WS 216-2001 登革热诊断标准及处理原则.pdf
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1、WS 216-2001前言登革热(dengue fever,简称为DF)是由1-4型登革病毒(Dv)引起的主要由埃及伊蚊和白纹伊蚊传播的急性传染病。登革热临床表现复杂多样,具有传播迅猛、发病率高及严重类型(登革出血热、登革休克综合征)病死率较高、人群普遍易感等特点,加上登革热的输人性、突发性,易致误诊、漏诊,造成传染源“逍遥”传播,而致疫情报告、调查处理不及时从而造成疫情蔓延。在我国,登革热属输人性流行(尚无证据表明国内存在登革热疫源地),台湾、广东、海南、广西等地区曾发生登革热暴发流行,云南也发现有本病存在。登革热诊断标准和处理原则的制定,有利于及早诊断病例,发现疫情,减少误诊漏诊,正确治疗
2、,降低病死率,可以及早正确处理疫情、落实以防制伊蚊为主的综合性防治措施,预防和控制疫情的发生和蔓延。本标准的附录A-E都是提示的附录。本标准由卫生部疾病控制司提出。本标准负责起草单位:广东省卫生防疫站本标准主要起草人:郝瑞丰、罗会明、彭文伟(中山医科大学)、梁风屏。本标准由卫生部委托卫生部传染病监督管理办公室负责解释。中华人民共和国卫生行业标准登革热诊断标准及处理原则WS 216-2001Diagnostic criteria and principle of management of dengue fever根据中华人民共和国传染病防治法及其中华人民共和国传染病防治法实施办法制定本标准。1
3、范围本标准规定了登革热(DF)的诊断标准及处理原则。本标准适用于各级、各类医疗、卫生、保健机构和人员诊断、治疗登革热病例及预防控制登革热疫情2诊断原则依据患者的流行病学资料、临床表现及实验室检查结果综合进行临床诊断,确诊须有血清学或病原学检查结果。3诊断标准3.1流行病学资料生活在登革热流行地区或15d内去过流行区,发病前5-9d曾有被蚊虫叮咬史。3.2临床表现3.2.1突然起病,畏寒、发热(24-36 h内达39-40C,少数患者表现为双峰热),伴疲乏、恶心、呕吐等症状3.2.2伴有较剧烈的头痛、眼眶痛以及肌肉、关节和骨骼痛。3.2.3伴面部、颈部、胸部潮红,结膜充血。3.2.4表浅淋巴结肿
4、大。3.2.5皮疹:于病程5-7d出现为多样性皮疹(麻疹样皮疹、猩红热样疹)、皮下出血点等。皮疹分布于四肢躯干或头面部,多有痒感,不脱屑。持续3 d-5 d,3.2.6少数患者可表现为脑炎样脑病症状和体征。3.2.7有出血倾向(束臂试验阳性)一般在病程5-8 d牙眼出血、鼻妞、消化道出血、皮下出血、咯血、Abh3-21阴道出血或胸腹腔出血。多器官大量出血肝肿大。伴有休克910实验室检查末梢血检查:血小板减少(低于10O X 101/1)。白细胞总数减少,淋巴细胞和单核细胞分类计数3232划3.3.1相对增多3.3.2血红细胞容积增加2000以ho3.3.3单份血清特异性IgG抗体阳性(见附录A
5、)e中华人民共和国卫生部2001一11-23批准2002一05一01实施WS 216-2001血清特异性坛M抗体阳性(见附录A)恢复期血清特异性IgG抗体比急性期有4倍及以上增长(见附录A),从急性期病人血清、血浆、血细胞层或尸解脏器中分离到Dv或检测到Dv抗原(见附录B),病例分类疑似病例:具备3.1,3.2.1,3.2.2,以及3. 2. 3-3. 2. 7之一以上者。临床诊断病例:疑似病例加3.3.1(登革热流行已确定)或再加3.3.3(散发病例或流行尚未确川3.3.53.3.63.4341342定)。3.4.3确诊病例:登革热:临床诊断病例加3.3.4,3.3.5,3.3.6中的任一项
6、。登革出血热:登革热确诊病例加3.2.8,3.2.9,3.3.2,登革休克综合征:登革出血热加3.2.10.4预防原则落实以防制埃及伊蚊、白纹伊蚊为主的综合性防治措施。深人开展宣传教育,抓好疫情监测、控制(见附录D,E),4.1预防性灭蚊因地制宜,采用综合方法,以清除伊蚊孽生地和消灭幼虫为主,处理竿生地要针对不同蚊种采取相应的措施。将伊蚊布雷图指数(Breteau index)长期控制在20以下。注:伊蚊布雷图指数指平均每百户内有伊蚊幼虫草生容器数4.2疫点紧急灭蚊对疫点、疫区必须进行室内外的紧急杀灭成蚊,尤其要做好流行区内医院和学校范围内的灭蚊工作。同时,采取各种措施消灭伊蚊幼虫草生地,清除
7、幼虫,限期将疫区范围内伊蚊布雷图指数降至5以下。4.3保护易感人群加强宣传教育,提高群众自我保护意识。在流行区流行季节尽量减少集会。减少人群流动。加强个人防护,白天防止伊蚊叮咬传播。4.4必要时可实施对交通工具灭蚊和对有关人员进行检疫观察。5治疗原则早发现、早隔离、早就地治疗。对症支持治疗、一般治疗、预防性治疗(预防出血、休克出现)(见附录C)WS 216-2001附录A(提示的附录)登革热血油学检测方法AlAl. 1应用IgM捕捉ELISA法检测DF1gM抗体原理根据抗原抗体特异性结合的原理,利用杭人K链单克隆抗体捕获待检测血清中的IgM再加人特异性抗原和相应酶标单克隆抗体,加底物显色显色程
8、度与特异性IgM抗体含量呈正相关,以待检血清与特异性抗原和阴性血清(对照)与抗原反应光密度(OD)值的比值,作为判定坛M抗体反应的标准。Al. 2材料A1.2.1 96孔聚苯乙烯U型塑料板、酶标仪。Al-2-2 10-100 PI可调加样器1支、10 ml吸管若干。Al. 2.3抗人IgM年链)单克隆抗体Al. 2.4抗原a Cfi/36细胞培养的各型DV为阳性抗原。b)未接种病毒的正常C,/36细胞为阴性抗原对照口(抗原制备:病毒接种Cfi/36细胞,病变达“+十十”,冻融3次,用波长1422 kHz超声波粉碎3次,每次30 s,3 000 r/min离心15 min,上清即为抗原。Al.
9、2.5抗IgM阴性或阳性对照血清Al. 2.6辣根过氧化物酶标化DV1-4型单克隆抗体。Al. 2.7缓冲液a.洗液:0. 05%吐温-20 pH7.4PBSb稀释液:10%牛血清pH7. 4PBS。.封闭液:1%牛血清白蛋白pH9. 6碳酸缓冲液Al. 2.8底物:邻苯二胺溶液(pH5. 0磷酸盐柠檬酸盐缓冲液100 mL,邻苯二胺40 mg,30%过氧化氢溶液。.15 ml,临用前按需配制,立即使用)Al. 2.9终止液:1 mol/I硫酸。A1. 3检测方法A1. 3门用稀释液按效价稀释抗人u链,每孔加。.1 MI,加盖,4 C过夜。Al. 3.2弃去抗人11链,用洗涤液重复洗3次,甩千
10、,加封闭液,每孔。. 1 mL,37 C水浴2 h.Al. 3.3弃封闭液,用洗涤液重复洗涤3次,甩干,加l,10待检血清,每标本加10孔每孔0. I nil.,37水浴2 h,Al. 3.4弃血清,用洗涤液重复洗涤3次,甩干,分别加4个型DV抗原及阴性抗原对照,按顺序各加2孔至每份待检血清的10个孔中,每孔。1 ml- 4C过夜。A1. 3.5弃抗原,用洗涤液重复洗涤3次,甩干,加用稀释液稀释至工作浓度的相应的DF酶标单克隆抗体,正常抗原加四个型混合的酶标单克隆抗体,每孔0.1 ml- 37C水浴2 h,.3.6去标记物,用洗涤液重复洗涤3次,甩干,每孔加人新鲜配制的底物液0. 1 ml-
11、37 C水浴m讯,显色3了.:.1每孔加1 mol/I硫酸溶液0. 05 ml,终止反应。结果判断酶标检测仪测定OD值(空白对照调零),见式(Al)A130AI引AlWS 216-200101)一OD,OD,一OD.(A1)式中:OD一一血清与病毒抗原反应的OD值;OD,空白孔的OD值;ODD血清与正常抗原反应的OD值。K)2.1判为阳性。A1.4.2 H测法:阳性抗原孔呈淡黄色、桔黄色或浅棕黄色,阴性抗原基本无色。Al. 5意义坛M抗体阳性,表示患者新近感染DV,适用于DF早期诊断。A2血凝抑制(HI)试验检测DF血凝抑制抗体A2.1原理DV有血凝素抗原,在适宜的pH条件一F能凝集鹅、鸡及绵
12、羊红细胞,引起红细胞凝集现象。这种现象能被加人的特异抗体所抑制,称之为血凝抑制试验(HI ),可用于血凝抑制抗体的测定。A2.2材料A2.2-1 U型塑料板(96孔)。A2.2.2 10-100 PL,100-1 000 PI可调加样器、10 mL吸管。A2.2.3 1-v4型DV鼠脑蔗糖丙酮抗原或DV C6/36细胞抗原,抗原与同型抗体滴度应大于与异型抗体交叉反应2个滴度以上。A2.2-4稀释液:pH6.4磷酸缓冲液,用于稀释鹅血球。pH9. 0硼酸缓冲盐水,用于稀释血凝素和血清。A2.2-5鹅血球:于鹅翅下静脉抽血,置于血球保存液混匀,用生理盐水洗3次,最后以2 000 r/min离心15
13、 min,弃去_r_清,用pH6.4PBS稀释至0.500鹅血球悬液,4C保存备用。A2.2.6待检血清处理:用生理盐水把血清稀释成1,10,置56 C水浴灭活30 min,用10倍量4C丙酮处理2次,离心去上清,沉淀物真空于燥,加人pH9. 0硼酸缓冲盐水恢复到1:10浓度,4C过夜。然后每管加人50%鹅血球0. 05 ml-,37 C水浴30 min,离心沉淀取上清,即为1:10处理血清。阴、阳性对照血清同方法处理。A2.3检测步骤A2.3-1血凝素滴定在塑料板上,每TL加pH9.。硼酸缓冲盐水25 pL,各取1-4型nV抗原25 pL各置于第1孔,作倍比稀释,最后一孔混匀后弃25 pL。
14、然后于每孔补加pH9. 0稀释液Z5 pL,各加。.5%鹅血球50讨一棍匀,置于37水浴作用2h,结果以最高稀释度出现“+”为1个血凝单位,正式试验用4个单位。A2. 3. 2血凝抑制试验在塑料板中,除第1孔外,于各孔加人pH9. 0硼酸缓冲盐水25 IL,第1,2孔和第S孔分别加人25川已处理待检血清,从第2孔开始,作倍比稀释,最后一孔不稀释,补加pH9. 0硼酸缓冲盐水25川,然后按顺序于第1排至第4排各分别加人1)V 1-4型4个单位的血凝抗原25川,最后一孔不加抗原,混匀,放37 C水浴2h,再于每孔加。.5 0/n鹅血球50川,混匀,37水浴2h,观察结果。A2.4结果判断以完全抑制
15、鹅血球凝集的血清最高稀释度倒数为血凝抑制抗体效价。A2.5意义恢复期血清滴度比急性期血清滴度有4倍增高可确诊。WS 216-2001A3A3. 1补体结合(CF)试验原理补体有结合抗原一抗体复合物的特性。病毒抗原与特异性抗体(试验材料)形成复合物时,加人一定量补体,则补体与之结合,不再以游离的形式存在,此时,加人另一对抗原一抗体(羊血球溶血素)。由于后者没有游离的补体参与反应,结果不溶血,表示补体已结合于抗原一抗体复合物中,称为阳性,如试验材料中没有病毒抗原一抗体复合物,则加人的定量补体仍以游离的形式存在,与再加人的羊血球溶血素反应而显溶血,此为阴性。A3.2材料及方法(略)A3.3意义单份血
16、清抗体滴度达1:32,对诊断登革热有参考意义,恢复期血清比急性期血清抗体滴度有4倍抗体增长可确诊。用免疫荧光法(FA /IFA )检测双份血清IgG抗体1原理某些荧光素(常用异硫氰酸荧光素)能与抗体蛋白分子结合,而不丧失抗体活力,仍能和相应的抗原.孟月月AA发生特异免疫反应,产生免疫复合物,这种复合物由于有荧光色素的参与,在荧光显微镜下显示荧光,表明有特异性抗原存在。直接免疫荧光法可用于检测感染细胞内的特异性抗原,间接免疫荧光法可查待检血清中的特异性抗体。A4.2材料A4. 2. 1 10100 rd-100-1 000 1)L可调移液器各1支。A4.2.2 DV1-4型抗原片(登革标准毒株感
17、染Cs/36细胞制备,低温干燥保存)及相应单克隆抗体(阳性对照)、阴性血清。A4.2-3羊抗人(兔抗人)IgG荧光抗体。A4. 2. 4待检患者血清(急性期和恢复期)A4.2.5常用稀释液:1)117. 2- 7. 4PBS、伊文斯兰、封片胶等。A4.2. 6荧光显微镜。A4.3检测步骤A4. 3.1取出抗原片,冷风吹干。A4. 3. 2用pH 7.2 7.4PBS稀释待检血清,从1,20开始,倍比稀释至所需稀释度。A4. 3. 3用加样器依次从高稀释度向低稀释度逐个加人稀释的待检血清于四个型的DV抗原片孔中.每型各加2孔待检系列稀释血清,血清量以完全覆盖抗原面而不溢出孔外为准,置湿盒内,在3
18、7C水浴孵育30 min(每次试验同时作阴、阳性对照)。A4.3.4用pH 7. 2-7. 4PBS洗涤3次,每次约30 s至1 min.再用蒸馏水洗1次,冷风吹干。A4.3.5用pH7. 2-7. 4PBS稀释荧光抗体,使其内含2个工作单位和1 , 8 000伊文斯兰的荧光抗体,加人各孔中,使完全覆盖抗原面,置湿盒中,37 C水浴作用30 min,取出,如A4.3.4洗涤及吹干。A4. 3. 6用封片胶(或甘油缓冲液)封片,荧光显微镜观察结果。A4.4结果判断特异性荧光呈黄绿色颗粒,分布在感染细胞浆中。根据荧光亮度和阳性细胞在细胞总数中所占的比例可将荧光反应大致区分为“十+斗”,无荧光者为“
19、一”。检测抗体滴度时,以特异荧光达.斗十”最高血清稀释度的倒数表示A4.5意义WS 216-2001阳性结果,表明提供血清的个体曾受到DV感染,大于I, 80有诊断参考意义。恢复期抗体滴度比急性期抗体滴度有4倍或以上升高则可确诊。A5A5.1免疫斑点(dengue blot)试验检测DV-IgG抗体原理根据抗原抗体特异性结合的原理,把抗原固定于硝酸纤维素膜载体,与待测血清的特异性抗体结合成抗原抗体复合物,再与酶标记物结合.通过酶与底物作用产生颜色,表示阳性,阴性不显色。A5.2材料及方法(略)A5.5意义阳性结果可作为DV感染参考。早期血清“一”,恢复期血清“+”确诊DV感染。中和试验(NT)
20、1原理使用对病毒敏感的动物、细胞或鸡胚为材料,测定病毒受免疫血清中和残存感染力与对照试验组比计算出中和指数。2材料和方法(略)3意义中和指数在9以下为阴性,1049为可疑,50以上为阳性。用于鉴定病毒和疾病诊断。.卜口CUAA轿A6A6.附录B(提示的附录)登革热病原学检侧B1应用单克隆抗体免疫荧光法(mbAb-I FA )检测DV抗原81.1原理感染DV的蚊虫体内,携带有DV抗原,可用DV单克隆抗体免疫荧光法检出蚊体内的特异性抗原。111-2材料多孔载玻片、10-100 pL可调加样器、染色钵、试管、pH 7. 2PBS D, D,型单克隆抗体、羊抗鼠IgG、丙酮等。111-3检测步骤(间接
21、法)B1. 3.1蚊虫标本制备:待蚊虫胃内容物消化后,置-40C冻死,用解剖刀去翅、肢,将头部和躯体分别放于载玻片圈内,盖上一块与之相对应的玻片,轻轻加压,使蚊组织最大限度地附在玻片上,小心分开两玻片,用镊子去除大片的骨骼,吹干,冷丙酮固定10 min,111. 3.2用PBS轻轻洗一次,再用蒸馏水洗一次,吹干。111.3.3加DF单克隆抗体.覆盖蚊组织.置于湿盒中,37 C水浴30 mine81.3.4取出,用PBS洗2次,蒸馏水洗I次,吹干。B1. 3.5加羊抗鼠IgG,如B1. 3. 3,B1. 3.4,孵育,洗涤。111. 3.6封片胶封片,荧光镜检。如单抗己荧光标记则免去B1. 3.
22、 5,即为直接法。Bl.4结果判断WS 216-2001用荧光显微镜观察,检出组织细胞胞质内有特异性黄绿色荧光,判为阳性,阴性无荧光出现。B1. 5意义在蚊虫组织中,检出DV抗原,可确诊被检蚊虫携带有DV,可用于登革热流行病学调查。B2 C6/36白纹伊蚊细胞分离DVB2.1原理DV是一种具有严格的细胞内存活的生物,必须生活在活的细胞组织内,C,/36白纹伊蚊细胞对DV十分敏感,藉观察病毒对其产生的变化(病变等现象)和应用特异、敏感的检测技术,检出病毒的存在和型别B2.2材料C,/36白纹伊蚊细胞、新生小牛血清、日本Eagles、青霉素、链霉素、各型DV单克隆抗体、羊抗鼠荧光IgG及免疫荧光试
23、验用品。B2.3检材的采集及处理B2.3. 1病人:无菌采集发病后5d内静脉血3 mL,放冰壶送实验室分离血清接种组织培养,不能及时接种的可放一20 C保存,对污染的血清要先加青霉素、链霉素(最终浓度各为500 kU/I_).4 C作用2h处理后接种。接种后余下的血清为早期血清,供血清学试验用。B2.3.2尸体检材:可取血、脑脊液、脑组织、肝等。B2.3.3蚊:采集吸过血的埃及伊蚊,白纹伊蚊或其他可疑蚊种,用0. 50 mol/L(10%)葡萄糖液喂养,至胃血完全消化后置-z0 C,待死后按蚊种及捕获地点分组.以5-10只一组为宜.经生理盐水冲洗数次后,用研磨器研碎,每组加。. 5 ml, H
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