GB T 27531-2011 病毒性脑病和视网膜病病原逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)检测方法.pdf
《GB T 27531-2011 病毒性脑病和视网膜病病原逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)检测方法.pdf》由会员分享,可在线阅读,更多相关《GB T 27531-2011 病毒性脑病和视网膜病病原逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)检测方法.pdf(12页珍藏版)》请在麦多课文档分享上搜索。
1、ICS 11. 220 B 41 中华人民-=H工./、GB 和国国家标准G/T 27531-2011 病毒性脑病和视网膜病病原逆转录-聚合酶链式反应CRT-PCR)检测方法Protocol of reverse transcription polymerase chain reaction CRT-PCR) for the pathogen of viral encephalopathy and retinopathy 2011-11-21发布2012阳03-01实施数码防伪中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局中国国家标准化管理委员会发布中华人民共和国国家标准病毒性脑病和视网膜病病原逆转录
2、-聚合酶链式反应(RT-PCR)检测方法GB/T 27531-2011 中国标准出版社出版发行北京市朝阳区和平里西街甲2号(100013)北京市西城区三里河北街16号(100045)网址总编室:(010)64275323发行中心:(010)51780235读者服务部:(010)68523946中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷各地新华书店经销唔开本880X12301/16 印张O.75 字数17千字2012年2月第一版2012年2月第一次印刷铃书号:155066. 1-14037定价16.00元如有印装差错由本社发行中心调换版权专有侵权必究举报电话:(010)68510107前言本标准按照GB/T
3、1. 1-2009给出的规则起草。本标准由中华人民共和国农业部提出。本标准由全国动物防疫标准化技术委员会(SAC/TC181)归口。本标准起草单位:中华人民共和国深圳出入境检验检疫局。G/T 27531-2011 本标准主要起草人:刘查、卢体康、何俊强、史秀杰、郑晓聪、贾鹏、叶奕优、杨锦舜。I GB/T 27531-2011 1 范围病毒性脑病和视网膜病病原逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)检测方法本标准规定了病毒性脑病和视网膜病Cviral encephalopathy and retinopathy, VER)病原分离和逆转录聚合酶链反应CRT-PCR)检测方法。本标准适用于VER病原
4、的流行病学调查、诊断、检疫和监测。2 规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法GB/T 18088 出入境动物检疫采样3 缩略语下列缩略语适用于本文件。CPE:细胞病变CcytopathiceHect) CTAB:十六烧基三甲基澳化锻Chexadecyltrimethy ammonium bromide) DEPC:焦碳酸乙二醋Cdiethypyrocarbonate) EB:漠化乙链Cethidiumbromide)
5、 EDTA:乙二胶四乙酸Cethy lenediaminetetraaceticacid) HEPES:瓷乙基呱嗦乙硫磺酸4-C2-hydroxyerhyl)piperazine-1-erhanesulfonic acidJ RNA:核糖核酸Cribonucleicacid) RNasin:核酸酶抑制剂Cribonucleaseinhibitor) VER:病毒性脑病和视网膜病Cviralencephalopathy and retinopathy) 4 试剂和材料4. 1 水:符合GB/T6682中一级水的规格,用DEPC处理以除掉RNA酶。4.2 VERV病毒参考株。4.3 膜酶EDTA混
6、合消化液(见附录A中A.1)。4.4 L-15培养液(见附录A中A.2)。4.5 SSN-1细胞系:用L-15培养液25.C培养。4.6 巴11细胞系:用L-15培养液25.C培养。4.7 AMV逆转录酶:20U/rL,-20.C保存,不要反复冻融或温度剧烈变化。4.8 RNasin:20 U/rL, -20 .C保存,不要反复冻融或温度剧烈变化。4.9 膜蛋白酶。1 GB/T 27531-2011 4. 10 Taq酶:一20.C保存,不要反复冻融或温度剧烈变化。4. 11 dNTP:含dCTP、dGTP、dATP、dTTP各10mmol/L. 4. 12 引物:用于RT-PCR反应的引物浓
7、度为40mol/L。其序列如下:VERV-F: 5-CGTGTCAGTCA TGTGTCGCT -3 VERV-R:5-CGAGTCAACACGGGTGAAGA-3 4.13 乙醇:分析纯,使用前预冷到一20.C。4.14 氯仿:分析纯。4.15 矿物油:要求元DNA酶和RNA酶,用于元热盖的PCR扩增仪。4. 16 分子量标准。5 器材和设备5. 1 96孔细胞培养板。5.2 倒置显微镜。5.3 恒温培养箱。5.4 普通冰箱和超低温冰箱。5.5 组织研磨器(研磨器处理参见附录B)。5.6 离心机和离心管(离心管处理参见附录B)。5.7 PCR扩增仪。5.8 水平电泳仪。5.9 微量移液器及吸
8、头(吸头处理参见附录B)。5. 10 紫外照射仪或凝肢成像仪。5. 11 制冰机d6 VERV的分离6. 1 采样待检测鱼,体长小于4cm的鱼苗取整条鱼,体长4cm6 cm的鱼苗取头部和内脏(包括肾),体长大于6cm的鱼取脑、眼、脾和肾。按GB/T18088的标准采样。6.2 样品处理6.2.1 组织处理用组织研磨器制备组织匀浆,按1: 10的最终稀释度用L-15培养液稀释,稀释液中含有1000IU/mL 青霉素和1000g/mL链霉素,于15.C下孵育2h4h或4.C下孵育6h24 h. 7 000 r/min离心15 min,收集上清液。6.2.2 病毒分离细胞传代使用膜酶-EDTA混合消
9、化液。对1: 10的组织匀浆上清液再作两次10倍稀释,然后将1 : 10、1:100 ,1: 1000的3个稀释度的上清液以适当体积分别接种到两个生长约24h SSN-1或E-ll细胞单层的96孔板中,每孔的细胞单层最多接种100L稀释液。15.C20 .C吸附0.5hl h后,加入L-15细胞培养液。两个96孔板分别置于20.C和25.C培养。设2个阳性对照(接种VERV标准株和1个空白对照(未接种病毒的细胞)。GB/T 27531-2011 阳性对照和待测样品都接种细胞后,7d内每天用倒置显微镜检查。如果接种了被检匀浆上清稀释液的细胞培养中出现细胞病变(CPE),应立即进行鉴定。如果除阳性
- 1.请仔细阅读文档,确保文档完整性,对于不预览、不比对内容而直接下载带来的问题本站不予受理。
- 2.下载的文档,不会出现我们的网址水印。
- 3、该文档所得收入(下载+内容+预览)归上传者、原创作者;如果您是本文档原作者,请点此认领!既往收益都归您。
下载文档到电脑,查找使用更方便
5000 积分 0人已下载
下载 | 加入VIP,交流精品资源 |
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- GB 27531 2011 病毒性 视网膜 病原 逆转录 聚合 链式反应 RT PCR 检测 方法

链接地址:http://www.mydoc123.com/p-257648.html