样品放入反应瓶中，加处理水至30 mL，加盐酸-氯化亚锡溶液40 mL，塞紧反口胶塞，用反应瓶架固定。将反应瓶置于80 的烘箱中反应2 小时，每隔0.5小时摇动

30、1分钟。反应完成后取出反应瓶，冷却至室温。抽取瓶内顶空气体进行定量测定。 6.4.2 标准曲线的制备 分别准确吸取 1 L、5 L、10 L、50 L 福美双标准溶液于反应瓶中，瓶内福美双的量分别为0.224 g、1.12 g、2.24 g、11.2 g，按照6.4.1的步骤进行反应，反应后抽取瓶内顶空气体供气相色谱分析。 6.4.3 色谱条件 气相色谱仪：带火焰光度检测器（FPD）硫滤光片。 色谱柱：DB-1701石英毛细管色谱柱，30 m250 m0.25 mm或相似色谱柱。 程序升温：柱初始温度50 ，保持1 min，以25 /min速率升温至150 ，保持2min。 进样口温度：180

31、。 检测器温度：200。 载气：高纯氮,纯度99.99。 载气流速： 1.0mL/min。 氢气流速：40 mL/min。 空气流速：450 mL/min。 进样：进样量100L，不分流。 6.4.4 测定 分别吸取福美双标准液、试样液瓶中100L气体注入顶空气相色谱仪,按照6.4.3的条件进行检测，以保留时间定性，色谱峰面积外标法定量。标样及豆芽样品中福美双图谱见图9和图10。 6.5 计算 按式（5）计算。 10001000=mAX （5） DB11/T 3792006 11式中： X 福美双残留量，单位为毫克每千克（mg/kg）； A 由工作曲线上查出的试样测定液中福美双的含量，单位为微克（g）； m 取样量，单位为克（g）。 6.6 精密度 在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10 %。 6.7 检测限 本方法最低检出浓度为0.01 mg/kg。 min1 2 3 4 5Norm.0500010000150002000025000300003500040000FPD1 B, (0606010CS2-0009.D)2.129图9 福美双标样色谱图 min1 2 3 4 5Norm.01000020000300004000050000FPD1 B, (0606010CS2-0010.D)2.130图10 豆芽样品中福美双色谱图