GB T 28236-2011 染色体畸变估算生物剂量方法.pdf
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1、ICS 13.100 C 60 GB 中华人民共和国国家标准GB/T 28236-20门染色体畸变估算生物剂量方法2011-12-30发布数码防伪Method of chromosome aberration analysis for biological dose assessment 中华人民共和国卫生部申#中国国家标准化管理委员会。叩2012-05-01实施目U昌本标准代替GB/T12715-1991(染色体畸变分析估算生物剂量的方法上本标准与GB/T12715-1991相比主要变化如下:G/T 28236-2011 一一补充了标准的范围也适用于一次比较均匀的全身外照射复合烧伤的病例的生
2、物剂量估算;一一将可较准确估算剂量的取血时间改成60d: 一一强调采用培养开始加秋水仙素法和用dic(或dic+r)估算剂量;一一增加了不均匀和局部照射的统计检验和生物剂量估算方法;一一原标准基本是引用IAEA第260号技术报告丛书(1986),本标准尽量采用我国的资料,如染色体畸变图、生物剂量估算的举例、某些统计分析方法、取血有效时间和估算剂量的注意事项等。同时,也参考和引用了IAEA第405号技术报告丛书(2001)的有关内容。本标准附录A是规范性附录,附录B是资料性附录。本标准由中华人民共和国卫生部提出并归口。本标准起草单位:中国疾病预防控制中心辐射防护与核安全医学所。本标准主要起草人:
3、白玉书。本标准由中华人民共和国卫生部负责解释。本标准所代替标准的历次版本发布情况为:GB/T12715-1991。I GB/T 28236-2011 染色体畸变估算生物剂量方法1 范围本标准给出了电离辐射诱发人外周血淋巴细胞染色体畸变的剂量-效应曲线的建立和用其估算生物剂量的方法。本标准适用于一次比较均匀的全身外照射事故受照人员的剂量估算。本标准也适用于一次比较均匀的全身外照射复合烧伤的病例剂量估算。本标准不适用于分次照射、长期小剂量累积照射和内照射的生物剂量估算。2 术语和定义下列术语和定义适用于本标准。2. 1 生物剂量计biological dosimeter 用以估算受照剂量的生物体系
4、,该生物体系受到照射后的反应与受照剂量之间存在着某种定量关系,从而可用来推定受照剂量。2.2 剂量效应曲线dose-response curve 某种物质或生物体系受到照射后的反应与受照剂量之间存在着某种定量关系,可将二者拟合成适当的数学模式,并制备出相应的刻度曲线,称之为剂量-效应曲线,可用其估算受照剂量。2.3 染色体chromosome 基因的载体。存在于细胞核内,当细胞分裂时,在碱性染料作用下着色较深。由脱氧核糖核酸(DNA)、蛋白质和少量核糖核酸(RNA)组成。2.4 染色体畸变chromosome aberration 正常染色体在物理、化学或生物等因素作用下发生的结构和数目上的异
5、常。2.5 染色体型畸变chromosome-type aberration 照射时处于Go或Gj期的细胞,由于在DNA合成之前,染色体以一条单体行使其功能,这时诱发的畸变,经S期复制后,形成涉及两条单体的染色体型畸变,主要包括元着丝粒断片、微小体、元着丝粒环、着丝粒环、双或多着丝粒体、倒位、易位、插入和缺失等。2.6 染色单体型畸变chromatid-type aberration 在S期受照的大多数细胞和Gz期受照的细胞,已进行DNA合成,即已形成两个独立的单体。所以只诱发染色单体型畸变,主要包括染色单体断裂、染色单体互换、染色单体间隙和等染色单体间隙等。2. 7 非稳定性染色体畸变uns
6、table chromosome aberration 非稳定性染色体畸变包括元着丝粒断片、微小体、元着丝粒环、双着丝粒体和着丝粒环。无着丝粒断片、微小体、元着丝粒环,由于无着丝粒,在纺锤体上不能定向,很快从分裂细胞中丢失。双着丝粒体和着丝粒环往往在分裂后期形成染色体桥或导致四倍体而常引起细胞死亡,将上述五种畸G/T 28236-20门变称为非稳定性畸变。2.8 稳定性染色体畸变stable chromosome aberration 倒位、易位、插入和缺失等畸变,在细胞分裂时不存在任何力学上的障碍,细胞复制不受影响,可较长时间在体内存在,称之为稳定性畸变。3 试剂配制、细胞培养和标本制备3.
7、 1 试剂配制3. 1. 1 培养灌配制3. 1. 1. 1 取RPMI-164010.4 g(原包装),播于800mL去离子水中。3. 1. 1. 2 于上述培养液中加入抗生素,其终浓度为=青霉素100IU/mL.链霉素100IU/mLo 3. 1. 1. 3 用5%的NaHC03溶液将培养液的pH调到7.2,充分混匀后0.22m过滤除菌。3. 1. 1. 4 加入灭活的新生牛血清200mL,使其浓度占培养液总量的20% 3. 1. 1. 5将上述培养液充分混匀后,分装到灭菌的培养瓶中,每瓶4mL,置入-20oC低温冰箱保存备用。3.1.2 0.2%肝素溶班称取200mg肝素铀粉溶于100m
8、L生理盐水中,55.12kPa灭菌15mino 3. 1. 3 秋水仙素溶液(分子式:C22 H25 06 N ,分子量:399)称取秋水仙素100mg,溶于100mL生理盐水(1mg/mL)即为原液,分装成小瓶,低温保存。应用时配制成2.5月/mLo3. 1. 4 PHA干粉按使用说明配制。3. 1.5 O. 075 mol/L KCl低渗液称取5.60g KCI溶于1000 mL去离子水中,放入37oC恒温箱中备用。3. 1. 6 Giemsa染渡Giemsa染料中性甘油(CP)甲醇(AR)0.5 g 33.0 mL 33.0 mL 先将Giemsa染料放入乳钵中,加甘油后研磨片刻,移入小
9、烧杯内,放置55oC 60 oC水浴箱中2h , 用玻璃棒搅拌,榕解后加入33mL甲醇即为原液,用前按Gi巳msa:PBS=l : 20稀释。3.2 细胞培养和标本制备3.2. 1 培养开始加秋水仙素法3.2. 1. 1 将冰冻保存的培养液取出,室温下融化。3.2. 1.2 用肝素溶液湿润灭菌注射器后,抽取静脉血,于每瓶组合培养液内加入0.4mL抗凝血,平行接种2瓶,对过量受照者的样品接种不少于3瓶。根据有关信息,估计受照剂量较大(5Gy)者,接种不少于6瓶。3.2. 1. 3 加入PHA,加入量按使用说明确定。3.2. 1. 4 加入秋水仙素,最终浓度为0.04g/mL。3.2. 1. 5
10、t昆匀,标记姓名、日期,置入37oC恒温箱培养。3.2. 1. 23. 2. 1. 5的操作必须在无菌条件下进行。3.2. 1.6 培养48h50 h,取出培养瓶,去上清液。3.2.1.7 加入0.075mol/L KCl低渗液8mL,混匀,低渗10min。3.2. 1. 8 加入固定液(甲醇=冰乙酸=3: 1)1 mL预固定。3.2. 1. 9 1 000 r/min离心10min,去上清,再加固定液8mL,混匀。3.2.1.10 固定20min,再离心10min,去上清,重复固定一次。3. 2. 1. 11 冰干法制片,每片滴3滴沉淀物,过火一燃即可。3.2. 1. 12 干燥后Giems
11、a染色。3.2.2 荧光加姬姆萨(FPG)技术3.2.2.1 将冰冻保存的培养液取出,室温下融化。GB/T 28236-2011 3.2.2.2 用肝素溶液湿润灭菌注射器后,抽取静脉血,于每瓶组合培养液内加入0.4mL抗凝血,平行接种2瓶,对过量受照者接种不少于3瓶。对估计受照剂量较大(5Gy)者,接种不少于6瓶。3.2.2.3 加入PHA,加入量按使用说明确定。3.2.2.4 加Brdu(5-澳脱氧尿嘻睫核昔),最终浓度为15g/mLo3.2. 2. 23. 2. 2. 4的操作必须在无菌条件下进行。3.2.2.5 混匀,标记姓名、日期,置入37oC恒温箱避光培养46h加秋水仙素,继续培养至
12、48h50 h 收获。3.2.2.6制片后用荧光染料处理。将标本浸入浓度为2.5g/mL的Hoechst33258溶液(避光), 40 min后用蒸馆水冲洗。3.2.2.7 晾干后往标本上滴加2XSSC溶液,标本所在玻璃板温度为50oC60 oC,用黑光灯或紫外线灯照射30mino 3.2.2.8 晾干后Giemsa染色。4 剂量-效应曲线的建立方法4. 1 照射条件和培养方法4. 1. 1 必须提供可靠的、明确的样品照射的物理剂量。受照标本应与照射源保持一定的距离以达到均匀照射的目的。有条件的实验室应建立包括不同辐射类型(如X射线、射线、中子)、不同剂量率(低LET辐射)的剂量效应曲线。在O
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