SN T 1556-2020 鸡传染性鼻炎检疫技术规范.pdf
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1、以正式出版文本为准 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 SN/T 1556 2020 代替 SN/T 15562005 鸡传染性鼻炎检疫技术规范 Quarantine protocol for chicken infectious coryza 2020-12-30 发布 2021-07-01 实施 ICS 11.220 CSS B 41 中华人民共和国海关总署发 布 以正式出版文本为准 以正式出版文本为准 SN/T 1556 2020 I 前 言 本文件按照 GB/T 1.12020 的规定起草。 本文件代替 SN/T 15562005鸡传染性鼻炎琼脂免疫扩散试验操作规程。 本文件与 SN
2、/T 15562005 相比,主要技术变化如下: 增加了临床诊断方法; 增加了病原分离鉴定方法; 增加了 PCR 检测方法; 增加了血凝抑制试验(HI); 增加了间接酶联免疫吸附试验(I-ELISA)。 本文件由中华人民共和国海关总署提出并归口。 本文件起草单位:中华人民共和国深圳海关、深圳市检验检疫科学研究院。 本文件主要起草人:陶虹、孙洁、张彩虹、林彦星、杨俊兴、林庆燕、秦智锋、刘建利、唐金 明、陈书琨、廖立珊、曹琛福、吕建强、花群义。 本文件所代替文件的历次版本发布情况为: SN/T 15562005。 以正式出版文本为准 以正式出版文本为准 1 SN/T 1556 2020 鸡传染性鼻
3、炎检疫技术规范 1 范围 本文件规定了鸡传染性鼻炎病原分离鉴定方法、聚合酶链式反应技术以及血清平板凝集试验、血 凝抑制试验、间接酶联免疫吸附试验、鸡传染性鼻炎琼脂免疫扩散试验的操作方法。 本文件适用于鸡传染性鼻炎的诊断和检疫。 2规范性引用文件 下列文件中的内容通过规范性引用而构成本必不可少条款。其中,注日期的引用文 件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适 用于本文件。 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 18088 出入境动物检疫采样 SN/T 2123 出入境动物检疫实验样品采集、运输和保存规范 3术语和定义 本文件
4、没有需要界定的术语和定义。 4诊断技术 4.1 临床综合诊断 鸡传染性鼻炎的临床症状及病理变化参见附录 A。 4.2 病原分离鉴定 4.2.1 试剂与材料 4.2.1.1 灭菌棉拭子、鲜血琼脂平皿、灭菌小瓶、过氧化氢酶。 4.2.1.2 产烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(或辅酶 1,NAD)表皮葡萄球菌。 4.2.1.3 5% 的二氧化碳(CO 2 )培养箱、4 或 -20 -30 冰箱。 4.2.2 样品的采集和处理 样品的采集、保存及运输应符合 GB/T 18088 和 SN/T 2123 的相关采样要求。 无菌采集发病鸡血液,分离血清,血清应新鲜、透明、不溶血、无污染,密装于灭菌小瓶内,4 或 -
5、20 -30 冰箱保存或冷藏条件下立即送检。 无菌采集处于急性发病阶段(潜伏期 1 d7 d)的病鸡眶下窦内的黏液、浆液,或气管和气囊分泌 物用于病原学诊断,其中眶下窦腔的细菌最为纯净。 以正式出版文本为准 2 SN/T 1556 2020 4.2.3 细菌的分离鉴定 无菌打开可疑病鸡的眶下窦,用灭菌棉拭子蘸取其中黏液或浆。用棉拭子在鲜血琼脂平皿上横 向划线 5 7 条,然后取产 NAD 表皮葡萄球菌从横线中间划一纵线。将划种好的平皿置于 5% 的二氧化 碳培养箱中 37 培养 18 h 24 h,观察菌落特点。取可疑菌落的纯化物做过氧化氢酶试验,如有大量 气泡者为过氧化氢酶阳性反应。也可采用
6、 PCR 鉴定可疑菌落,同时取病料或可疑菌落进行动物试验, 方法见附录 B。 4.2.4 结果判定 若鲜血琼脂培养基上出现“卫星样”生长的露滴状、针头大小的小菌落,即靠近产 NAD 表皮葡萄 球菌线处菌落较大,直径可达 0. 3 mm,离产 NAD 表皮葡萄球菌线越远,菌落越小,过氧化氢酶阴性, 结果判为阳性;若无卫星现象,但有露滴状、针头大小的小菌落出现且过氧化氢酶阴性,则仍需采用 PCR 或动物试验鉴定,以避免漏检不需 NAD 的副鸡禽杆菌。若无上述现象,则判为阴性。 4.3 PCR 检测 4.3.1 试剂与材料 4.3.1.1 除非另有说明,在检测中使用的试剂均为分析纯,实验室用水应符合
7、 GB/T 6682 的要求。 4.3.1.2 0.5% Np-40(乙基苯基聚乙二醇)、0.5% 吐温 -20、100 mmol/L pH 8.3 Tris-HCl、0.2 mg/mL 蛋 白酶 K、阴阳性对照物。 4.3.1.3 生理盐水、蒸馏水、1.5 mL 及 0.5 mL 小离心管、吸头,均灭菌处理。 4.3.1.4 PCR 仪、水浴锅、小型离心机、微量加样器、冰块。 4.3.1.5 琼脂糖、电泳仪、水平电泳槽、紫外灯或凝胶成像仪。 4.3.1.6 10 mg/mL 溴化乙锭、加样缓冲液、TAE 电泳缓冲液。 4.3.2 实验操作 4.3.2.1 核酸抽提 4.3.2.1.1 组织样
8、品的核酸提取 无菌打开可疑病鸡的眶下窦,用灭菌棉拭子蘸取其中的黏液或浆液浸入含 0.8 mL 1.0 mL 生理盐水 的 1.5 mL 离心管内,室温放置 0.5 h 后,将棉拭子在管壁上尽量挤干,然后弃至废液缸中。 将浸过棉拭子的离心管以 8 000 r/min 10 000 r/min 离心 10 min,小心吸去大部分上清液,保留 20 nullL 左右液体。 用吸头将离心管中沉淀物与剩余液体混合均匀,加入 15 nullL 1 PCR 缓冲液(其中含 0.5% Np-40, 0.5% 吐温 -20,0.2 mg/mL 蛋白酶 K 和 100 mmol/L pH 8.3 Tris-HCl
9、),压紧离心管盖,约 50 水浴 1 h, 然后 95 10 min,再冰浴 10 min 后进行 PCR 扩增或置 -20 保存。 4.3.2.1.2 菌落的核酸提取 挑取于 5% 的二氧化碳培养箱中 37 培养 18 h 24 h 的菌落,加到含 10 nullL 蒸馏水的 0.5 mL 的小 离心管中,压紧管盖,95 加热 10 min,再冰浴 10 min 后进行 PCR 扩增或 -20 保存。 用 10 nullL 无菌水作为阴性对照样品,用 9 nullL 无菌水加 1 nullL 已知阳性对照物作为阳性对照样品。约 50 水浴 1 h,然后 95 10 min,再冰浴 10 mi
10、n 后进行 PCR 扩增或置 -20 保存。 4.3.2.1.3 其他核酸提取方法 可采用等效的商品化试剂盒进行细菌病原核酸提取。 以正式出版文本为准 3 SN/T 1556 2020 4.3.2.2 PCR 扩增 针对副鸡禽杆菌 hagA 基因设计 PCR 检测引物: 上游引物 P1 :5 null tgagggtagtcttgcacgcgaat 3 null 下游引物 P2 :5 null caaggtatcgatcgtctctctact 3 null PCR 反应体系为 25 nullL,其中 mix 12.5 nullL,ddH 2 O 5.5 nullL,P1 1 nullL,P2
11、1 nullL,DNA 模板 5 nullL。 反应条件:95 5 min ;95 30 s,59 30 s,72 45 s,35 个循环;72 10 min。 扩增片段长度 510 bp,扩增序列参见附录 C。 4.3.2.3 电泳 制备 1.2 % 琼脂糖凝胶板。取 5 nullL PCR 产物与 2 nullL 上样缓冲液混合,加入琼脂糖凝胶板的加样 孔中。加入分子量标准。盖好电泳仪,插好电极,60 V 80 V 稳压电泳,30 min 50 min。在紫外线灯下 观察照相存档;或者用紫外凝胶成像仪扫描图片存档。用分子量标准比较判断 PCR 片段大小。 4.3.2.4 结果判定 试验条件
12、成立判定:阴性对照无目的条带、阳性对照在约 510 bp 处出现一条特异性的扩增条带, 判定试验成立。 检测样品出现一条分子量为 510 bp 条带, 与阳性对照 PCR 产物同步迁移的大小相同条带,判为鸡 传染性鼻炎核酸阳性;检测样品在约 510 bp 处没有任何特异性条带, 与阴性对照相同,判为鸡传染性鼻 炎核酸阴性。 4.4 血清学检测 4.4.1 血清平板凝集试验 4.4.1.1 材料 4.4.1.1.1 鸡传染性鼻炎平板凝集试验抗原、阴性对照血清、阳性对照血清,使用前与被检血清一起 恢复至室温。 4.4.1.1.2 载玻片、微量加样器 1 个、灭菌吸头。 4.4.1.2 操作程序 4
13、.4.1.2.1 本试验在室温(20 25 )下进行。 4.4.1.2.2 先在玻板背面写好编号,每个样品间至少留 20 mm 空隙,再在每个序号边加抗原 15 nullL。 4.4.1.2.3 按玻板上的序号加对照或被检血清 15 nullL ,每个血清样品换一个吸头,将血清与抗原混匀, 反应持续 3 min 5 min,在此时间内观察结果。每次试验均设阴性、阳性对照。 4.4.1.2.4 在黑色背景或在灯下明亮处观察并记录结果。 4.4.1.3 结果判定与表示方法 血清平板凝集试验判定标准见表 1。 以正式出版文本为准 4 SN/T 1556 2020 表 1 血清平板凝集试验判定标准 编
14、号 反应表现 判定 记录符号 定性区分 1 有明显架状或片状凝集片,液体清亮 强阳性 + + + + +2 有大量针头样颗粒,量多,液体较清亮 阳性 + + + 3 针头样颗粒状,量较少,稍混浊 弱阳性 + 4 液体无颗粒,均匀而混浊 阴性 - - 4.4.2 血凝抑制试验 4.4.2.1 材料 4.4.2.1.1 鸡传染性鼻炎血凝抑制试验抗原及阴、阳性对照血清,均由指定单位提供。 4.4.2.1.2 生理盐水及被检血清。 4.4.2.1.3 新鲜红血球悬液及醛化红血球悬液,制备方法见附录 D 中 D.2、D.3。 4.4.2.1.4 96 孔微量血凝板(V 型)、微量振荡器、微量加样器及吸头
15、。 4.4.2.2 操作程序 本操作在 20 25 范围内进行,同时用 A、B、C 型抗原分别对被检血清进行以下操作,以全 面检测各型菌的感染情况。取洁净血凝板,将抗原用生理盐水从 5 倍开始做 2 倍递增稀释加入 1 11 列 孔中(即第 1 列孔为 5,第 2 列为 10,第 3 列为 20,依此类推至第 11 列),每孔最终液体量为 100 nullL,第 12 列孔只加生理盐水作为血球对照孔。每孔加 1 % 相应的红血球 100 nullL(A 型抗原用新鲜 红血球,B、C 型抗原用醛化红血球),充分振荡混合后,在室温静置 30 min 60 min(以血球对照孔中 红血球完全沉下为准
16、)。 判定抗原的血凝效价(HA 效价),即为使红血球发生完全凝集的抗原最大稀释倍数。 被检血清的吸收:将被检血清用 10% 相应的红血球进行 5 倍稀释(A 型抗原用新鲜红血球,B、C 型抗原用醛化红血球),室温下作用 4 h 或 4 过夜,中间充分振荡不少于 5 次,然后 1 500 r/min 离心 10 min,取上清液即为 5 倍稀释的被检血清。取洁净血凝板,从第 1 列孔开始,用生理盐水将每份被 检血清及阴性对照血清、阳性对照血清从 5 倍开始做 2 倍递增系列稀释,每行测定一份血清,每孔最 终液体量为 50 nullL,将抗原用生理盐水稀释至浓度为 4 个 HA 效价单位(如 HA
17、 效价为 1 : 160,则抗原 稀释至 40 倍),每血清孔中加入 50 nullL。充分振荡,于室温下静置 30 min 以上。每孔加入 1% 相应的红 血球 100 nullL(A 型抗原用新鲜红血球,B、C 型抗原用醛化红血球)。充分振荡,置室温下作用 30 min 60 min。分别判定被检血清样品血凝抑制(HI)效价,即完全抑制红血球凝集的最高血清稀释倍数。 4.4.2.3 结果的判定与表示方法 能完全抑制红血球凝集者判为阳性(HI 效价 1 : 5),阴性、阳性对照血清的结果应分别为阴性和 阳性。 4.4.3 间接酶联免疫吸附试验(I-ELISA ) 4.4.3.1 材料 4.4
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