GB T 27517-2011 鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR方法.pdf
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1、ICS 11. 220 B 41 道B中华人民圭七和国国家标准GB/T 27517一2011鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR方法A multiplex RT-PCR method to differentiate the highly pathogenic and classical porcine reproductive and respiratory syndrome virus 2011-11-21发布2012-03-01实施飞辈革轨币。中华人民共和国国家质量监督检验检菠总局中国国家标准化管理委员会发布中华人民共和国国家标准鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性
2、与经典毒株复合RT-PCR方法GB/T 27517-2011 陪中国标准出版社出版发行北京市朝阳区和平里西街甲2号(100013)北京市西城区三里河北街16号(100045)网址总编室:(010)64275323发行中心:(010)51780235读者服务部:(010)68523946中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷各地新华书店经销* 开本880X 1230 1/16 印张O.75 字数17千字2012年2月第一版2012年2月第一次印刷导书号:155066. 1-41035定价16.00元如有印装差错由本社发行中心调换版权专有侵权必究举报电话:(010)68510107剧吕本标准按照GB/T1
3、. 1-2009给出的规则起草。本标准由中华人民共和国农业部提出。本标准由全国动物防疫标准化技术委员会(SAC/TC181)归口。本标准起草单位z河南省动物疫病预防控制中心。G/T 27517-2011 本标准主要起草人z吴志明、同若潜、张志凌、张健、荆汝顶、刘光辉、赵明军、曹杰伟、钱勇、程俊贞、赵雪丽、张盼。I 1 范围鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR方法GB/T 27517-2011 本标准规定了检测以基因组非结构蛋白Nsp2编码区缺失30个氨基酸为特征的猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性毒株与非缺失30个氨基酸的猪繁殖与呼吸综合征病毒经典毒株复合RT-PCR鉴别诊
4、断方法。本标准适用于疑似猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)感染猪血清及临床病料等样品中的病毒核酸检测。2 试剂和仪器设备除另有规定外,所用生化试剂均为分析纯。提取RNA所用试剂均应使用无RNA酶的容器进行分装。2. 1 试剂2. 1. 1 拭子悬液(见附录A),组织悬液(见附录A),以上试剂常温保存。2. 1.2 阿氏液(见附录A),裂解液(TriZol), 1 X T AE核酸电泳缓冲液(见附录A),氯仿,0.01mol/L (pH7.2)的PBS(见附录A),DEPC处理水(见附录A),以上试剂4.C保存。2. 1.3 异丙醇,75%乙醇,DNA分子量标准,6X电泳上样缓冲液,以上试剂2
5、0.C保存。2. 1.4 阳性对照、阴性对照(见附录A)。2. 1.5 复合RT-PCR扩增用上、下游引物序列参见附录B。2. 1.6 鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR反应体系组成、说明及使用注意事项参见附录C。2.2 仪器设备PCR扩增仪,高速冷冻离心机(离心力在12OOOg以上),核酸电泳仪和水平电泳槽,恒温水浴锅,2 .C8 .C冰箱,一20.C冰箱,单道微量移液器(0.5L10L;2L20L;20L200L;100L1 000L),组织匀浆器或研钵,凝胶成像系统(或紫外透射仪),真空干燥器(非必备)。3 样品的采集、处理、存放及运输3. 1 样晶采集及处理过
6、程的注意事项采样过程中样本不得交叉污染,采样及样品处理过程中应戴一次性手套、口罩、帽子。3.2 样品的采集及处理3.2. 1 拭子样品3.2. 1. 1 鼻腔拭子:采样时要将棉拭子深入鼻腔来回刮35次,取鼻腔分泌物。GB/T 27517-2011 3.2.1.2 胚门拭子:将棉拭子深入胆门转一圈沽取粪便。3.2.1.3 将鼻腔拭子和胆门拭子一起放入盛有1.0mL拭子悬液的Eppendorf管中,然后将拭子悬液转入元菌Eppendorf管中,4.C条件下5000 r/min离心10min,取上清转入新的元菌Eppendorf管中,编号备用。3.2.2 组织样品组织样品采集时应采取有明显病变的淋巴
7、结、扁桃体、肺脏、脾脏、肾脏、胸腺等组织样品。用无菌的剪刀和慑子剪取待检样品0.5g左右于组织匀浆器或研钵中充分匀浆或研磨,再加O.3 mLO. 5 mL PBS混匀,然后将组织悬液转入元菌Eppendorf管中,4.C条件下5000 r/min离心10min,取上清转人新的无菌Eppendorf管中,编号备用。3.2.3 血清或抗凝血用元菌注射器自耳静脉或前腔静脉采集血液3mL5 mL,待血清析出后直接吸取至无菌Eppendorf管中,编号备用;用元菌注射器先吸入抗凝剂(阿氏液)2mL3 mL,再自耳静脉或前腔静脉采集等量血液,快速混匀后转人无菌Eppendorf管中,编号备用。3.3 存藏
8、与运送采集或处理的样品在2.C8 .C条件下保存应不超过24h;若需长期保存,应放置一70.C冰箱,但应避免反复冻融。采集的样品密封后,采用保温壶或保温桶加冰密封,尽快运送到实验室。4 操作方法4. 1 样品RNA的制备4. 1. 1 取1.5 mL灭菌Eppendorf管,每管加入300L裂解液,然后分别加入待测样品、阴性对照样品、阳性对照样品各100L,吸头反复吸打混匀(一份样品换用一个吸头);再加入100L氯仿,充分颠倒混匀(不宜过于强烈).于4C条件下,12000 r/min离心15min。4. 1. 2 吸取离心后各管中的上清液150L转移至新的1.5 mL灭菌Eppendorf管中
9、(注意不要吸出中间层),加入150L20c预冷的异丙醇,颠倒混匀,室温放置15min. 4. 1. 3 4.C条件下12000 r/min离心15minCEppendorf管开口保持朝离心机转轴方向放置)。轻轻倒去上清,倒置于吸水纸上,吸干液体,不同样品应置于吸水纸不同地方沾干。加入1mL 75%乙醇,轻轻颠倒洗涤。4. 1. 4 4.C条件下12000 r/min离心5minCEppendorf管开口保持朝离心机转轴方向放置)。轻轻倒去上清液,倒置于吸水纸上,吸干液体,不同样品应在吸水纸不同地方吸干。4. 1.5 4.C条件下12000 r/min离心30s,将管壁上的残余液体甩到管底部,用
10、微量加样器尽量将其吸干,一份样本换用一个吸头,吸头不要碰到有沉淀一面,真空抽干3min5 min或室温干燥10min. 不宜过于干燥,以免RNA不易溶解。4. 1. 6 加入11LDEPC处理水,轻轻渥匀,溶解管壁上的RNA,2000 r/min离心5s,冰上保存备用。提取的RNA应在2h内进行RT-PCR扩增或放置于一70.C冰箱备用。4.2 反转录CcDNA的合成)配制反转录反应体系(参见附录。,向每管中加入4.1.6中相应RNA10L,37 .C水浴1h或置于PCR仪中37.C 1 h,反应结束后,70.C15min灭活反转录酶,直接用于下面的PCR扩增或一20.C 冻存备用。2 GB/
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