GB T 28096-2011 木薯细菌性萎蔫病菌检疫鉴定方法.pdf

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1、ICS 65.020.01 B 16 中华人民圭t./、52 和国国家标准GB/T 28096一2011木薯细菌性萎焉病菌检疫鉴定方法Detection and identification of Xanthomonas axonopodis pv. manihotis (Bondar) Vauterin et al. 2011-12-30发布数码防伪中华人民共和国国家质量监督检验检瘦总局中国国家标准化管理委员会2012-06-01实施发布中华人民共和国国家标准木薯细菌性萎蔷病菌栓擅鉴定方法GB/T 28096-2011 峰中国标准出版社出版发行北京市朝阳区和平里西街甲2号(100013)北京

2、市西城区三里河北街16号(100045)网址总编室:(010)64275323发行中心:(010)51780235读者服务部:(010)68523946中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷各地新华书店经销4峰开本880X 1230 1/16 印张0.75字数17千字2012年4月第一版2012年4月第一次印刷* 书号:155066. 1-44652定价16.00元如有印装差错由本社发行中心调换版权专有侵权必究举报电话:(010)68510107GB/T 28096-20门前言本标准按照GB/T1. 1-2009给出的规则起草。本标准由全国植物检疫标准化技术委员会CSAC/TC271)提出并归口。本标

3、准起草单位:中华人民共和国海南出入境检验检疫局、中华人民共和国山东出入境检验检疫局、中华人民共和国江苏出入境检验检疫局。本标准主要起草人:李伟东、封立平、刘福秀、韩玉春、周先超、粟寒、吴翠萍、王英超。I GB/T 28096-2011 木薯细菌性萎蔷病菌检疫鉴定方法1 范围本标准规定了植物检疫中木薯细菌性萎焉病菌的检疫鉴定方法。本标准适用于木薯种子、苗木、种茎和其他繁殖材料中木薯细菌性萎焉病菌的检疫鉴定。2 规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T 4789

4、.28 食品卫生微生物学检验染色法、培养基和试剂3 木薯细菌性萎曹病菌基本信息中文名:木薯细菌性萎焉病菌(地毯草黄单胞杆菌木薯致病变种)。学名:Xanthomonas axonoodis pv. manihotis (Bondar) Vauterin, Hoste, Kersters &. Swings 1995。异名:Bacillusmanihotis Arthaud-Berthet and Bondar 1912 , Phytomonas manihotis (Berthet and Bondar)Viegas, Xanthomonas manihotis (Berthet and Bon

5、dar) Starr 1946 , Xanthomonas. camestris pv. manihotis(Arthaud and Bondar)Dye 1978. 病害英文名:bacterial blight of cassava, cassava bacterial blight。属原核生物界Procaryotes、变形细菌门Proteobacteria，)变形细菌纲Gammaproteobacteria、黄色单胞菌目Xanthomonadales、黄色单胞菌科Xanthomonadace挝、黄色单胞菌属Xanthomonas、地毯草黄单胞杆菌Xanthomonasaxonopodis.

6、 病菌的远距离传播主要靠带菌种子、苗木和种茎。绝大多数木薯病种子不表现任何症状，病菌以休眠状态存在于种子的胚部和种皮。木薯细菌性萎焉病菌的其他信息参见附录A.4 方法原理该病害症状、病菌生物学特性、生理生化特性、致病性测试和基因组DNA的特异性PCR检测是该病菌检测鉴定的依据。5 仪器和用具5. 1 仪器电子天平、实体显微镜、超净工作台、温控培养箱、高压灭菌锅、微生物自动鉴定系统、PCR仪、电泳仪、紫外检测仪或凝肢成像系统、离心机、恒温水浴锅(30.C 95 .C)、超低温冰箱、普通冰箱、纯水机、涡旋振荡器、可调微量加样器。I GB/T 28096-2011 5.2 用具解剖刀、裁纸刀、量筒、

7、烧杯、培养皿、三角瓶、离心管、放大镜、手术剪、慑子、接种环等。6 化学试剂6. 1 试剂次氯酸铀(NaCIO)、磷酸二氢铀(NaH2P04)、70%乙醇、吐温-60、吐温80、淀粉、蔚糖、葡萄糖、果糖、海藻糖，PCR检测所需试剂(参见附录B)o6.2 培养基CTA和LPG培养基及配制见附录C)。7 检测鉴定7. 1 症状检查首先观察植株是否萎焉，接着仔细检查植株的嫩芽、茎、叶等各个部位，嫩芽、叶是否出现凋萎;叶片是否出现水渍状，晴绿色多角形的小斑，褐色或深褐色由黄晕围绕的不规则形的病斑，凋萎，干枯脱落;嫩茎和叶柄是否有水渍状，黑褐色下陷的病斑;横切茎干，检查其维管束组织是否变褐坏死、病部受挤压

8、后是否有菌服溢出。7.2 快速初筛对出现典型症状的植株直接进行病菌分离;对症状不典型或不明显的木薯种子、苗木和种茎应用PCR法进行快速初筛。从植物组织(种子或叶片或种茎)中抽提总核酸，用木薯细菌性萎焉病菌标准菌株作阳性对照，用地毯草黄单胞杆菌其他致病变种的标准菌株和健康植株抽提总核酸作阴性对照，用超纯水作为空白对照，进行PCR(方法步骤见附录C)检测分析。若PCR检测结果为阳性，继续进行7.3;若PCR检测结果为阴性，则可判定为未检出。7.3 病菌分离7.3.1 种子带菌的分离称取木薯种子样品20g，置于1%次氯酸铀溶液浸泡消毒2min4min，元菌水洗涤三次，然后将种子磨碎，装入一灭菌的三角

9、瓶中，加入100mL灭菌的0.1mol/L磷酸二氢铀缓冲液，混匀，250C下静置过夜，次日用该溶液在事先制备好的CTA平板培养基上划线，300C恒温培养48h后，检查并筛选培养基上的菌落。7.3.2 病组织(病叶或茎段)中病菌的分离将病组织切成3mm见方的小块，先用70%乙薛浸泡30s，捞出后用1%次氯酸铀溶液浸泡2min, 再用无菌水洗涤三次，最后把病组织置于消毒的小培养皿(直径6cm)中，加几滴元菌水，捣碎，静置10 min15 min，制成悬浮液，用接种环蘸取汁液在CTA平板上划线，300C下培养2d后，检查并筛选培养基上的菌落。GB/T 28096-20门7.3.3 形态特征病菌为革兰

10、氏阴性，菌体短杆状，大小(0.3rn-0.4rn)x (1.1rn-1.2rn) ，多数单个排列，少数3个-4个连接成短链。不产生芽抱，无英膜。鞭毛单根极生。在CTA培养基上生长的菌落呈灰白色到奶油色，隆起，光滑，有光泽，边缘整齐，培养2d菌落直径可达1rnrn。开始时菌落透明，渐渐混浊不透明，最后变成表面有一层粘质的固体物。在LPG平板上恒温(27.C-28 .C)培养5d，菌落突起，表面光滑，乳白色，有光泽，菌落边缘完整，直径3rnrn-5 rnrn，粘稠。如果发现可疑的菌落，采用平板划线法，即用灭菌的接种环蘸取CTA平板上菌落后，在LPG平板上多次划线纯化，在30.C下恒温培养2d-4

11、d，纯化三次后进行鉴定。7.4 革兰氏染色按GB/T4789. 28中2.2的方法进行革兰氏染色反应。若染色结果为革兰氏阴性菌，则进行下一步检测。7.5 生理生化指标测定结合实验条件对分离菌株进行生理生化指标测定。应用微量发酵管对分离菌株进行生理生化指标的测定。若分离菌株能水解吐温-60、吐温-80、淀粉、蔚糖、葡萄糖、果糖和海藻糖，液化明胶，强烈水解卵磷脂，使石器牛乳产碱、陈化，则生理生化指标测定结果为阳性。应用微生物自动鉴定系统对分离菌株进行生理生化指标的测定。按照微生物鉴定系统规定的操作方法进行，鉴定结果为木薯细菌性萎焉病菌，则判定该分离菌株的微生物鉴定系统的鉴定结果为阳性。7.6 PC

12、R检测取经分离纯化的细菌菌落，配备1X 108CFU/rnL的细菌悬浮液，进行PCR检测，元需抽提总核酸。检测方法步骤见附录C。7.7 致病性测定将在LPG培养基上培养48h后的菌株，配成1X 108CFU/rnL的细菌悬浮液，采用针刺接种法，用消毒的接种针蘸上细菌悬浮液，针剌木薯植株的第三片、第四片叶和嫩茎等，每一菌株接种5株，阴性对照用元菌水代替接种被。接种后的植株置放于人工气候箱，在28.C -32 .C温度下，先在100%相对湿度保湿24h-48 h，然后在80%左右的相对湿度下，每天在7000lx-10 000 lx下光照培养16h，黑暗下培养8h。接种7d后开始观察症状，每天观察一

13、次，连续观察30d.植株上的叶片出现黑绿色到蓝色水渍状不规则斑(直径1crn-4 crn)，病斑迅速扩展并且不规则形斑沿着叶脉和叶片边缘结合在一起，对着光线可看到半透明的斑，叶片感病部分周围变成亮褐色;整株植物表现出萎焉、在茎横切面出现褐变且挤压有菌服溢出的视为发病，表明从种子或植株或种茎上分离到的菌株具有致病性，而且需要从接种病斑上再次分离出来;不表现症状的接种植株视为不发病。8 结果判定若植株呈现典型症状，或初筛PCR检测结果为阳性，要对可疑样品进行病菌的分离;根据分离菌株在培养基上的形态特征，确定可疑菌落，至少采用一种方法(生理生化指标测定和分子检测方法)对可疑菌落进行鉴定，最后进行寄主

14、的致病性测定以确诊。如果一种或一种以上鉴定方法为阳性，且致病性测定表现为典型症状，则判定为检出木薯细菌性萎焉病菌;如果任一种鉴定方法都为阴性，则判定为未检G/T 28096-2011 出木薯细菌性萎焉病菌。9 样品和菌种保存9. 1 样晶保存样品(种子或植株或种茎)拍照后均应制成干标本，经登记和签字后置于阴凉干燥、防虫防鼠处妥善保存3个月。对鉴定为木薯细菌性萎焉病菌的样品至少应保存6个月，以备复检、谈判和仲裁，样品保存期满后，需经灭菌处理。9.2 菌种保存从样品中分离并鉴定为木薯细菌性萎焉病菌的菌株应转接到试管斜面，经登记和签字后置于40C冰箱中保存，定期转接;或病菌悬浮液加60%甘油置于超低

15、温冰箱(一700C)长期保存，或用真空干燥机制成病菌冻干粉置于超低温冰箱(一700C)长期保存。4 GB/T 28096-20门附录A(资料性附录)木薯细菌性萎蕾病菌其他信息A.l 地理分布美洲:墨西哥、古巴、巴拿马、特立尼达和多巴哥、巴西、阿根廷、哥伦比亚、委内瑞拉、法属圭亚那、尼加拉瓜。非洲:尼日利亚、刚果金、加纳、贝宁、喀麦隆、中非共和国、马达加斯加、毛里求斯、科特迪瓦、马拉维、马里、卢旺达、南非、苏丹、坦桑尼亚、多哥、乌干达。亚洲:印度、印度尼西亚、马来西亚、泰国、日本、菲律宾及中国的局部木薯种植地区。A.2 寄主檀物木薯Manihotesculenta ，木薯其他野生种M.aPii

16、,M. glaziovii，M.almatao人工接种寄主为大斡科的Euhorbiareanda ，E.ulcherrima， Pedilanthus tithymaloides CDedal et al. 1980)。在委内瑞拉高湿多雨地区则发现转主寄主除大载科的CEuphorbiaceae)几个种以外，还有克科中的克属Amaranthus spp.、禾本科泰属中的Pa nicum fasciculatum和石茅高粱Sorghumhale户ense及锦葵科的黄花捻属Sidaspp.。A.3 症状带病种子往往能正常发芽，但不久就会在叶片和嫩茎上表现症状。木薯细菌性萎焉病的主要症状有角斑、枯萎、

17、青枯、梢枯、流服及根茎部分的维管束坏死。种植带病种茎生长的植株表现为系统的维管束病害症状，即刚生长的嫩芽就出现凋萎。田间感染的植株，初现角斑，随后引发枯萎，落叶，凋萎或顶枯。叶片发病初出现水渍状，暗绿色多角形的小斑，病斑随后变成褐色或深褐色由黄晕围绕，这种黄晕主要由细菌分泌的毒素甲硫基丙酸所致。病斑愈合成不规则形的大斑，最后叶片凋萎，干枯脱落。潮湿时，叶片和嫩茎上的病部常溢出橙黄色的菌服。嫩茎和叶柄上的病斑水渍状，黑褐色，下陷，叶片常呈凋萎状，当病斑扩展，绕茎一周时，引起其上部枝叶的凋萎枯死。横切病茎，可见其维管束组织变褐坏死。5 GB/T 28096-2011 附录B(资料性附录)木薯细菌性

18、萎蔷病菌PCR检测方法B.1 试剂制备(或使用商晶化的试剂盒)B. 1. 1 总核酸抽提缓冲液100 mmol/L三炬甲基氨基甲烧盐酸盐(Tris-HCl)pH 8.0、10mmol/L乙二胶四乙酸(EDTA)、2%十二烧基硫酸铀(SDS)、100g/mL蛋白酶K、1%聚乙烯毗咯皖酣。B. 1. 2 TE缓冲液(pH8.0) 1 mmol/ L Tris-HCl,pH 8.0 o. 1 mmol/L EDT A。B. 1. 3 50 X TAE电泳缓冲灌(pH8.0) Tris 冰醋酸0.5 mol/L EDTA(pH 8.0) B. 1.4 6 X上样缓冲液0.25%澳酣蓝、40%蔚糖。B.

19、 1.5 其他试剂242 g 57.1 mL 100 mL 3 mol/L氧化铀、三氯甲烧:异戊醇(24: 1)、异丙醇、相对分子质量标准、漠化乙链。B. 1. 6 PCR反应试剂10XPCR缓冲液、MgClz，dNTP、TaqDNA聚合酶、琼脂糖。B.2 总核酸提取将种子1g(约15粒)或叶片1g或种茎19放入灭菌研钵中，加入液氮用研样研成粉状，取粉末移人1.5 mL离心管中，加入1000L抽提取缓冲液，在65.C水浴孵育30min;室温14000g离心15min; 取上清液加入等体积的三氯甲烧和异戊醇(24: 1)混合溶液，棍匀，放置15min, 14000 g离心15min; 取上清液加

20、入等体积的三氯甲烧和异戊醇(24: 1)溶被混匀，放置15min , 140 00 g离心15min;取上清液加入O.6倍的异丙醇混匀，14000g离心30min;弃上清液，用70%乙醇洗涤两次，元水乙醇洗涤两次，并倒置离心管1min;加入100LTE缓冲液悬浮总核酸，置于一20.C下保存备用。B.3 PCR检测在PCR薄壁管中分别加入以下试剂(25L体系):1L的悬浮液或样品总核酸，每对引物(见6 GB/T 28096-20门表B.1)20mol/L各1.0L，O.15 mmol/L的dNTP混合物2.0L，10XPCR缓冲液2.5L，2.5L 1. 5 mmol/L MgC12溶液，Taq

21、DNA聚合酶(2.5U/IlL)O. 2L，超纯水14.8L。引物1 2 表B.lPCR检测的引物序列及扩增产物引物序列5-TTC GGC AAC GGC AGT GAC CAC C-3 5-TCA ATC GGA GAT TAC CTG AGC G-3 扩增产物898 bp 反应条件:95.C预变性5min(提纯核酸则为2min) ，然后进行30个循环(95.C变性30s、61.C退火30 s、72.C延伸90s)，最后一个循环结束后72.C继续延伸5min. PCR产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳分析。每个样品取5L的PCR产物与1L的6X上样缓冲液混匀，并加到置于1XTAE缓冲液的1.5%琼

22、脂糖凝胶孔中，然后在120V下电泳。电泳结束后，放入装有0.5g/L的澳化乙键溶液的容器中染色，然后在清水中清洗后，在凝胶成像系统中观察，拍照，并保存照片。FFON|gNH阁。GB/T 28096-2011 附录(规范性附录)培养基制作方法C CTA培养基3.0 g磷酸氢二饵CK2 HP04 ) , 1. 0 g磷酸二氢铀CNaH2P04)，0.3g硫酸镜CMgS04 7H2 0) , 1. 0 g氯化镀CNH4Cl), 9.0 g DC +)-海藻糖，1.0g DC +)-葡萄糖，1.0 g酵母粉，14.0g琼脂，加蒸馆水定容至1L , pH 7.20 103.43 kPa (121 OC)高压灭菌15mino灭菌后冷却至500C下加入0.025g头抱菌素，0.0012g林可霉素，0.0025g磷霉素，0.25g放线菌酣。C.1 LPG培养基5.0 g葡萄糖，5.0g酵母膏，5.0g蛋白陈，15.0g琼脂，加蒸馆水定容至1L，pH7.L103.43kPa (121 OC)高压灭菌15min。C.2 侵权必究qru phu 户huA哇AU-A . 择nu F、UECd-1EA- 号一价书一定版权专有16.00元GB/T 28096-2011 打印H期:2012年5月22日F002