GB T 27639-2011 结核病病原菌实时荧光PCR检测方法.pdf

《GB T 27639-2011 结核病病原菌实时荧光PCR检测方法.pdf》由会员分享，可在线阅读，更多相关《GB T 27639-2011 结核病病原菌实时荧光PCR检测方法.pdf（16页珍藏版）》请在麦多课文档分享上搜索。

1、ICS 11. 220 B 41 中华人民圭t/、道昌和国国家标准GB/T 27639-2011 结核病病原菌实时荧光PCR检测方法Real-time PCR method for the detection of tuberculosis pathogenic organisms 2011-12-30发布数E马防fJJ中华人民共和国国家质量监督检验检菇总局中国国家标准化管理委员会2012-04-01实施发布GB/T 27639-2011 剧吕本标准按照GB/T1. 1-2009给出的规则起草。本标准由全国动物防疫标准化技术委员会CSAC/TC181)归口。本标准起草单位:中华人民共和国广东出

2、入境检验检疫局、华中农业大学、中国检验检疫科学研究院、北京盈九思科技发展有限公司。本标准主要起草人z陈茹、刘中勇、杨国海、郭爱珍、曾碧健、韩雪清、高小博、林祥梅、吴晓薇。I GB/T 27639-2011 结核病病原菌实时荧光PCR检测方法1 范围本标准规定了结核分枝杆菌复合群、结核分枝杆菌、牛分枝杆菌实时荧光PCR检测方法的技术要求和操作规范。本标准适用于快速检测细菌培养物、血样、奶样、痰液、组织器官、粪便等临床样品中结核分枝杆菌复合群、结核分枝杆菌、牛分枝杆菌。2 规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，

3、其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T 6682-2008 分析实验室用水规格和试验方法GB 19489二2008实验室生物安全通用要求3 缩畸语下列缩略语适用于本文件。Ct值:荧光信号量达到设定的阔值时所经历的循环数。dNTP: deoxyribonucleoside triphosphate，脱氧核昔三磷酸。DMSO: dimethyl sulfoxide，二甲基亚枫。EDT A: ethylene diaminetetraacetic acid，乙二胶四乙酸。PBS: phosphate buffer solution，磷酸盐缓冲液。PCR: polymerase chai

4、n reaction，聚合酶链式反应。Taq酶:TaqDNA聚合酶。UDG酶:uracil DNA glycosylase，尿暗院DNA糖基化酶。4 原理本标准方法采用了TaqMan探针实时荧光PCR技术原理。反应体系中包括一对用于扩增DNA的引物，和一条能与PCR产物特异杂交的荧光标记探针。探针的5端标记了被称为报告基团的荧光素，3端标记了洋灭基团。在进行PCR延伸反应时，Taq酶的5外切酶活性将5端荧光基团从探针上切割下来，使其与摔灭基团分离，从而仪器能检测到5端荧光基团所发出的荧光信号，一分子PCR扩增产物的生成伴随一分子荧光信号的产生。随着扩增循环次数的增加，仪器检测到的荧光信号的累积

5、反应了扩增产物量的变化。本标准提供特异检测结核分枝杆菌复合群、结核分枝杆菌和牛分枝杆菌共四套实时荧光PCR检测方法(见表1)。其中，结核分枝杆菌复合群特异的实时荧光PCR方法分别以IS6110、IS1081插入基因序列为模板设计特异扩增引物与探针;结核分枝杆菌、牛分枝杆菌特异的实时荧光PCR方法分别以菌种特异的基因组序列为模板设计特异扩增引物与探针。1 GB/T 27639-2011 表1荧光PCR引物与探针序列类别核酸序列上游引物:5GCAGGG TTC GCC TAC GTG 3 结核分枝杆菌复合下游引物:5CGGGTC CAG ATG GCT TGC 3 群(1S6110)探针.:5-F

6、AM-TGT CAC CGA CGC CTA CGC TCG C 3-BHQ-1 上游引物:5CCAGGA ACG CCT CAA CC 3 结核分枝杆菌复合下游引物:5CGA CGA GGC GGA TGA TC 3 群(1S1081)探针.,5-FAM-AGA GGT ACG ACG CCG AAC CGA C -BHQ-1 上游引物，5CGGTGT AAT CAG寸TTGA AGC 3 结核分校杆菌下游引物:5CGATTG GAA CGG CGA AGC 3 探针.:5人FAM-TAGGTA GTC CAG TAG AGC CCC ATA GCC A:3人BHQ-1上游引物:5ACG C

7、CT TCC TAA CCA GAA TTG 3 牛分枝杆菌下游引物:5GGCTAT TGA CCA GCT AAG ATA TCC 3 探针.:5-FAM-AAT TCA TAC AAG CCG TAG TCG TGC AGA A 3人BHQ-1a探针5端标记的报告荧光基团及3端标记的淳灭基团可根据荧光PCR仪设备等具体情况另行选定。5 材料与试剂5. 1 仪器与耗材5. 1. 1 接种棒。5.1.2 元菌注射器或真空采血管。5.1.3 灭菌容器。5.1.4 橡胶管。5. 1. 5 刮匙。5. 1. 6 E级生物安全柜。5. 1.7 荧光PCR仪。5. 1. 8 恒温水浴锅(室温至100.C

8、)。5. 1. 9 离心机(最高离心力达15000Xg以上。5. 1. 10 混匀器。5. 1. 11 冰箱(2.C8 .C , -20.C , -80 .C)。5. 1. 12 天平(精密度达千分之一以上)。5. 1. 13 微量可调移液器(10L，100L，1000L)。5. 1. 14 微量带滤芯吸嘴(10L，100L，1000L)。5. 1. 15 研钵。5. 1. 16 离心管。5. 1. 17 PCR光学反应管。5.2 试剂5.2. 1 试剂级别:除另有规定，本方法试验用水应符合GB/T6682二2008规定的二级水，所用化学试GB/T 27639-2011 剂均为分析纯。5.2.

9、2 引物与探针z采用元DNA酶、无RNA酶水将每条引物与探针(序列见表1)配制成100mol/L储存液，置一20.C或更低温度冻存;使用时取适量配制成10p.mol/L工作液，避免多次冻融。5.2.3 0.01 mol/L pH7. 6 PBS:配方见A.1。5.2.4 拧棱酸铀缓冲液z配方见A.205.2.5 0.5 mol/L EDTA:配方见A.3.5.2.6 拧攘酸铀-磷酸缓冲液z配方见A.4.5.2.7 4%氢氧化铀溶液:配方见A.5。5.2.8 4%硫酸溶液z配方见A.6。5. 2.9 Triton X-100. 5.2.10 DNA提取液z含100mmol/L Tris-HCl

10、(pH8. 0) ,0. 01% Triton X-100，200g/L蛋白酶K。也可采用等效商品化试剂。5.2. 11 灭菌双蒸水。5.2.12 三氯甲烧。5.2.13 异丙醇。5.2.14 元水乙醇。5.2.15 70%乙醇:用新开启的灭菌双蒸水配制，一20.C预冷。5.2.16 荧光PCR反应缓冲液:含50mmol/L KCl , 10 mmol/L Tris-HCl (pH8. 3) , 2.5 mmol/L MgC12，5%二甲基亚矶(DMSO)，5%甘油。可采用等效商品化试剂。5.2.17 dNTP: dATP、dUTP、dCTP和dGTP。5.2. 18 Taq酶。5.2.19

11、UDG酶。6 生物安全要求采样、样品处理及检测过程所涉及的实验操作，应遵守GB194892008的有关规定。7 采样7. 1 样品采集7. 1. 1 细菌培养物直接取液体培养基培养的菌液;对于在固体培养基上生长的菌落，用接种棒挑取适量取用量达到肉眼可见，菌团大小不超过接种环)菌样，放到0.01mol/L pH7. 6 PBS中，振荡混匀形成悬浮菌液。7. 1. 2 血样用元菌注射器或真空采血管，无菌自动物静脉采血，元菌分离血清。用无菌注射器或真空采血管，无菌自动物静脉采血，将血液直接滴人抗凝剂中，并立即连续摇动，充分混合。抗凝剂采用拧朦酸铀缓冲液，或O.5 mol/L EDT A。每6mL血液

12、加1mL抗凝剂。条件允许时，建议优先采集全血，以更有利于富集菌体。7. 1. 3 奶样元菌采集奶液于灭菌的容器中。一般以后段奶液含菌量较多，早晨挤出的奶液含菌量最高。3 GB/T 27639一20117. 1. 4 痰液动物痰液采集z动物咯痰极少，宜在清晨采集，用橡胶管自口腔伸入至气管内，外接注射器吸取痰液。亦可取咳出的痰块。人痰液采集z采集清晨从肺深处咳出的痰液。用灭菌容器密闭送检。7. 1.5 组织器官采集动物下顿、咽后、支气管、肺(特别是肺门及肺门淋巴结)、纵隔和肠系膜淋巴结，以及病变组织器官如肝、脾、肺等。7. 1. 6 粪便采集混有粘液、血液、粘膜的粪便，或用刮匙从动物直肠深部(约3

13、0cm)取少量粘液粪便，盛于灭菌容器中。7.2 样品的保存和运输待检样品在2.C8.C保存不应超过24h;一20.C保存不超过三个月;-80.C以下长期保存。样品应置于低温、密封的容器内运输。8 荧光PCR操作方法8. 1 样晶前处理8. 1. 1 血样、细菌培养物(菌渣)前处理取1mL2 mL全血样品，15000Xg离心10min，弃上清;加等体积灭菌双蒸水充分振荡，15000Xg离心10min;弃上清，若红血球裂解不完全，需采用灭菌双蒸水重复洗涤;收集沉淀物，继续进行核酸提取，或置一20.C贮存备用。取1mL2 mL血清、菌液样品，15000Xg离心10min，弃上清，加1mL O. 01

14、 mol/L pH7. 6 PBS, 充分振荡混匀，15000Xg离心10min;弃上清，收集沉淀物，继续进行核酸提取，或置一20.C贮存备用。8. 1. 2 奶样前处理取10mL奶液，加100LTriton X-100，振荡混匀，2500Xg离心20min;弃上清，取沉淀，加1mL0.01 mol/L pH7. 6 PBS，充分振荡混匀;将沉淀悬浮液移入微量离心管，15OOOX g离心10min;弃上清，收集沉淀物，继续进行核酸提取，或置-20c贮存备用。8. 1. 3 痰液前处理在痰液样品中加入2倍4倍体积4%氢氧化铀溶液，振荡混匀，室温放置30min，间或振荡混匀，使其充分液化(元明显固

15、状物并且吸出时元拖丝现象即为液化完全;若液化不完全，可适当再加入少量4%氢氧化铀溶液直至液化完全);15 OOOXg离心10min;弃上清，加1mL 0.01 mol/L pH7. 6 PBS，充分振荡混匀，15000Xg离心10min，弃上清，重复本步骤1次;收集沉淀物，继续进行核酸提取，或置一20.C贮存备用。8. 1. 4 组织器官前处理取适量组织样品(剔除脂肪、被膜)，剪碎，按1: 5的比例加入拧棱酸铀-磷酸缓冲液(例如，1g组织样品，加入5mL缓冲液)，充分研磨;加等量4%氢氧化纳溶液，继续研磨5min10 min，使组织液化;GB/T 27639-2011 移人离心管，充分振荡，7

16、5aC温浴0.5h 1 h;取上清(避免吸取粗渣),15 OOOXg离心10min;弃上清，加等量0.01mol/L pH7. 6 PBS ，振荡混匀，使沉淀充分悬浮，15000Xg离心10min，弃上清，重复本步骤1次;收集沉淀物，继续进行核酸提取，或置一20aC贮存备用。8. 1. 5 粪样前处理取粪样1g2 g，按1: 5的比例加入4%硫酸溶液(例如19粪样，加5mL液体充分振荡混匀，室温静置0.5h 1 h;取上层约3mL液体(避免吸取粗渣), 5 OOOXg离心1min，取上清，15000Xg离心10 min;弃上清，加等量0.01mol/L pH7. 6 PBS ，振荡混匀，使沉淀

17、充分悬浮，15000Xg离心10min，弃上清，重复本步骤1次;收集沉淀物，继续进行核酸提取，或置一20aC贮存备用。8.2 核酸提取在上述已完成前处理的样品(沉淀物)中加入50fLL100LDNA提取液，充分振荡混匀，56 ac温浴30min , 98 ac 100 ac加热10min，瞬时离心使液滴聚集管底，加等体租三氯甲烧，振荡混匀，12000Xg离心5min，取上清，直接用于PCR或贮存于-80aC备用(适用于除粪样外的其他样品)。其中粪样样品还需进行以下步骤z加人等体积异丙醇(-20 ac预冷)，颠倒混匀，放置5min 10 min; 4 ac , 15000Xg离心10min，弃上

18、清，加3倍体积70%乙醇(1aC预冷)，振荡洗舔;4 c , 15 OOOXg离心10 min，弃上清，室温干燥5min;加入50L元ONA酶、无RNA酶水，混匀、溶解核酸，直接用于PCR或贮存于-80aC备用。可采用经验证的商品化核酸提取试剂盒。8.3 荧光PCR扩增反应8.3. 1 对照设立从样品处理开始，应设置阳性对照、阴性对照。阳性对照:取已知阳性的同类样品作为阳性对照，也可将适量灭活病原菌添加到己知阴性样品中作为阳性对照样品。阴性对照:取己知阴性的同类样品作为阴性对照。空白对照z在扩增反应阶段设置。以灭菌双蒸水作为模板设置空白对照。8.3.2 扩增试剂准备采用25L反应体系，含以下成

19、分:10 mmol/L Tris-HCl (pH8.白，50mmol/L KCl ,2. 5 mmol/L MgC12 , 0. 2 mmol/L dNTP，上、下游引物各0.2mol/L，探针。.1mol/L，5%OMSO，5%甘油，0.4U 尿暗院ONA糖基化酶(UOG酶)，1U Taq ONA聚合酶CTaq酶)，5L模板。取出荧光PCR反应缓冲液等试剂，室温融化(Taq酶、UDG酶除外)，瞬时离心后置冰上，根据上述体系、按每个反应20L的用量配制荧光PCR预混反应液，不足部分加灭菌双蒸水补足，需配制的荧光PCR预混反应液数量等于样品个数加上对照个数再加一。将各试剂按使用量吸取到微量离心管

20、中，充分混匀，然后在每个PCR光学管中分装20La8.3.3 加模板在己分装有荧光PCR预混反应液的PCR光学管中每管分别加入5L样品或对照的核酸模板，混匀，盖上管盖，放入荧光PCR检测仪内，记录样品放置顺序。8.3.4 荧光PCR扩增反应反应条件设定:第一阶段:50aC2 min , 95 aC 4 min, 1个循环;第二阶段:95aC10 s , 60 ac 45 s , GB/T 27639-20门40个循环，荧光收集设置在60.C退火延伸时进行。荧光素设定z报告荧光(report dye)设定为FAM(或按探针实际标记的荧光基团设定)，摔灭荧光(quench dye)设定为None，

21、校准荧光(referencedye)设定为None.可根据不同品牌仪器说明等效设置参数。9 分析条件设定和结果判定9. 1 闺值设定综合分析仪器给出的各项结果，基线(baseline)以仪器给出的默认值作为参考，闰值(threshold)设定原则以阔值线刚好超过正常阴性对照样品扩增曲线的最高点为准，具体还需根据仪器噪声情况进行调整，选择反应所设定的荧光基团对应的通道进行分析。9.2 质控阴性对照和空白对照应元Ct值，阳性对照的Ct值应:;30，且呈现S型典型扩增曲线。否则，此次实验视为元效。9.3 荧光PCR结果分析及判定阴性反应结果判定:检测结果呈现元Ct值、元扩增曲线或反应曲线元明显对数增

22、长期，判为荧光PCR阴性反应。阳性反应结果判定:检测结果呈现Ct值:;35、且扩增曲线有明显的对数增长期，判为荧光PCR阳性反应。对于35Ct值40的样品，需重新取样进行重复检测。如果重复检测的Ct值40，且曲线有明显的对数增长期，判为阳性反应。否则判为荧光PCR阴性反应。必要时，对初次检测呈荧光PCR阳性反应的样品进行重复检测。10 样品检测及判定可根据需要同时进行1组4组荧光PCR检测。建议先进行结核分枝杆菌复合群IS6110，IS1081荧光PCR检测;样品呈结核分枝杆菌复合群IS6110和(或)IS1081荧光PCR阳性反应，均判为结核分枝杆菌复合群核酸检测阳性。呈结核分枝杆菌复合群核

23、酸检测阳性的样品，继续进行结核分枝杆菌荧光PCR反应和牛分枝杆菌荧光PCR反应以检测鉴定感染的菌种;检测反应呈阳性的对应判为结核分枝杆菌核酸检测阳性或牛分枝杆菌核酸检测阳性。11 注意事项检测过程防止交叉污染应注意的事项见附录B。6 A. 1 0.01 moI/L pH7. 6 PBS 先配制A液、B液。附录A(规范性附录)试剂的配制GB/T 27639-20门A液(0.2mol/L NaH2PO.溶液):称取一水合磷酸二氢铀(NaH2PO. H20)27. 6 g，或二水合磷酸二氢铀(NaH2PO. 2H20)31. 2 g，溶于蒸馆水中，定容至1L。B液(0.2mol/L Na2 HP04

24、禧液):称取十二水合磷酸氢二铀(Na2HPO. 12H20)71. 6 g，或二水合磷酸氢二铀(Na2HPO. 2比0)35.6g，溶于蒸馆水中，定容至1L。称取17g氧化铀，用适量蒸馆水溶解，量取13mL A液和87mL B液，混合，用蒸锚水定容至2L。A.2 拧攘酸铀缓冲液拧棱酸(CsHa07 H20) 5.3 g 拧朦酸饷(Na3Cs Hs 07 H2 0) 15 g 葡萄糖(CSH120S H2) 16.2 g 称取上述试剂，溶解于蒸馆水，定容至1L，提匀。采用(121:l:2)OCjO.1 MPa ,15 min高压灭菌后贮存于40C。A.3 0.5 moI/L EDTA(pH 8.

25、0) 称取186.1gEDTA，加入800mL蒸馆水中，磁力搅拌器上剧烈搅拌，用氢氧化铀(NaOH)调pH至8.0，定容至1L，分装，采用(121士2)OCjO.1 MPa, 15 min高压灭菌后贮存于室温。A.4 拧槽酸铀-磷酸缓冲液先配制pH6.8磷酸缓冲液。A液(0.2mol/L磷酸二氢铀溶液):称取磷酸二氢铀(NaH2PO. 2H20)15. 61 g，加双蒸水溶解，定容至500mL。B液(0.2mol/L磷酸氢二铀溶液):称取磷酸氢二铀(Na2HPO. 12H20)35. 82 g，加双蒸水溶解，定容至500mL。分别量取51mL A液、49mL B液，混合即成100mL pH6.

26、 8磷酸缓冲液。称取2.84g拧攘酸铀(Na3CsHsO.2H20)，加入100mL pH6. 8磷酸缓冲液中，充分溶解。采用(121士2)OCjO. 1 MPa , 15 min高压灭菌后贮存于4oC。GB/T 27639-2011 A.5 4%氢氧化铀溶液称取8g氢氧化铀，加入200mL双蒸水中，充分溶解。室温贮存。A.6 4%确酸溶液量取20mL浓硫酸，加入500mL双蒸水中，混匀。室温贮存。8 GB/T 27639-2011 附录B(规范性附录)检测过程防止交叉污染的措施B.1 采样及样品处理过程，应防止不同样品之间通过器具、手套等的交叉污染。采样及样品处理工具应经过高压灭菌或高温烘烤

27、处理，一套工具仅限一个样品使用。存放样品的容器应清洗、高压灭菌或高温烘烤处理，或使用一次性灭菌容器。B.2 实验过程，应穿工作服和戴一次性手套，勤换手套，工作服应经常清洗。B. 3 使用带滤芯吸嘴。吸嘴、离心管、PCR管等应经过高压灭菌处理，一次性使用，不得回收清洗后重复使用。B.4 样品处理与PCR加样应在不同的区域进行，不同区域配备独立的加样工具和用具。该区域可以是独立的空间间隔、有紫外消毒设施的独立的设备如核酸提取工作站、PCR加样工作站、可密闭进行紫外消毒的超净工作台、生物安全柜等。若在敞开的空间进行核酸提取或PCR加样，该空间应安装紫外灯或配备具有等同降解核酸功能的设备如移动紫外灯、

28、带紫外消毒功能的空气消毒净化器等。上述区域在每次使用后应及时清洁处理，并在使用前后照射紫外30min以上。每个区域应有专门的废弃物容器，该容器应能耐受煮沸、10%次氯酸铀溶液消毒处理。每次实验结束，应在紫外消毒前，及时清理废弃物及消毒容器，并将该废弃物容器放回工作区进行紫外消毒。B.5 PCR反应液等试剂应按检测需求分装贮存，避免同一管试剂多次开启使用。B.6 装有核酸模板、样品或试剂的离心管在打开之前，应短暂离心，避免离心管崩开，所有操作尽量避免产生气溶胶。B.7 上机运行前，应检查盖紧各PCR管，以防荧光物质或模板泄漏而污染机器。B.8 应遵循基因检测实验室其他技术要求。n w FFON|

29、ghNH国。华人民共和国家标准结核病病原菌实时荧光PCR检测方法GB/T 27639-2011 国由E* 中国标准出版社出版发行北京市朝阳区和平里西街甲2号(100013)北京市西城区三里河北街16号(100045)网址总编室:(010)64275323发行中心:(010)51780235读者服务部:(010)68523946中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷各地新华书店经销* 开本880X12301/16 印张1字数18千字2012年3月第一版2012年3月第一次印刷* 18.00元如有印装差错由本社发行中心调换版权专有侵权必究举报电话:(010)68510107定价书号:155066. 1-44343 GB/T 27639-2011 打印H期:2012年4月1H F002A