GB T 27980-2011 马病毒性动脉炎诊断技术.pdf

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1、ICS 11. 220 B 41 GB 和国国家标准11: ./、中华人民GB/T 27980-2011 马病毒性动脉炎诊断技术Diagnostic techniques for equine viral arteritis 2011-12-30发布2012-06-01实施数码防伪中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局中国国家标准化管理委员会发布目。昌本标准按照GB/T1. 1-2009给出的规则起草。本标准由中华人民共和国农业部提出。本标准由全国动物防疫标准化技术委员会CSAC/TC181)归口。本标准起草单位:农业部热带亚热带动物病毒学重点开放实验室。本标准主要起草人z张念祖、杨仕标、宋建

2、领、杜健、王金萍、朱建波、李华春。GB/T 27980-2011 I GB/T 27980-2011 马病毒性动脉炎诊断技术1 范围本标准规定了马病毒性动脉炎诊断技术。本标准适用于马病毒性动脉炎的诊断和检疫。其中病毒分离、琼脂糖凝肢免疫扩散试验、反转录聚合酶链式反应试验适用于马病毒性动脉炎的病原诊断，中和试验和酶联免疫吸附试验适用于马病毒性动脉炎的抗体检测。2 临床诊断2. 1 流行病学马病毒性动脉炎是由马动脉炎病毒所引起的一种马的散发性呼吸系统和繁殖系统的接触性传染病，该病只感染马属动物，主要是通过生殖系统和呼吸系统而感染传播。公马带毒后元明显临床症状，却是危险的传染源。长期带毒的种公马可通

3、过自然交配或人工授精的方式把病毒传给母马。流产马的胎盘、胎液、胎儿亦可传播本病。患病马在急性期通过呼吸道分泌物将病毒传给同群马或与其相接触的马。通过用具、饲料和饲养人员的接触也能将病毒传给易感马。该病呈世界性分布，血清学试验证实，我国也存在该病。2.2 临床症状患马可表现为临诊症状和亚临诊症状，大多数自然感染的马表现为亚临诊症状。试验感染潜伏期为1d6 d，野外感染普遍为3d4 d。本病的典型症状是发热，一般感染后3d14 d体温升高达41 OC，并可持续5d9 do表现厌食、精神沉郁、四肢严重水肿，步伐僵直，眼、鼻分泌物增加，后期为服性粘液，发生鼻炎和结膜炎。面部、颈部、臀部形成皮肤彦块。公

4、马的阴囊和包皮水肿，马驹和虚弱的马可引起死亡。怀孕母马流产，其流产率可达90%以上。流产发生在感染后的10d30 d，通常出现在临诊发病期或恢复早期。胎儿常在流产前就死亡，流产胎儿水肿，呼吸道粘膜和脾被膜上有出血点。母马痊愈后很少带毒，而大多数公马恢复后则成为病毒的长期携带者。这些症状并不是在同一马群中同时出现。马驹、老龄雌马和营养状况差的马，临床症状较重，孕马比空怀母马明显。除极少数患马发生死亡外，一般为轻度临床症状。2.3 病理变化死亡病例最主要的剖检变化是全身较小动脉管内肌层细胞的坏死，内膜上皮的病变导致特征性的出血和水肿以及血栓形成和梗死。常见大叶性肺炎和胸膜渗出物，发生全身性动脉炎的

5、结果，所有浆膜和帖膜以及肺和中脑等都有点状出血。肾上腺上也有出血，在心、脾、肺、肾、怀孕母马的子宫、眼结膜、眼险、膝关节或酣关节以下的皮下组织以及阴囊和辜丸内，均能发现出血及水肿变化。恢复期病马的慢性损害包括广泛性全身性动脉炎和严重的肾小球性肾炎。实验感染后观察到的损伤可分成3个型，即发展(渐进)型、终末(端)型及慢性活动型。从感染后4d6 d观察发展(渐进)型损伤，发现胸腹水过多，淋巴结充血肿大，结肠到盲肠脉管水肿，大肠粘膜下淋巴结肿大，还可见粘膜上皮温和坏死。终末(端)型损伤被认为是发展(渐进)型损伤的延伸，表现为皮下水肿，胸腔大量积液，全身所有淋巴结肿胀到不同程度的出血，盲肠和结肠有梗死

6、。粘膜下严重水肿和出血，有时可见肾上腺皮质出血。病毒接种GB/T 27980一2011后第12天，可见慢性损伤，包括温和性淋巴结肿胀及胸腔内积液过多。实验感染后观察到的损伤的严重性很少与自然感染的损伤一样。2.4诊断依据上述流行病学特点、临床症状和病理剖检变化特征等可作出初步诊断，确诊后应该通过实验室病原学和血清学诊断。3 病毒分离3. 1 器材和设备单道微量加样器(0.5L10L、5L10L、40L200L、200Ll000L)及滴头。一80.C冰箱，二氧化碳培养箱。组织研磨器、超声波振荡器、低速离心机、倒置显微镜。3.2 试荆与材料血(采自血管);细胞z兔肾细胞(RK-13);细胞培养液(

7、见附录A) 3.3 病毒分离3.3. 1 样晶的采集急性病例采取脱纤全血或沉淀白细胞层，鼻分泌物、结膜拭子或流产胎儿的体液及脾脏，被检种马的精液;尸体剖检时采取肺、脾和淋巴结，将病料置于含1000IU/mL青霉素和1000g/mL链霉素的0.01 mol/L pH7. 2磷酸盐缓冲液(PBS缓冲液)里。这些病料应立即用冰冷却，若不立即接种，应将病料迅速冻存于一80.C冰箱。精液的采集:使用一次射精时精子数量最多的部分精液。3.3.2 样晶的处理组织样品用含1000IU/mL青霉素和1000g/mL链霉素的细胞培养液按1: 10的比例，置于研磨器中剪碎并研磨。将已研磨好的待检病料，4.C1000

8、 r/min离心5min，取上清液;分泌物和排泄物样品的处理，将棉拭子充分捻动、拧干后弃去拭子，4.C1000 r/min离心5min，取上清液;精液冻融3次或超声波裂解处理(100A、1min2 min) ，用细胞培养液作1: 10的稀释，4.C 1 000 r/min离心5 min，取上清液。将处理好的样品上清液用0.22m滤器过滤除菌，待用。3.3.3 接种细胞将样品悬液接种于RK-13细胞，每份样品接种5瓶，每瓶(生长面积25cm2)接1mL, 37 .C吸附1 h，再加5mL维持液。将接种细胞置于37.C、5%二氧化碳条件下培养12d，每2d3 d换维持液一次。3.3.4 观察与传代

9、接种后用倒置显微镜逐日观察细胞是否出现细胞病变(CPE)，出现者收获，元CPE者再盲传3代，仍无细胞病变者弃之。3.3.5 病毒增殖、分装与保存RK-13细胞上出现CPE的病毒悬液用1mL元菌小管分装，作为原始毒置于一80.C冰箱或液氮罐2 GB/T 27980-20门中保存。将原始毒接种RK-13细胞，37.C、5%二氧化碳条件下培养并逐日观察细胞病变，70%以上细胞出现病变时收集细胞病毒液，按1mL每小管进行元菌分装，置一80.C冰箱保存备用。病毒鉴定按本标准琼脂糖凝胶免疫扩散试验(AGID)和反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)方法进行。4 琼脂糖凝肢免瘟扩散试验(AGID)4. 1 材

10、料和器械4. 1. 1 器械:直径6cm平皿、外径4mm打孔器、加样器。4. 1. 2 阳性血清、标准马病毒性动脉炎高免血清。4. 1.3 阴性血清z无马病毒性动脉炎抗体和细胞毒性的健马血清。4. 1.4 标准抗原:纯化浓缩的马病毒性动脉炎病毒。4. 1.5 待检抗原:抗原应无污染，取少量样品加最少量的无菌生理盐水磨碎后作为待检抗原;病毒分离物浓缩(用聚乙二醇8000做100倍浓缩)后亦可作为待检抗原。4.2 试验方法4.2. 1 琼脂平皿的制作(所用试剂均为常规分析纯试剂):见附录B.4.2.2 打孔:用直径4mm金属打孔器在已凝固的琼脂糖凝胶平皿上打孔，孔距为3mm，打孔后用针挑出切下的孔

11、内琼脂块。4.2.3 加样:用微量加样器或毛细吸管，吸取抗原或血清加于孔内，中央孔滴加标准阳性血清，周围的第1孔、第3孔、第5孔滴加对照阳性抗原，第4孔滴加阴性抗原，第2孔、第6孔滴加样品(待检抗原), 加样量以加满不溢出为度。加样后静置10min，放入湿盒内37.C进行反应。24h后观察并记录结果。4.3 结果判定结果判定时将琼脂平皿置暗背景或侧强光照射下观察，若对照阳性抗原与标准阳性血清孔之间出现一条清晰、明显的白色沉淀线，而对照阴性抗原与标准阳性血清孔之间元沉淀线则认为试验可以成立，如果沉淀线没有或不明显则本试验不能成立，应该重做。结果判定标准如下za) 阳性:待检抗原孔与阳性血清孔之间

12、出现明显清晰白色沉淀线，并与标准阳性孔的沉淀线相融合。b) 阴性z待检抗原孔与阳性血清孔之间无沉淀线，标准阳性孔抗原的沉淀线直伸被检样品的孔边，判为阴性。4.4 限制性说明本方法仅用于马病毒性动脉炎(EVA)病原的普查，可能会出现非特异性反应。建议对AGID阳性样品进行进一步的病原或者核酸诊断。5 反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)5. 1 仪器和设备PCR(聚合酶链式反应扩增仪、台式低温离心机、电泳仪、电泳槽、冰箱、紫外灯、紫外凝胶成像仪、3 GB/T 27980-2011 单道微量加样器(0.5L10L、5L10L、40L200L、200Ll000L)及滴头，PCR仪和离心管。5.2 试

13、剂与材料5.2.1 材料:细胞病毒液或病料组织、外周血液或鼻分泌物。5.2.2 试剂:柱离心式小量病毒RNA&.DNA抽提试剂盒，核糖核酸聚合酶链式反应试剂盒(逆转录RNA PCR Kit) ，上样缓冲液0%SDS，50%甘油和0.05%澳酣蓝)、澳化乙链(EB)储存液00g/mL)、琼脂糖，DNA分子质量标准，异丙醇等均为常规分析纯试剂，电泳缓冲液(配制方法见附录。5.2.3 引物:在马病毒性动脉炎病毒ORF1b的9282 bp9 466 bp片段设计引物CI:5-CCTGAGACACTGAGTCGCGT-3 DI: 5-CCTGA TGCCACA TGGAA TCA-3 扩增目的片段为18

14、4bpo 5.3 操伟程序5.3. 1 样品的采集和处理样品的采集和处理参见3.3.1和3.3.2。5.3.2 病毒RNA的提取按照相关病毒RNA提取试剂盒操作即可。5.3.3 RT-PCR扩增将下列各成分按要求量加入PCR反应管中:RNaseFre巳dH20(24L);10 X One Step RNA PCR Buffer(5L) ; 25 mrnol/L的MgC12(10L) ; 10 mmol/L的dNTPMixture (5L) ; RNase Inhibitor lL; AMV Rtase XLlL; AMV-Optimized Taq 1L;上游引物CI(20mol/L)1L;下

15、游引物DI(20mol/L) 1L;模板RNA1L;同时设定阳性和阴性对照。将加有样品和对照RNA的PCR反应管放入PCR仪中，按下列程序和条件进行扩增:50 oC 30 min , 940C 2 min，然后按照(950C15 s ,42 oC 15 s ,68 oC 45 s)反应35个循环，最后再680C7 mino 反应产物可直接电泳检测，亦可于4oc或200C保存待检测。5.4 电泳取PCR扩增产物8L与2L6倍上样缓冲液混合，点样于2%琼脂糖凝胶孔中，5V/cm电压进行电泳，30min后，于紫外凝胶成像仪或紫外分析仪上观察结果。5.5 结果判定在对照成立的前提下，即阳性对照出现相应

16、大小扩增带084bp)、阴性对照元此带出现的情况下判定结果。样品若出现和阳性对照分子质量相同的特异性扩增带，即判定为阳性，否则为阴性。6 酶联免症吸附试验(ELISA)6. 1 器械和设备96孔高吸附力酶标板(平底，简称96孔酶标板)，单道微量加样器(0.5L10L、5L10L、4 GB/T 27980-2011 40L200L、200Ll000L)及滴头，多道微量加样器(5L50L、50L100L)及滴头，8道微量连续加样器(50L、100L、150L、200L)及滴头。稀释试剂用灭菌瓶。4.C、一20.C冰箱，普通恒温培养箱。酶标读板仪、微型振荡器及磁力搅拌器。6.2 试剂与材料6.2.1

17、 包被液:0.1mol/L碳酸盐缓冲液(pH9.的.4.C保存。6.2.2 酶标记羊抗马二抗(抗马IgG辣根过氧化物酶结合物):4.C保存。6.2.3 OPD(邻苯二胶)储存液;0.05%吐温-20磷酸盐缓冲液(PBST);优质脱脂奶粉;30%过氧化氢;2 mol/L硫酸(所用试剂均为常规分析纯试剂，配制方法见附录D)。6.3 操作程序6.3.1 将包被抗原(-20.C冰箱保存用碳酸盐缓冲液按合适浓度稀释，每孔100L加入96孔酶标板，置密闭湿盒中.4.C过夜。6.3.2 甩干包被液，用O.02 mol/L pH7. 2的PBST洗各孔，甩净。6.3.3 重复洗3次。6.3.4 封阻.5%脱脂

18、奶粉的0.02mol/L pH7. 2 PBST (PBST-SM).每孔50L.37.C振荡温育60 min 。6.3.5 被检血清:将每份被检血清用含1%脱脂奶粉的0.02mol几pH7.2PBSTCPBST-SM)按1: 5 稀释，每份样品加一排，每孔50L.分别用阳性血清和健康马血清作阳性和阴性对照，最后一排作空白对照。6.3.6 37.C振荡温育60min。6.3.7 加酶标二抗:辣根过氧化物酶标二抗用PBST-SM按1: 1 0OO稀释，每孔加5切OL。6.3.8 37.C振荡温育6omin 6.3.9 用1倍PBST洗板3次，甩干。6.3. 10 加底物OPD:使用时按每毫升使用

19、液加8L30%过氧化氢混匀而用，每孔加50L。6.3. 11 避光反应15min.用2mol/L的硫踵终止反应。6.3. 12 在酶标读板仪上读取490nm波长的吸光度值(OD490nm).当阳性COD490nm二三o.60)和阴性(OD490nm0.10)对照成立的前提下，样品孔光吸收值为阴性对照孔两倍或两倍以上时判为阳性，否则判为阴性。6.4 限制性说明本方法仅用于马病毒性动脉炎(EVA)抗体的普查，可能会出现非特异性反应。建议对阳性样品进行病毒中和试验验证，以排除非特异性的阳性样品。7 病毒中和试验(国际贸易指定试验)7. 1 器材和设备96孔组织培养板(平底，简称96孔板).单道微量加

20、样器(0.5L10L、5L10L、40L200L、200Ll 000L)及滴头，多道微量加样器(5L50L、50L100L)及滴头。4.C、-80.C冰箱，二氧化碳培养箱。5 GB/T 27980-20门7.2 试剂与材料7.2. 1 病毒。7.2.2 阳性血清:标准马病毒性动脉炎高免血清。7.2.3 阴性血清:无马病毒性动脉炎抗体和细胞毒性的健马血清。7.2.4 细胞z兔肾细胞(RK-13)，使用浓度3.0X105个/mL。7.2.5 细胞生长液:MEM+10%棋牛血清+青霉素、链霉素(终浓度为100IU或100g/mL，4.C保存)。7.2.6 细胞维持液:MEM+2%辑牛血清十青霉素、链

21、霉素(终浓度为100IU或100g/mL，4.C保存)。7.2.7 待检血清:应元污染，4.C保存不超过30d，试验前56.C灭活30min 7.3 试验准备7.3. 1 病毒繁殖:应用静止培养法，在大瓶RK-13细胞形成单层后，移弃细胞培养液，接种马动脉炎病毒于单层细胞，置37.C、5%CO2培养箱中孵育1h，加新鲜细胞维持液，重置37.C、5%CO2培养箱中培养;逐日观察，待CPE达到75%以上时收毒，在一80.C和4.C间反复冻融3次，无菌离心(2000 r/ min) 20 min，取上清分装于1mL小管，4.C保存备用。7.3.2 毒价滴定:用含10%胎牛血清、10%新鲜豚鼠补体和抗

22、生素(1000 IU/mL青霉素和1000g/mL链霉素)的稀释液将马动脉炎病毒作10一1至10-6稀释，然后接种96孔微量板，每个稀释度接种8孔，每孔25L，每孔再补加25L细胞生长液。每孔加入RK-13细胞悬液(使用浓度3.0X 105个/mL)50L。同时设置8孔细胞对照，即用50L细胞生长液十50LRK-13细胞悬液。于37.C、5%CO2条件下培养细胞观察7d，在细胞对照成立的前提下，记录结果，按细胞半数感染量方法计算病毒的每25L中所含半数组织细胞感染量(TCID50)。7.3.3 待检血清、阳性血清和阴性血清经56C30 min灭活后，自1: 2倍比稀释至1: 32. 7.3.4

23、 病毒工作液的配制:将待检病毒用细胞生长液稀释为每25L含100个1000个TCID50，作为病毒工作液。7.4 中和试验程序7.4. 1 病毒和血清等体积混合后置37.C孵育1h或4.C过夜。7.4.2 接种96孔微量板，每组接种8孔，每孔50L病毒和血清混合液，立即补加50LRK-13细胞悬液(使用浓度3.0X105个/mL)。7.4.3 置于37.C、5%CO2条件下培养细胞观察7d。7.4.4 对照步骤如下所示:a) 病毒对照z取病毒工作液，用细胞生长液作10一1、10-2、10-3、10-4四个稀梓度，每个稀释度8孔，每孔25L，加50L细胞悬液，补生长液25L达到总量100L。b)

24、 细胞对照z设8孔，每孔加50L细胞悬液，补生长液50L达到总量100L.c) 阴性对照z设8孔，每孔加入1: 2或1: 10稀释的阴性血清和病毒混合液50L，立即补加50L RK-13细胞悬液(使用浓度3.0X105个/mL)，置于37.C、5%CO2条件下同样培养细胞观察7d。7.5 结果判定7.5. 1 判定条件7.5. 1. 1 细胞对照组应不出现细胞病变(CPE)。GB/T 27980-2011 7.5. 1. 2 病毒对照，应保证在1000个TCIDso的病毒液10-1和10-2稀释度的各个孔均出现CPE，10-3有1个3个孔出现CPE，1O-48孔全元CPE。7.5. 1.3 阴

25、性血清对照应全部出现CPE。7.5.2 判定标准在以上对照成立的情况下，哪组阳性血清抗体滴度大于等于1: 4，即判为阳性。8 说明在以上的检测方法中，当检测结果不一致时，病毒中和试验为最终的判定方法。7 GB/T 27980-2011 附录A(规范性附录)细胞培养液的制备A.1 MEM营养液的配制MEM干粉去离子水充分溶解后经0.22m孔径微孔滤膜滤过除菌。9.6 g 1000 mL 细胞培养生长液是在滤过除菌营养液的基础上，按10%加入灭活棋牛血清和1000 IU/r青霉素和链霉素，然后用7.5%NaHC03溶液调整pH至7.2左右。细胞培养维持液是在滤过除菌营养液的基础上，按2%加入灭活棋

26、牛血清和1000 IU/mL青霉素和链霉素，然后用7.5%NaHC03溶液调整pH至7.2左右。A.2 膜酶消化班配制8 NaCl KCl KHzP04 Naz HP04 12H20 NaHC03 8g 0.4 g 0.4 g 0.08 g 0.35 g Na2EDTA 0.2 g Trypsin 2.5 g 用去离子水定容至1000mL.静置4h.用0.22m孔径微孔滤膜滤过除菌。分装-200C保存。附录B(规范性附录)琼脂平板制备琼脂糖1. 0g 生理盐水100 mL GB/T 27980-2011 调整pH7.47. 6，高压消毒20min，融化的琼脂待冷至45.C 50 .C时，以元菌

27、状态倒入直径6cm平皿中，每平皿约7mL，厚度约为4mm，待凝固后置4.C保存备用。9 G/T 27980-2011 C.1 50xTAE电泳缓冲液Tris Na2EDTA.2H20 乙酸去离子水C.2 1 X TAE 50XTAE 去离子水C.3 琼脂糖凝股附录C(规范性附录)PCR试验用试剂溶液242 g 37.2 g 57.1 mL 1000 mL 20 mL 1000 mL 琼脂糖粉末1. 5g 1XTAE电泳缓冲液100 mL 微波炉中溶解后，冷却至60.C左右，加入EB贮液使其最终浓度为0.5g/mL，并充分混匀。10 D. 1 10倍PBST氧化铀(NaCl)氯化饵(KCl)附录

28、D(规范性附录)酶联免症眼附试验用试剂溶液80 g 2 g 磷酸氢二铀(NazHP04) 22.9 g 磷酸二氢饵(KHzP04)2g 吐温O5mL 加蒸馆水至1000 mL 磁力搅拌器搅拌充分溶解，室温放置备用。D.2 PBST使用液10倍PBST蒸馆水D.3 PBST-SM PBST使用液(灭菌)脱脂奶粉100 mL 900 mL 100 mL 1 g D.4 0.05 moI/L 提瞌盐缓冲溜(pH9.6包接用碳酸铀(NaZC03)碳酸氢铀(NaHC03)硫柳柔加蒸锚水至高压灭菌后4C保存备用。D.5 OPD储存液1. 59 g 2.93 g 0.10 g 1000 mL GB/T 27

29、980-2011 OPD(邻苯二胶)一片(30mg/片)溶解于75mL去离子水中，完全溶解后，分装成5mL/瓶，一20.C避光保存。D.6 2 mol/L硫酸双蒸水浓硫酸160 mL 20 mL -FON|OhNH阁。国华人民共和国家标准马病毒性动脉炎诊断技术GB/T 27980-2011 中婪中国标准出版社出版发行北京市朝阳区和平里西街甲2号(100013)北京市西城区三里河北街16号(10004日网址总编室:(010)64275323发行中心:(010)51780235读者服务部:(010)68523946中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷各地新华书店经销晤开本880X 1230 1/16 印张1字数21千字2012年4月第一版2012年4月第一次印刷 书号:155066. 1-44371 18.00元如有印装差错由本社发行中心调换版权专有侵权必究举报电话:(010)68510107定价GB/T 27980-2011 打印日期:2012年5月22H F002