DB61 T 1205-2018 全自动核酸提取与反应体系构建系统.pdf
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1、ICS 11.040.55 C 30 DB61 陕西省地方标准 DB 61/T 12052018 全自动核酸提取与反应体系构建系统 Full-automatic nucleic acid extraction and Reaction set-up system 2018 - 11 - 13 发布 2018 - 12 - 13 实施 陕西省质量技术监督局 发布 DB61/T 10252018 I 目 次 前言 . . II 1 范围 . . 1 2 规范性引 用文件 . . 1 3 术语和定义 . . 1 4 技术要求 . . 3 5 试验方法 . . 4 附录 A(规范性附录) 标准大气压下
2、不同温度时纯水的密度 . 8 DB61/T 10252018 II 前 言 本标准按照GB/T 1.12009给出的规则起草。 本标准由陕西省食品药品监督管理局提出并归口。 本标准起草单位:陕西省医疗器械质量监督检验院、西安天隆科技有限公司。 本标准主要起草人:蔡虎、苗保刚、李政、田真、彭年才、韩溟、刘立科。 本标准由陕西省医疗器械质量监督检验院负责解释。 本标准首次发布。 单位:陕西省医疗器械质量监督检验院 电话:029-33585319 地址:陕西省西咸新区沣西新城兴咸路中段 邮编:712046 DB61/T 10252018 1 全自动核酸提取与反应体系构建系统 1 范围 本标准规定了全
3、自动核酸提取与反应体系构建系统的术语和定义、技术要求、试验方法。 本标准适用于全自动核酸提取与反应体系构建,该系统由样本架、试剂架、运动系统、加样系统、 核酸提取模块、核酸检测反应体系构建模块等组成。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。 凡是注日期的引用文件, 仅注日期的版本适用于本文件。 凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB 4793.1 测量、控制和实验室用电气设备的安全要求 第1部分:通用要求 GB 4793.6 测量、控制和实验室用电气设备的安全要求 第6部分:实验室用材料加热设备的特殊要 求 GB 4793.9 测量、控制
4、和实验室用电气设备的安全要求 第9部分:实验室用分析和其他目的自动和 半自动设备的特殊要求 GB/T 14710 医用电气设备环境要求及试验方法 GB/T 18268.1 测量、控制和实验室用的电设备 电磁兼容性要求 第1部分:通用要求 GB/T 18268.26 测量、控制和实验室用的电设备 电磁兼容性要求 第26部分:特殊要求 体外诊断 (IVD)医疗设备 YY 0648 测量、控制和实验室用电气设备的安全要求 第2-101部分:体外诊断(IVD)医用设备的 专用要求 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 反应体系构建 reacti on set-up 按照特定的步骤和配比
5、,将参与反应的不同试剂组份进行配制混合,构建适用于样品检测的反应体 系的操作过程。 3.2 升温速率 heating rate 升温过程中单位时间内上升的平均温度值。 3.3 温度均匀性 temperature uniformity DB61/T 10252018 2 温度到达设定温度后,加热模块不同位置的温度一致性。 3.4 温度准确度 temperature accuracy 温度到达设定温度后,实际温度测定值与设置温度差值的绝对值。 3.5 温度波动度 temperatu re fluctuation 温度到达设定温度后, 恒温计时持续时间内, 温度采集仪器记录的最高温度与最低温度差值的
6、一半。 3.6 移液准确性 pipetting accuracy 仪器移液模块执行移液操作时,实际移取的液体体积与设定体积之间的差值。 3.7 移液精密度 pipetting precision 仪器移液模块执行移液操作时,相同体积进行多次移取时,实际移取的液体体积的一致性。 3.8 反应体系 reactio n system 样本经过自动加样、核酸提取、体系构建后,得到的用于后续检测的产物。 3.9 交叉污染率 cross contamination rate of sample detection 在检测过程中,由于强阳性样本的存在,导致阴性样本检测呈现假阳性结果现象的发生机率。 3.10
7、 假阳性 false p ositive 阴性样品被检测判定为阳性的百分比。 3.11 PCR polymerase chain reaction 聚合酶链式反应(Polymerase Chain Re action),是一种对特定DNA或RNA片段在体外进行快速扩 增的方法。 3.12 Ct值 cycle threshold 阈值循环数(Cycle threshold),是实时监测扩增过程中,反应管内荧光信号到达指数扩增时经 历的循环周期数。 3.13 标准差 standard deviation DB61/T 10252018 3 也称均方差,是各数据偏离平均数的距离的平均数,标准差是方差
8、的算术平方根,能反映一个数据 集的离散程度。 3.14 变异系数 coefficient of variation 是标准差与其平均数的比,和标准差一样,都是反映数据离散程度的绝对值。其数据大小不仅受变 量值离散程度的影响,而且还受变量值平均水平大小的影响。 4 技术要求 4.1 核酸提取温度控制 4.1.1 升温速率 从2590,升温速率应不小于2.0/s。 4.1.2 温度均匀性 不同温度测试点,温度差值应不大于2.5。 4.1.3 温度准确度 测定值与设置温度差值绝对值应不大于3。 4.1.4 温度波动度 应不大于2.0。 4.2 移液准确性及移液精密度 在移液量程范围内,选定高、中、低
9、3个不同的移液水平,进行检测。测定值与设定值的相对偏差、 测定值的变异系数应满足表1要求。 表1 移液准确性及精密度要求 体积范围 100l 100l300l 300l 相对偏差 8% 5% 3% 变异系数(CV,%) 5% 3% 2% 4.3 反应体系性能 4.3.1 交叉污染率 阴性样品检测结果的假阳性率5%,且假阳性定量结果低于定量检测下限。 4.3.2 精密度 分别对高、中、低3个不同浓度的样品进行重复检测,并对仪器构建的核酸反应体系进行实时荧光 定量PCR扩增,各浓度样本检测结果Ct值的变异系数(CV,%)应不大于3%。 4.3.3 线性 DB61/T 10252018 4 对5倍或
10、10倍浓度系列梯度稀释的样品(至少5个梯度)进行检测,并对仪器构建的核酸反应体系进 行实时荧光定量PCR扩增,各浓度样品检测结果Ct值与稀释倍数的线性相关系数r0.980。 4.4 环境试验要求 应符合GB/T 14710中适用条款的要求。 4.5 电气安全要求 应符合GB 4793.1、GB 4793.6、GB 4793.9和YY 0648中适用条款的要求。 4.6 电磁兼容要求 应符合GB/T 18268.1、 GB/T 18268.26中适用条款的要求。 5 试验方法 5.1 核酸提取温度控制 5.1.1 升温速率 编辑实验程序,将核酸提取温度设置为9010,加热持续时间不少于5min,
11、将温度传感器固定 在加热装置的测试点(该测试点应尽量靠近仪器内部传感器)上。开启数据采集仪,确认仪器正常,运 行程序。取250.5范围内任一温度点 TA,取900.5范围内任一温度点 TB,从 TA到达 TB经过的时 间记为 t,按照公式(1)计算加热装置的升温速率 V升 ,结果应符合本标准4.1.1的要求。 t TT V AB 升 . (1) 式中: 升 V 升温速率; B T 900.5范围内任一温度点; A T 250.5范围内任一温度点。 5.1.2 温度均匀性 编辑实验程序,分别将核酸提取温度设置为5010、75 10、10010范围内的任意 温度点,恒温时间15min,将温度传感器
12、固定在 加热装置的测试点(测试点应均匀分布在整个加热装置 上,并尽量靠近仪器内部传感器)上。开启数据采集仪,确认仪器正常,运行程序。用数据采集仪记录 加热装置的实际温度变化情况。在温度达到设置温度并稳定2min后,记录加热装置 n( n12)个测试点 的实际测量温度 T i( i=1,2, n),分别计算 Ti “最大值”及“最小值”的温度差值 T ,结果均应符 合本标准4.1.2的要求。 5.1.3 温度准确度 编辑实验程序,分别将核酸提取温度设置为6010、8010范围内的任意温度点,恒温时 间不少于5min。将温度传感器固定在加热装置的测试点(该测试点应尽量靠近仪器内部传感器)上。开 启
13、数据采集仪,确认仪器正常,运行程序。用数据采集仪记录加热装置的实际温度变化情况。在温度达 DB61/T 10252018 5 到设置温度并稳定2min后,计时2min,每20s记录一次测试点的实际测量温度 T i( i=1,2,6),其平 均值 TM与“设定值”的温度差值 T ,应符合本标准4.1.3的要求。 5.1.4 温度波动度 编辑实验程序,将核酸提取温度设置为8010范围内的任意温度点,设恒温时间15min。将温 度传感器固定在加热装置的测试点(测试点应尽量靠近仪器内部传感器)上。开启数据采集仪,确认仪 器正常,运行程序。用数据采集仪记录加热装置的实际温度变化情况。在温度达到设置温度并
14、稳定1min 后,每隔30s记录一次温度测值 Tj( j1,2 10),持续测定10次。并按公式(2)计算各个测值的温 度变化 T ,应符合本标准4.1.4的要求。 2 minmax TT T . (2) 式中: T 测试所得温度波动度; max T 测试所得温度最大值; min T 测试所得温度最小值。 5.2 移液准确性及精密度 采用称重法进行检测,操作方法如下: a) 使用脱气纯水进行试验; b) 将仪器、纯水等置于恒温、恒湿的实验室内平衡 2小时后,开始实验。准备与仪器适配的容器, 在分度值为 0.01mg 的电子天平上调零,去除容器空白质量; c) 将容器放置于仪器的移液目标位置,控
15、制移液器向容器内移取规定量纯水,在电子天平上称量 其质量 M 测试,i ; d) 每种规定移液量,重复称量 10 次。按公式(3)计算每次的实际加入量 V 测试,i ,按公式(4) 计算每种加入量的移液相对误差 E,按公式(5)计算每种规定量移液的变异系数 CV,结果应 符合本标准 4.2 的要求。 i, i, M V 测试 测试 . (3) 式中: i, V 测试 实际加入量; i, M 测试 实际测定质量; 测定温度条件下的脱气纯水密度,见附录A。 %100 规定 规定测试 V VV E . (4) 式中: E 移液相对误差; DB61/T 10252018 6 测试 V 实际加样量的算数
16、平均值。 规定 V 加样量设定值。 1 1 2 n VV S n i i,测试测试 . (5) 式中: S 加样量的标准偏差; n 加样量测试重复次数; i 测定次数编号, i=1, 2, 10; i, V 测试 实际加入量; 测试 V 实际加样量的算数平均值。 5.3 反应体系性能 5.3.1 交叉污染率 5.3.1.1 检测所需材料如下: a) 生产企业指定的有 CFDA注册的提取试剂盒及配套的定量 PCR 检测试剂; b) 高浓度阳性样本或质控品(浓度不低于 1.0 10 7 IU/ml)及阴性血清或小牛血清; c) 有 CFDA 注册的实时荧光定量 PCR 检测仪; d) 可调微量移液
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