DB35 T 2066-2022 十二卷属软叶类多肉植物组培育苗通用技术规范.pdf
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1、 ICS 65.020.20 CCS B 61 35 福建省地方标准 DB35/T 20662022 十二卷属软叶类多肉植物组培育苗通用 技术规范 Technical specification for tissue culture and seedling raising of succulent plants of Haworthia Duval2022-08-08 发布2022-11-08 实施福建省市场监督管理局发 布 DB35/T 20662022 I 目次 前言.II 1 范围.1 2 规范性引用文件.1 3 术语和定义.1 4 环境设施与控制.1 5 培养基.1 6 外植体采集与
2、处理.2 7 诱导培养.3 8 增殖培养.3 9 生根培养.3 10 炼苗.4 11 质量标准与出苗.4 12 技术档案.4 附录 A(资料性)MS 基本培养基成分及母液配制.5 附录 B(资料性)十二卷属软叶多肉植物组培培养基配方.6 附录 C(资料性)培养基配制记录表.7 附录 D(资料性)外植体采集记录表.8 附录 E(资料性)接种记录表.9 DB35/T 20662022 II 前言 本文件按照GB/T 1.12020标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则的规定起草。请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。本文件由福建省林业局提出并归口。
3、本文件起草单位:龙岩市禾康生物科技有限公司、福建省龙岩市林业种苗站。本文件主要起草人:樊仲书、林能庆、张玉华、洪永辉、樊昌华、黄以法、樊君早、王海斌。DB35/T 20662022 1 十二卷属软叶类多肉植物组培育苗通用技术规范 1 范围 本文件规定了十二卷属软叶类多肉植物组培育苗生产技术的环境设施与控制、培养基、外植体采集与处理、诱导培养、增殖培养、生根培养、炼苗、质量标准与出苗和技术档案。本文件适用于阿福花科十二卷属软叶类多肉植物组培育苗。2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引
4、用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB 155692009 农业植物调运检疫规程 LY/T 18822010 林木组织培养育苗技术规程 NY/T 23062013 花卉种苗组培快繁技术规程 3 术语和定义 LY/T 18822010界定的以及下列术语和定义适用于本文件。3.1 十二卷属软叶类多肉植物 succulent soft leafed plants of Haworthia Duval 阿福花科小型多年生高叶型多肉植物。4 环境设施与控制 按照NY/T 23062013的规定执行。5 培养基 5.1 培养基选择 选择MS培养基为基本培养基。5.2 母液配制与保存 5.
5、2.1 母液配制 母液用无菌的蒸馏水或去离子水配制。母液主要包括大量元素、铁盐、微量元素、有机物质和植物生长调节剂等(参见附录A)。DB35/T 20662022 2 5.2.2 母液保存 母液置于3 5 的冰箱中保存,其中铁盐和植物生长调节剂母液储存在避光容器中,母液保存期不超过1个月。母液贮存容器上贴好标签,注明名称、配制日期,发现标签不明或母液中有沉淀、结晶或微生物和藻类应废弃不用。5.3 培养基配制 5.3.1 配制方法 依照培养基配方以及需要配制的培养基体积,量取70%75%最终体积(V)的纯净水,按配方量取母液、称取凝固剂和白砂糖,转至分装桶并定容。诱导培养基、增殖培养基和生根培养
6、基配方(参见附录B)。5.3.2 pH 值的调整 用1.0 mol/L盐酸或1.0 mol/L氢氧化钠调整培养基pH值至5.86.0。5.3.3 分装 配制好的培养基应及时分装到培养容器中,分装时勿将培养基沾到培养容器口,盖好瓶盖,做好标记和记录(参见附录C)。5.4 灭菌 将分装好的培养基放入高压蒸汽灭菌器内进行湿热灭菌,在蒸汽压力为0.105 Mpa,温度121 的条件下,灭菌20 min25 min。灭菌后的培养基应置于无风和洁净的环境中冷却至常温。5.5 贮存 灭菌后的培养基注明培养基编号、配制日期和灭菌锅次。为保证培养基质量,将配制好的培养基在23 27 洁净环境中放置5 d7 d备
7、用,贮存时间不超过一个月。6 外植体采集与处理 6.1 外植体采集 选择植株的叶片或花茎作为外植体。春、秋两个生长旺季选择观赏性高、抗逆性强、生长健壮植株作为采集外植体的母株。采集前将母株放在通风处阴干2 d3 d。采集时,对母株用清水冲洗干净,用毛笔蘸洗衣粉水刷洗,并用无菌水清洗35次。外植体要标明品名、来源、采集地点、时间、人员等(参见附录D)。6.2 外植体处理 在超净工作台上先用75%酒精浸泡外植体20 s30 s,然后用无菌水冲洗3次,再用2%3%的次氯酸钠溶液浸泡15 min25 min,最后用无菌水清洗35次。DB35/T 20662022 3 7 诱导培养 7.1 诱导培养基
8、参见附录B。7.2 外植体接种 将消毒后的外植体切成1 cm左右的小段,其中以花茎为外植体的需带花芽,垂直或斜插接种到诱导培养基中,外植体与培养基要接触良好,深浅适中。接种后及时填写接种记录表(参见资料性附录E)。7.3 培养条件 接种后先暗培养5 d7 d,再置于光照强度为1 500 Lx2 000 Lx、温度23 27、湿度RH60%环境中进行培养,每天光照12 h14 h,培养28 d35 d。8 增殖培养 8.1 增殖培养基 参见附录B。8.2 增殖接种 应根据不同品种的组培生长分化特性,接种时将无菌增殖材料切成带23个芽的丛芽或小段,芽苗高保留2 cm左右,切除松散的愈伤、褐化组织、
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