DB41 T 1590-2018 饲料中阪崎肠杆菌的检测 EMA-PCR法.pdf

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1、 ICS 65.120 B 46 DB41 河南省地方标准 DB41/T 15902018 饲料中阪崎肠杆菌的检测 EMA-PCR 法 2018 - 04 - 17 发布 2018 - 07 - 17 实施 河南省质量技术监督局 发布 DB41/T 15902018 I 前 言 本标准按照GB/T 1.12009给出的规则起草。 本标准由河南省畜牧局提出并归口。 本标准起草单位：河南省兽药饲料监察所、河南中标检测服务有限公司。 本标准主要起草人：张发旺、董鹏、郑洪、狄元冉、方忠意、刘传辉、杜红鸽。 本标准参加起草人：高延玲、李金磊、李华岑、柴磊、巩丹、郑彬、朱雷、贾松涛、韩楠、臧合英、 徐坤、

2、杨希祥。 DB41/T 15902018 1 饲料中阪崎肠杆菌的检测 EMA-PCR 法 1 范围 本标准规定了饲料中阪崎肠杆菌的EMA-PCR检测方法。 本标准适用于饲料中阪崎肠杆菌的检测。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。 凡是注日期的引用文件， 仅注日期的版本适用于本文件。 凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。 GB 4789.40 食品安全国家标准 食品微生物学检验 克罗诺杆菌属（阪崎肠杆菌）检验 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 14699.1 饲料 采样 3 原理 叠氮溴化乙锭（EMA）能够透过死细

3、菌的细胞膜，在强光照射下可与其DNA发生不可逆转的结合，使 死细菌DNA不能作为模板进行PCR扩增，而活菌能进行PCR扩增。 4 试剂和材料 4.1 除另有规定外，试剂为分析纯或生化试剂，试验用水符合 GB/T 6682 一级水的要求。 4.2 缓冲蛋白胨水（BPW）：见附录 A 的 A.1。 4.3 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤-万古霉素（mLST-Vm）：见附录 A 的 A.2。 4.4 2Premix Taq 缓冲液：内含 Taq DNA 聚合酶 1.25 U/25 L，4 mmol Mg 2+ ，dNTP 各 0.4 mmol。 4.5 特异性引物(对) 序列为： a）上游引物：5-C

4、TG CTC TGC TGA CGA GTG G-3； b）下游引物：5-CAT CTC TG C AGG ATT CTC TGG A-3。 4.6 琼脂糖：电泳级。 4.7 Marker 2000。 4.8 阪崎肠杆菌 ATCC 25944。 4.9 50TAE 缓冲液：见附录 A 的 A.3。 4.10 6上样缓冲液：见附录 A 的 A.4。 4.11 叠氮溴化乙锭（EMA，0.2 mg/mL）：见附录 A 的 A.5。 4.12 溴化乙锭（10 mg/mL）。 4.13 灭菌离心管：1.5 mL，15 mL。 5 仪器设备 DB41/T 19502018 2 5.1 PCR 仪。 5.2

5、 天平：感量 0.01 g。 5.3 电热恒温培养箱。 5.4 离心机：转速12 000 r/min。 5.5 浊度仪。 5.6 卤素灯：照度25 000 勒克斯（Lux）。 5.7 核酸电泳仪。 5.8 凝胶成像系统。 5.9 微量移液器：0.5 L10 L，10 L100 L，100 L1000 L，1 mL10 mL。 5.10 涡旋仪。 6 样品采集与制备 按GB/T 14699.1的规定采样，将样品充分混匀后密封低温保存，整个过程避免人为污染。 7 检验步骤 7.1 增菌 取25 g试样于225 mL 的缓冲蛋白胨水（4.2）中，充分混匀，361培养 18 h2 h 进行预增菌， 取

6、1 mL 预增菌液转移至 10 mL 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤-万古霉素增菌液 （4.3） 中， 44 0.5 培养 24 h2 h。如果试样量不足 25 g，试样质量与增菌液的体积比应为 19。 7.2 模板的制备 取1 mL增菌液至离心管中， 12 000 r/min离心2 min， 弃上清。 加入1 mL灭菌水悬浮沉淀物， 12 000 r/min 离心2 min，弃上清，重复洗涤一次。加适量灭菌水悬浮沉淀物并调节菌悬液浓度至0.5麦氏单位（MCF）。 取0.2 mL菌悬液至离心管中，加入0.5 L EMA溶液（4.11）混匀，避光孵育5 min。将离心管开盖置于冰 上，卤素灯照射下

7、曝光1 min，然后水浴煮沸10 min，再将离心管转移至冰浴中使其快速冷却。涡旋混匀 裂解物， 12 000 r/min离心2 min， 收集上清液， 作为PCR扩增模板 （模板制备可选用等效的商品化试剂盒） 。 检测过程中分别设阳性对照和阴性对照，用添加阪崎肠杆菌阳性标准菌株的样品作为阳性对照，用不含 阪崎肠杆菌的样品作为阴性对照。 7.3 PCR 扩增 采用 50 L 反应体系：2Premix Taq 缓冲液（4.4）25 L，模板 5 L，浓度为 20 mol/L 的上、 下游引物各 1 L，灭菌水 18 L。 反应程序为：95 预变性 5 min；35 个循环：95 变性 30 s，

8、60 退火 30 s，72 延伸 40 s；72 终延伸 5 min 后 4 保存。 7.4 电泳检测 PCR 扩增产物 称取1.2 g琼脂糖（4.6）加入100 mL 1TAE电泳缓冲液（4.9）中，加热使其充分熔化，冷至65 左右，加入5 L溴化乙锭（4.12），充分混匀，根据需要在模板内放入合适的梳子，倒入凝胶制成约 5 mm厚的胶块。 在电泳槽中加入适量1TAE缓冲液， 使液面没过凝胶2 mm左右。 取PCR扩增产物5 L8 L DB41/T 15902018 3 与1 L 6上样缓冲液（4.10）混合后加入到上样孔内，取Marker 2000（4.7）点样。5 V/cm8 V/cm

9、恒压下电泳20 min30 min。 电泳结束后，将琼脂糖凝胶置于凝胶成像仪中观察结果。 8 结果判定 8.1 结果分析条件设定 如果阪崎肠杆菌阳性对照的PCR产物在932 bp处出现条带（参见附录B），同时阴性对照PCR产物于 932 bp处未出现条带，则检测结果成立；否则结果无效，应重新进行检测。 8.2 阳性判定 样品的PCR产物电泳后在932 bp处出现条带，则为疑似阳性样品，此时需按GB 4789.40进行确证， 最终结果以后者检测结果为准。 8.3 阴性判定 样品的PCR产物电泳后在932 bp处未出现条带，判定25 g样品中未检出阪崎肠杆菌。 DB41/T 19502018 4

10、A A 附 录 A （规范性附录） 培养基和试剂 A.1 缓冲蛋白胨水（BPW） A.1.1 成分 蛋白胨 10.0 g 氯化钠 5.0 g 磷酸二氢钾 1.5 g 磷酸氢二钠（Na 2HPO412H 2O） 9.0 g 水 1 000 mL A.1.2 制法 加热搅拌至溶解，调节至pH7.20.2，121 高压灭菌15 min。 A.2 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤-万古霉素 A.2.1 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨（mLST）肉汤 A.2.1.1 成分 氯化钠 34.0 g 胰蛋白胨 20.0 g 乳糖 5.0 g 磷酸二氢钾 2.75 g 磷酸氢二钾 2.75 g 十二烷基硫酸钠 0.1 g

11、 水 1 000 mL A.2.1.2 制法 加热搅拌至溶解，调节至pH6.80.2。分装每管10 mL，121 高压灭菌15 min。 A.2.2 万古霉素溶液 A.2.2.1 成分 万古霉素 10.0 mg 水 10.0 mL A.2.2.2 制法 10.0 mg万古霉素溶解于10.0 mL水中，过滤除菌。万古霉素溶液可以在0 5 保存15 d。 DB41/T 15902018 5 A.2.3 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤-万古霉素（mLST-Vm） 每10 mL mLST加入万古霉素溶液0.1 mL，混合液中万古霉素的终浓度为10 g/mL。 注： mLST-Vm必须在24 h之内使用。

12、 A.3 50TAE电泳缓冲液 A.3.1 成分 三羟甲基氨基甲烷（Tris） 242.0 g 乙二胺四乙酸二钠（Na 2EDTA 2 H2O） 37.2 g 冰乙酸 57.1 mL 灭菌水 942.9 mL A.3.2 制法 Tris和乙二胺四乙酸二钠溶于800 mL灭菌水， 充分搅拌均匀； 加入冰乙酸， 充分溶解； 用1 mol/L NaOH 调节至pH8.3，定容至1 L后，室温保存。使用时稀释50倍即为1TAE电泳缓冲液。 A.4 6上样缓冲液 A.4.1 成分 溴酚蓝 0.5 g 二甲苯氰FF 0.5 g 0.5 mol/L乙二胺四乙酸（EDTA，pH8.0） 0.06 mL 甘油

13、360 mL 灭菌水 640 mL A.4.2 制法 0.5 mol/L EDTA（pH8.0）溶于500 mL灭菌水中，加入溴酚蓝和二甲苯氰FF溶解，与甘油混合，定容 至1 000 mL，分装后4 保存。 A.5 叠氮溴化乙锭（EMA） A.5.1 成分 叠氮溴化乙锭 5 mg 灭菌水 25.0 mL A.5.2 制法 5 mg叠氮溴化乙锭溶于5 mL灭菌水中，定容至25 mL，充分混匀，分装后-20 避光保存。 DB41/T 19502018 6 B B 附 录 B （资料性附录） 阪崎肠杆菌活菌 EMA-PCR 扩增电泳图 阪崎肠杆菌活菌EMA-PCR扩增电泳图参见图B.1。 说明： MMarker 2000； 1阴性对照； 2阳性对照。 图B.1 阪崎肠杆菌活菌 EMA-PCR 扩增电泳图 _