DB43 T 860-2014 杂交水稻种子真实性和纯度鉴定SSR分子标记法.pdf
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1、DB43/T 8602014湖南省地方标准DB43湖南省质量技术监督局 发 布2014-03-01 实施2014-02-13 发布ICS 67.060B 21SSR分子标记法杂交水稻种子真实性和纯度鉴定hybrid rice seeds by using SSR markersIdentification of genuineness and purity ofDB43/T 8602014 I 目 次 前言 1 范围 12 规范性引用文件 13 术语和定义 14 原理 25 主要仪器设备 26 主要试剂 27 分析步骤 3附录 A(资料性附录) 试剂配制 5附录 B(资料性附录) PCR 反应
2、试剂配制 7附录 C(资料性附录) 推荐使用的 48 对 SSR 引物在水稻基因组分布及其序列 8参考文献 10DB43/T 8602014 II 前 言 本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。 本标准由湖南省水稻研究所提出,由湖南省农业标准化技术委员会归口。 本标准起草单位:湖南省水稻研究所、湖南省种子管理局。 本标准起草人:詹庆才、李稳香、朱克永、龚浩如、刘之熙、罗建军、熊伏星、陈祖武、陶曙华、陈英姿、曾曙珍。 DB43/T 8602014 1 杂交水稻种子真实性和纯度鉴定 SSR分子标记法 1 范围 本标准规定了杂交水稻种子真实性和纯度的SSR分子标记鉴定方法。 本标准适用
3、于杂交水稻种子及其植株真实性和纯度的鉴定。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB/T 3543.4 农作物种子检验规程 发芽试验 GB 4404.1 粮食作物种子 禾谷类 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本标准。 3.1 种子的真实性 genuineness of seed 供试品种与国家长期库保存样本和数据库信息、新品种审定信息、新品种保护信息是否相符。 3.2 品种纯度 varietal p
4、urity 本品种在特征特性方面典型一致的程度,用本品种的种子数占供检本作物样品种子数的的百分率表示。 3.3 变异株 off-type 一个或多个性状(特征特性)与原品种育成者所描述的性状显著不同的植株。 3.4 SSR标记 simple sequence repeat,SSR 即简单重复序列,又称微卫星序列或短串联重复序列,大多由15个核苷酸重复单位聚集而成的一般长达100200个碱基的串联重复序列。 3.5 聚合酶链式反应 polymerase chain reaction,PCR 一种在体外大量扩增目的基因或特定DNA片段的分子生物学技术,该技术以短核苷酸序列作为引物,并使用一种耐高温
5、的DNA聚合酶,只需非常少量(通常在纳克级范围内)的DNA样品,在短时间内以样品DNA为模板合成上亿个拷贝。 DB43/T 8602014 2 4 原理 SSR真实性鉴定是利用分布在12条染色体上48对SSR引物,扩增标准样品与送检样品DNA,比对同一SSR位点处DNA序列扩增谱带的多态性,鉴定送检样品真实性。 SSR纯度鉴定是选用双亲互补型引物,利用SSR标记的共显性特征,对送检样品的DNA进行扩增,根据产生的父母本互补谱带的位置,鉴定送检样品的纯度。 5 主要仪器设备 5.1 PCR扩增仪 5.2 紫外凝胶成像系统 5.3 电泳仪:最高电压2000 V,最大功率100 W 5.4 水平电泳
6、槽及配套的灌胶附件 5.5 微量可调移液器:规格分别为10 L、200 L、1000 L连续可调 5.6 低温冰箱:最低温度20 5.7 高压灭菌锅:120 2 5.8 恒温水浴锅:温控精确度1 5.9 光照培养箱:控温范围1060 5.10 冷冻离心机:最大离心力20000 g 5.11 电子天平:分度值0.01 g 6 主要试剂 除非另有说明,本标准所用试剂均为分析纯,所有水符合GB/T 6682中规定的三级以上水的要求。相关试剂配制要求见附录A。 6.1 DNA提取试剂盒 6.2 DNA提取试剂盒 6.3 2xCTAB提取缓冲液 6.4 70%冷乙醇 6.5 95%冷乙醇 6.6 高盐缓
7、冲液 6.7 TE缓冲液 6.8 6x上样缓冲液 6.9 溴化乙锭溶液 6.10 Taq DNA聚合酶 DB43/T 8602014 3 6.11 dNTP 6.12 引物 6.13 氯仿:异戍醇(24:1) 6.14 异丙醇 6.15 TAE缓冲液 6.16 琼脂糖 7 分析步骤 7.1 样品DNA提取 7.1.1 用于真实性鉴定的样品DNA的提取 按GB/T 3543.4规定的方法,从送检样品及对照样品中随机各抽取至少200粒种子发芽。送检样品及对照样品的种子质量均应符合GB 4404.1中对水稻种子纯度的要求。选取100根混合苗(约0.5 g材料),用液氮研磨,加入0.5 mL 2xCT
8、AB提取缓冲液充分混匀后,加入0.5 mL CTAB缓冲液。在(5565)恒浴30 min。加入1 mL氯仿:异戊醇(24:1), 充 分 摇动5 min,8000 g,室温下离心5 min。取上清液加入0.6x体积异丙醇,室温下30 min,5000 g,4 离心5 min。沉淀用0.8 mL 高盐缓冲液充分溶解,15000 g 离心2 min,上清加入0.6x体积异丙醇,室温下30 min,5000 g,4 离心5 min。沉淀用400 L双蒸水溶解,加入2.5x体积95%的冷乙醇,20 冰箱中2 h 以上,15000 g 离心20 min。用70%的冷乙醇洗一次,自然干燥后,用200 L
9、 0.1xTE缓冲液溶解。用时稀释100x,取1 L进行PCR反应,或置4 保存。 7.1.2 用于纯度鉴定的样品DNA的提取 按GB/T 3543.4规定的方法,从送检样品中抽取500粒种子发芽。分单株剪取(0.51)cm长的水稻幼苗,放入96孔PCR板的孔中,每孔1株幼苗样品。每孔加入40 L DNA提取试剂盒缓冲液,在沸水中30 s,然后加入60 L DNA提取试剂盒缓冲液,在沸水中煮沸2 min,取1 L进行PCR扩增,或置4 保存,保存不超过7 d。 7.2 PCR扩增 7.2.1 真实性鉴定引物筛选 真实性鉴定时先用24对引物(附录C推荐类型为)进行筛选,如未检测到差异,再用另外2
10、4对引物(附录C推荐类型为)进行筛选。推荐使用的48对基本核心引物及其序列参见附录C。 7.2.2 纯度鉴定引物筛选 用(2448)对多态性强的引物进行筛选,找出带型清晰的23对多态性引物。 7.2.3 标准PCR反应液的配制及扩增准备 在10 L的反应体积中进行。反应体积包含0.2 mol/L引物,0.1 mmol/L dNTP,0.6单位Taq DNA 聚合酶,1 L 10xPCR反应液(100 mmol/L Tris-HCl,pH8.3,15 mmol/L MgCl2,500 mmol/L KCl,DB43/T 8602014 4 0.01%的明胶),模板DNA为10 ng,相关PCR反
11、应试剂的配制参见附录B。 100管PCR反应试剂的配制:在1.5 mL的离心管中,加入100 L 10xPCR反应液(含Mg), 50 L dNTP(2 mmol/L), 12 L Taq DNA 聚合酶(5 U/L),40 L引物(正向引物和反向引物各5 mol/L),加入双蒸水698 L,充分混合。取一高压灭菌的96孔PCR板,每孔中加入1 L DNA和9 L PCR反应试剂,相关PCR反应试剂的配制参见附录B。 真实性鉴定的扩增反应条件为:94 变性4 min,然后是94 30 s,55 30 s,72 1 min进行35个循环,最后72 延伸7 min。反应用96孔PCR盘在PCR扩增
12、仪上进行。 纯度鉴定的扩增反应条件为:94 变性4 min,然后是94 15 s,55 15 s,72 30 s进行35个循环,最后72 延伸5 min。反应用96孔PCR盘在PCR扩增仪上进行。 7.3 凝胶制备 称取4 g琼脂糖凝胶,加入96 mL 1xTAE缓冲液,室温下放置30 min,在微波炉中煮沸8 min,用沸水加至原来体积,待冷却至60 左右时,加入5 L溴化乙锭溶液,倒入已插好25孔制胶梳的1212的制胶盒中(每板约70 mL),冷却后,缓慢抽去梳子,用于点样。 7.4 电泳进样 PCR结束后的样品,每孔加入1.5 L 6x上样缓冲液,扩增产物在4的琼脂凝胶上,100 V稳压
13、电泳3050 min(根据电泳片段的大小确定)进行电泳分离,在紫外光下观察拍照。 7.5 结果统计分析 7.5.1 真实性鉴定结果分析 根据送检样品和对照样品在48对引物位点处电泳谱带的异同,判断送检样品的真实性。 a)差异位点数2,判定为不同品种 b)差异位点数=1,判定为近似品种 c)差异位点数=0,判定为相同或极近似品种 按公式(1)计算品种相似率: S(%)=(LTLD)LT100% (1) 式中: S品种相似率; LT检测位点数; LD差异位点数。 7.5.2 纯度鉴定结果统计 纯度鉴定一般每个样品采用2对引物,检测200粒种子,以每100粒作为一组,若两组之间变异株幼苗数的误差在4
14、株以上,则重复作100粒。 按公式(2)计算品种纯度: P(%)=(NTND)NT100% (2) 式中: P品种纯度; NT供试幼苗数; ND变异株幼苗数。DB43/T 8602014 5 附录A (资料性附录) 试剂配制 A.1 DNA提取试剂 称取1 g氢氧化钠溶于99 mL水中。 A.2 DNA提取试剂 取10 mL 12 mol/L的盐酸溶于470 mL水中即成0.25 mol/L盐酸。将0.25 mol/L盐酸与0.5 mol/L Tris (PH8.0)按2:1稀释。 A.3 1 mol/L Tris溶液 (PH8.0) 称取121.1 g 三羟甲基氨基甲烷(Tris),加入80
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