DB4401 T 85—2020 红掌组培种苗生产技术规程.pdf

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1、ICS 65.020.20B 05DB4401广州市地方标准DB4401/T 852020代替 DB440100/T 1692014红掌组培种苗生产技术规程The production regulation of Anthurium andreanum in plantlet vitro2020-06-08 发布2020-07-01 实施广州市市场监督管理局发 布DB4401/T 852020I目次前言.1范围.12规范性引用文件.13术语和定义.14设备设施及化学药剂.14.1设备设施.14.2化学药剂.25消毒灭菌.35.1洗涤室消毒灭菌.35.2接种室消毒灭菌.35.3培养室消毒灭菌.3

2、5.4超净工作台消毒灭菌.35.5培养基的消毒灭菌.35.6接种器具消毒灭菌.35.7污染瓶苗消毒灭菌.36培养室环境条件控制.46.1温度.46.2湿度.46.3光照.47组培快繁技术.47.1培养基配制.47.2外植体选择.47.3外植体消毒灭菌.47.4接种.57.5愈伤组织诱导培养.57.6愈伤组织增殖培养.57.7芽分化培养.57.8不定芽的继代增殖培养.57.9生根培养.57.10组培苗炼苗.68出瓶移栽技术.68.1组培苗清洗消毒.68.2移植基质.6DB4401/T 852020II8.3移植容器选择.68.4种植.68.5日常管理.78.6病虫害防治.99包装.99.1包装材

3、料.109.2包装方法.10附录 A（资料性附录）红掌组培快繁培养基基本配方.11附录 B（资料性附录）红掌组培快繁常用植物生长调节物质.12DB4401/T 852020III前言本标准按GB/T 1.12009标准化工作导则 第1部分：标准的结构和编写进行编写。本标准由DB440100/T 1692014红掌组培种苗生产技术规程确认转化而来，并替代DB440100/T1692014红掌组培种苗生产技术规程。本标准与DB440100/T 1692014相比，除编辑性修改外主要技术变化如下：修改了设备设施；修改了光照；修改了培养基配制；修改了愈伤组织增殖培养、芽分化培养、生根培养；修改了组培苗

4、清洗消毒；修改了基质要求；删除了线克熏蒸消毒法；修改了移植容器选择；修改了肥分管理；修改了病虫害防治。本标准由广州市农业农村局提出。本标准起草单位：广州花卉研究中心。本标准主要起草人：周晓云、宿庆连、黄明翅、曾伟达、陈一新、李莲。DB440100/T 1692014 于 2014 年 4 月 30 日首次发布。DB4401/T 8520201红掌组培种苗生产技术规程1范围本标准规定了红掌（Anthurium andreanum）组培种苗生产技术的术语和定义、设备设施及化学药剂、消毒灭菌、培养室环境条件控制、组培快繁技术、出瓶移栽技术和包装。本标准适用于红掌组培种苗生产。2规范性引用文件下列文件

5、对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。LY/T 1589花卉术语3术语和定义LY/T 1589 界定的以及下列术语和定义适用于本文件。3.1红掌组培种苗plantlet vitro of Anthurium以组织培养方法克隆的应用于生产的红掌苗称为红掌组培种苗。3.2培养材料culture material在无菌培养容器内培养基上生长的植物组织材料称为培养材料。3.3增殖 proliferation培养材料产生出新的具有特定结构和功能的组织、器官或小苗的过程。3.4继代（转接）subc

6、ulture培养过程中将培养材料周期性地分株、分割、剪切后转接于新鲜培养基上进行增殖的过程。4设备设施及化学药剂4.1设备设施4.1.1组培室组培室应选择环境优良、无污染的地方，并保证其生产过程中不对周围环境造成污染。各部分的配置要合理，做到工作方便、使用安全、节省能源。空间布局上包括准备室、接种室、培养室、洗涤室、实验室、贮存室，根据需要还宜配置风淋室、更衣室、办公室等。4.1.2生产设备DB4401DB4401/T 85202024.1.2.1洗涤设备工厂化生产可选用自动或半自动洗瓶机，实验室或小型车间选用人工洗瓶。普通洗涤用具包括洗涤水槽、塑料盆、塑料桶、塑料箱等，有条件的还可配置干燥箱

7、、晾瓶架等。4.1.2.2灭菌设备高压蒸汽灭菌锅（大中型卧式、立式及小型手提式）、器械消毒器、紫外灯、烘干箱、微滤孔器等。4.1.2.3接种设备及工具超净工作台、镊子、剪刀、解剖刀、接种针、钢丝架、酒精灯等。4.1.2.4培养设备培养容器（果酱瓶、三角瓶、组培专用塑料瓶、试管等）、培养架、振荡或旋转培养器、空调、光照培养箱及加温设备等。4.1.2.5实验设备冰箱、纯水器、电子天平、架盘天平、酸度计、温湿度表、照度计、盛装器皿（烧杯、试剂瓶等）、计量器皿（量筒、容量瓶、移液管等）以及其它实验室常用器具等。4.1.3生产设施4.1.3.1温室用于红掌组培种苗炼苗、出瓶移栽、生长和种源保存养护等生产

8、过程，须具有调控光照、温度、湿度等环境条件的功能。4.1.3.2降温系统宜采用空调、水帘风机降温系统、雾化降温系统或内循环通风扇等。4.1.3.3加温系统可采用空调、燃油或燃煤加温机，亦可采用水暖等加温设备。如能安装温室内保温系统，减少加温空间，加温效果更佳。4.1.3.4遮光系统宜采用双层活动式遮光系统，光照控制在3 000 Lx 20 000 Lx。4.1.3.5栽培床架宜采用滚动式栽培床架，确保种苗与地面的隔离。4.1.3.6灌溉系统宜采用喷灌设备、高压动力施肥机等。4.2化学药剂4.2.1洗涤剂DB4401/T 8520203选用无污染洗衣粉、洗洁精、去污粉等。4.2.2消毒灭菌剂选用

9、酒精、氯化汞、次氯酸钠、高锰酸钾、甲醛、过氧乙酸、灭菌净等。4.2.3无机盐类和有机物类常用培养基如MS、Nitsch等大量元素和微量元素所规定的无机盐类和有机物类；或者根据不同红掌品种组培生产所用培养基种类购置所需化学试剂。常用红掌组培培养基成分参见附录A。4.2.4植物生长调节物质细胞分裂素类：6-苄基氨基嘌呤（6-BA）、激动素（KT）、玉米素（ZT）、2-异戊烯腺嘌呤（2ip）等。生长素类：吲哚丁酸（IBA）、萘乙酸（NAA）、吲哚乙酸（IAA）、2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)等。4.2.5碳水化合物蔗糖。4.2.6固化剂可选用以下任何一种：卡拉胶、琼脂粉或其他组培专用培养基固化剂

10、。5消毒灭菌5.1洗涤室消毒灭菌每天用灭菌净、过氧乙酸等喷洒清洁地面，保持室内干净。5.2接种室消毒灭菌接种前用紫外灯照射20 min 30 min，并定期用高锰酸钾及甲醛混合薰蒸。5.3培养室消毒灭菌定期用高锰酸钾及甲醛混合薰蒸，或用75%酒精喷雾消毒，也可选用广谱性杀菌烟雾剂薰蒸。5.4超净工作台消毒灭菌接种前用紫外灯照射20 min 30 min，并用75%酒精喷洒台面，或用灭菌净擦拭台面；定期清洗超净工作台过滤膜以保证过滤膜清洁。5.5培养基的消毒灭菌高温高压蒸汽消毒（巴氏消毒法），通常在压力1.1 kg/cm2、温度121 条件下保持20 min即可。5.6接种器具消毒灭菌使用前进行

11、蒸气消毒；接种过程中采用小型干热灭菌器或用酒精灯灼烧消毒。5.7污染瓶苗消毒灭菌DB4401DB4401/T 8520204用消毒锅高温高压消毒，然后再清洗培养容器。6培养室环境条件控制6.1温度控制在25 2。6.2湿度空气相对湿度宜保持在50%左右。6.3光照根据培养材料的需光特性调整光照强度；一般培养室光照强度宜控制在1 500 Lx 3 000 Lx，工厂化生产，为降低成本可考虑利用自然光照。7组培快繁技术7.1培养基配制7.1.1培养基选择根据不同红掌品种的生长发育特性选择合适的基本培养基种类和激素配比，常用的有MS、改良MS（铵态氮的水平降低1/2）或Nt培养基，pH值在5.8至6

12、.2之间。7.1.2母液的配制和保存7.1.2.1母液的配制母液可以配制成单一化合物母液，也可以配制成含几种化合物的混合母液，如大量元素母液与微量元素母液。大量元素母液配制10倍，微量元素母液配制100倍，激素配制浓度一般为0.2 mg/mL 1.0mg/mL，激素的配制方法参见附录B。7.1.2.2母液的保存母液配制好后，存放于4 的冰箱中。7.1.3培养基配制流程准备好干燥洁净的培养瓶、母液、蒸馏水、蔗糖、固化剂等，按以下流程制作：洁净水（一般采用经过反渗透或过滤处理的自来水）+母液+糖+固化剂+有机附加物混合pH值调整至 5.8 加热溶解分装封口灭菌冷却凝固。7.2外植体选择宜在温暖、晴

13、朗天气的早上剪取生长健壮、无病虫害、能保证原品种性状的红掌嫩叶、嫩茎等作为外植体。剪叶的刀具每使用1次须用75%酒精溶液消毒。剪取的外植体应做好品种名称标记，并尽快在实验室进行消毒处理。7.3外植体消毒灭菌DB4401/T 8520205先用自来水冲洗外植体，再用2%的灭菌净溶液加1滴吐温对外植体进行表面消毒12 min 15 min，其间不断摇动溶液。取出外植体，用纯净水进行冲洗。经表面消毒后的外植体在超净工作台上用0.1%HgCl2溶液浸泡8 min 10 min。取出外植体，用无菌水冲洗5次 6次，再用无菌水浸泡10 min 12min，后用无菌水冲洗外植体3次 5次。7.4接种在超净工

14、作台上将已完成消毒处理的外植体置于无菌垫纸或经消毒的不锈钢碟上，用经过灭菌的接种刀、镊子将外植体切成约1.0 cm 1.0 cm的小块，后接种到诱导培养基中，培养基宜选用：MS或Nt+6-BA 2 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L+蔗糖30 g/L+卡拉胶4 g/L 7 g/L等。每瓶接种1块 4块（瓶容积为250 mL，下同）。接种时叶背要平放于培养基表面。7.5愈伤组织诱导培养接种完成后将其移到培养室进行愈伤组织诱导培养，培养温度为25 2。前期宜采用暗培养，愈伤组织诱导出来后，宜在200 Lx 500 Lx左右的弱光条件下培养。7.6愈伤组织增殖培养愈伤组织长大至米粒大小时，选取致

15、密的愈伤组织块转接到增殖培养基进行愈伤组织的增殖培养。继代时，每30 d转接1次，每瓶放3块 4块。愈伤组织增殖培养基宜选用：MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA0.05 mg/L+蔗糖3 g/L+卡拉胶4 g/L 7 g/L等，培养条件：温度25 2、光强1 500 Lx 2 000 Lx、光照时间5 h/d。7.7芽分化培养愈伤组织增殖至适当的数量时，转接到芽分化培养基上进行芽分化培养，每35 d转接1次，每瓶放3块 4块。芽分化培养基宜选用：MS+6-BA 0.3 mg/L 0.7 mg/L+NAA 0.05 mg/L+蔗糖30 g/L+卡拉胶4 g/L 7 g/L等。培养条件：温度

16、25 2、光强1 500 Lx 2 000 Lx、光照时间5 h/d。7.8不定芽的继代增殖培养选择出叶正常、茎直、芽健壮、基部愈伤组织长势旺盛的材料进行继代增殖培养。每40 d 50 d继代增殖1次。转接种时，用接种刀将丛生芽以4个 5个芽为1个组织块分开，并把褐化的坚硬组织块剔除。每瓶放入（5块 6块）大小约为 0.5 cm 1.0 cm的丛芽组织块。继代培养转接时宜做好继代次数的登记，便于质量跟踪。继代次数宜控制在20代以内。继代增殖培养基宜选用：MS+6 BA0.3mg/L 0.7 mg/L+KT 0.2 mg/L+NAA 0.03 mg/L+蔗糖 30 g/L+卡拉胶4 g/L 7

17、g/L等。随着继代次数的增加，6-BA的用量应逐渐降低，最后1次继代可不用 6-BA，而改为添加适量的NAA，以利于生根和提高生根率。培养条件：温度25 2、光照强度2 000 Lx 4 000 Lx、光照时间8 h/d。7.9生根培养当芽增殖到理想数量时，转入生根培养基进行生根培养。在超净工作台上，将丛芽从培养瓶中取出，选择已长出3片 4片小叶、株高约2 cm的芽单个切开，并进行大小分级，将大小相对一致的芽接入同一培养瓶中，每瓶12株。生根培养基宜选用：1/3 MS+NAA 0.3 mg/L 0.4 mg/L+活性炭1 g/L 2g/L+蔗糖20 g/L+卡拉胶4 g/L 7 g/L，pH=

18、5.8等。培养条件：温度25 2、光照强度2 000Lx6 000 Lx，光照时间10 h/d。培养约50 d 60 d，当长出3条 5条根，根长为1 cm 2 cm时即可出瓶移栽。DB4401DB4401/T 85202067.10组培苗炼苗组培苗在移栽前须在与移栽环境条件相对一致的条件下进行炼苗，温度控制在25 2，炼苗7 d 10 d，然后移栽。8出瓶移栽技术8.1组培苗清洗消毒组培苗出瓶时宜用水温为22 25 的清水轻柔冲洗干净，再用50%多菌灵、75%百菌清或70%甲基托布津800倍 1 000倍液浸泡3 min 5 min，稍沥干水后覆盖保湿，等待移植。8.2移植基质8.2.1基质

19、要求要求具有较好的保水、保肥性能，具有良好的排水透气性，不含有害物质，其EC值 0.5 ms/cm，pH值在5.5至6.5之间。粒径 20 mm的泥炭是红掌组培苗较理想的移栽基质。8.2.2基质消毒8.2.2.1甲醛熏蒸消毒法用40%甲醛（福尔马林）稀释50倍液均匀喷洒于基质上，充分拌匀后用薄膜密封，堆置5 d后揭开薄膜摊开基质，每日翻动1次 2次，让有毒的甲醛气体充分挥发7 d后使用。8.2.2.2高温蒸汽消毒法高温蒸汽消毒是目前最好的基质消毒方法。用专用耐高温帆布密封已配制好的基质，通过管道把蒸汽输送到基质中心，至基质表面温度达到60 80，保持20 min 60 min即可。8.3移植容

20、器选择根据种苗的大小、季节选择移植筛盘或穴盘，常用的移植筛72孔穴盘、128孔穴盘、200孔穴盘等。8.4种植8.4.1种植种植前，根据苗的大小进行分级。种植时先将栽培基质盛满穴盘并将基质刮平，如是育苗筛，则栽培基质装至筛高约1/2至2/3处，稍震动刮平基质，用小竹签挖好苗孔，将苗轻轻放进，不损伤苗根，回填基质，种植深度以基质能覆盖最下一片叶腋处为宜，种植完成后即喷雾保湿。8.4.2种植后恢复期管理移栽后10 d为恢复期，须采取保湿遮光处理。前5 d每天向叶面喷雾3次 5次，后5 d每天向叶面喷雾2次 3次，具体喷雾次数可根据栽培环境湿度条件而定。期间控制温度在22 28、光照强度在1 200

21、 Lx2 000 Lx、空气相对湿度在85%至90%之间，基质保持湿润但不积水。15 d后，可以适当增强光照，进入正常苗期管理。8.4.3中苗种植DB4401/T 8520207当小苗长至8 cm高以上时可移入8.0 cm 8.0 cm的营养杯或胶杯，每杯种植大小一致的双株苗。8.5日常管理8.5.1环境条件恢复期过后，组培苗生长适温为日温25 28、夜温19 21，空气相对湿度为85%至90%，光照强度为5 000 Lx 12 000 Lx。温度低于15 或高于33 时组培苗生长缓慢、停止生长，甚至死亡。8.5.2水分管理8.5.2.1用水宜采用EC值 0.1 ms/cm的洁净水。每20 d

22、 30 d基质要用清水淋透1次，防止基质中多余的肥分积累。8.5.2.2水分调控红掌种苗在不同生长阶段、不同季节对水分的需求不同。生长初期（出瓶移植60 d内）和低温季节（一般指冬季、初春）对水分要求不多，每次淋水不要过多。生长中、后期和高温期（一般指夏天）、生长旺盛季节（一般指春末、秋季）需水量较多，可一次浇透。浇水频率一般视基质干湿变化而定（基质含水量低至50%左右颜色开始偏白时，可以进行浇水）。8.5.3肥分管理8.5.3.1肥料选择肥料宜选择含有中微量元素20-10-20、20-20-20、15-10-30水溶性肥料。8.5.3.2施用红掌种苗施肥以淋施为主，出瓶苗移植15 d后开始施

23、肥，前3次 4次施肥宜施用N-P2O5-K2O为20-20-20水溶性肥料，浓度为2 000倍，之后可交替施用N-P2O5-K2O为20-10-20和15-10-30水溶性肥料，使用浓度要根据生长状态而定，一般前2个月浓度为1 500倍 2 000倍，以后可以将浓度增加至800倍 1 200倍，施用频率为5 d 7 d 1次，施用时间一般安排在上午，施用后及时向叶面喷水，防止叶片受到肥料伤害。8.5.4光照调节光照强度主要通过温室顶部的活动遮光网进行调节，红掌种苗需要的光照强度应根据不同的生长阶段（见表1）而定，当温室内光照强度低于光照要求时，收起活动遮阳网，提高温室内光照强度；当光照强度高于

24、光照要求时，可展开活动遮阳网遮荫降低光照，避免强光照射对红掌幼苗产生灼伤。表 1红掌种苗不同阶段对光照的要求生长时期移栽 15 d 内移栽 16 d 60 d移栽 61 d 120 d移栽 121 d 至小苗出售最大光照强度3 000 Lx8 000 Lx12 000 Lx14 000 Lx8.5.5温度调控DB4401DB4401/T 8520208红掌种苗的生长适宜日温为25 28，夜温为19 21。高温季节可通过打开活动遮阳网遮荫、开启天窗通风，或启动循环通风扇、水帘风机降温系统、雾化降温机等设备设施进行温室内降温。冬季，当温度低于15 时，启动保温加温设施设备进行保温加温（见表2）。表

25、 2红掌种苗生产温室在不同温度下宜采取的处理措施温 度建议采取的措施低于 15 启动保温设施，和加温设备进行加温，夜间保持叶片干爽16 19 密闭温室，适当保温20 27 开启天窗，卷起周边薄膜通风28 30 关闭活动遮阳网遮荫，适当启动降温设备进行降温高于 30 尽可能开启所有降温设备进行降温8.5.6环境湿度调节红掌种苗的生长适宜空气相对湿度为70%至80%。当空气相对湿度低于50%时可通过水帘风机降温系统或用雾化降温机加湿；当空气相对湿度高于90%时可用水帘风机或循环通风扇加强通风，减少淋水量，确保入夜前叶片尽可能不留水珠（见表3）。当环境湿度高于80%以上时，温室内适当的通风对于加快植

26、株叶片的水分蒸腾、减少病虫害是非常必要的。表 3红掌种苗在不同温度情况下的湿度要求及生理作用温度范围湿度要求生理作用16 19 40%60%较低湿度有利于保温御寒20 27 60%75%最适生长温度和湿度28 30 75%85%高温伴随高湿也有利于植株生长8.5.7其他管理措施8.5.7.1栽培基质 pH 值和 EC 值的检测及调整措施每月宜进行一次栽培基质的pH值和EC值检测，pH值控制在5.5至6.0之间，EC值控制在0.6 ms/cm 0.8 ms/cm之间。当pH值偏低时，可用清水淋透或采用0.05%的碳酸钾浇灌基质提高基质的pH值。当基质的EC值偏高时应降低肥水浓度或者停止施肥只进行

27、浇水，浇水时尽可能淋透基质以冲洗掉过多积累的盐分，当基质的EC值偏低时，可加强施肥。8.5.7.2养分检测如果条件许可，宜定期进行养分检测。每使用完1批次肥料，宜对植株和栽培基质进行1次营养检测，以调整肥料中各元素的比例，制定出最适合植株生长发育需要的肥料配方。8.5.7.3清洗温室温室屋面玻璃或薄膜的透光率低于75%时，应对其进行清洗。8.5.7.4清洁温室DB4401/T 8520209及时清除温室内杂草、青苔，对红掌种苗生产温室及其配套设施，特别是温室地板和苗床应每年进行定期的消毒灭菌。8.6病虫害防治8.6.1主要病害防治8.6.1.1根腐病、茎腐病危害症状：一般在栽培基质过湿时易发生

28、，多从底部根系开始，腐烂变褐，叶边变黄下垂，疫霉菌引起的根腐可使茎部和叶片受害，根和茎部呈褐色。防治措施：发病初期，用药剂浇灌基质，适宜药剂有：甲基托布津，瑞毒霉，多菌灵，亮盾，恶霉灵等。7 d用药1次，同一种药剂连续使用不超过3次。8.6.1.2叶斑病危害症状：病斑始于叶尖或叶缘，形状不规则，由小逐渐扩大，病斑褐色，边缘淡黄色，严重时可扩展至整片叶，叶片干枯。防治措施：每周喷药1次，连续喷3次 4次，每2周轮换不同药剂。适宜药剂有：百菌清，甲基托布津，雷多米尔等。8.6.1.3炭疽病危害症状：多于叶尖或叶缘发病，病斑呈圆形或半圆形。发病初期，病斑部位的叶片褪绿黄化，边缘褐色，中间灰白色，轮纹

29、有或无；发病后期，病斑有许多小黑点，湿度过大时，上有淡黄或黄色粘液出现。高湿是发生此病的主要原因，病原是盘长孢属或刺盘孢属真菌。防治措施：药剂防治和加强栽培管理，加强通风，及时摘除病叶。在发病初期，每周喷药1次，连续喷药2次 3次，每2周轮换不同药剂。适宜药剂有：世高，百菌清，炭疽净等。8.6.2主要虫害防治8.6.2.1蓟马为害症状：主要为害幼嫩的叶片、叶柄，从叶背为害，为害后叶片出现褐色条纹，严重时叶片皱缩或畸形。防治措施：有虫为害时连续喷药3次。适宜药剂有：吡虫啉，阿维菌素，蓟落，啶虫脒。8.6.2.2红蜘蛛为害症状：主要为害嫩叶和叶芽，使嫩叶和芽枯萎，老叶变黄。防治措施：为害初期及时用

30、药喷杀，发现有虫为害时连续喷药3次，喷药时注意叶背、叶面、叶基都应喷有药液。适宜药剂有：虫螨杀，除螨灵，中保杀螨乳油，阿维菌素。8.6.2.3斜纹夜蛾为害症状：主要为害叶片，以嫩叶为主，造成叶片缺刻状损伤，多夜间为害。防治措施：发生高峰期如夏季和秋季约30 d喷1次杀虫剂，发现有虫为害时可连续喷药2次。适宜药剂有：乐斯本，速扑杀，万灵，追击手，速凯，甲维盐，阿维菌素，除尽等。9包装DB4401DB4401/T 852020109.1包装材料包装材料应能保护红掌种苗不受低温危害、高温灼伤和机械损伤，包装箱规格应便于装车和运输，坚固不易变形。常用的包装箱有纸箱（65.0 cm 38.0 cm 30

31、.0 cm）和泡沫箱(59.0 cm 44.5 cm 29.5 cm)等。9.2包装方法包装方法有逐株拔出包装与连育苗容器一起包装两种方法，拔苗包装时植株需保持干爽，基质轻微湿润（含水量在60%左右），包装时可根据种苗的大小20株 50株为1捆，也可以一层纸一层苗，苗的摆放为头靠箱的两边，每箱要装紧。包装材料小苗用纸质材料包装、中苗用薄膜袋套袋。装箱后在箱面注明品种、规格、数量、生产单位、地址、联系电话等。装箱后封口、打包装带和适当留通气孔。DB4401/T 85202011AA附录A（资料性附录）红掌组培快繁培养基基本配方红掌组培快繁培养基基本配方参见表A.1。表 A.1红掌组培快繁培养基基

32、本配方单位：mg/L培养基成分Murashige&Skoog（MS）（1962）Nitsch（Nt）（1969）NH4NO31 650720KNO31 900950CaCl22H2O440CaCl2166MgSO47H2O370185KH2PO417068Na2-EDTA37.337.3FeSO47H2O27.827.8MnSO44H2O22.325ZnSO47H2O8.610H3BO36.210KI0.83Na2MoO42H2O0.250.25CuSO45H2O0.0250.025CoCl26H2O0.025VB10.100.50烟酸0.505.0VB60.500.50肌醇100100甘氨酸

33、2.02.0蔗糖30 00020 000pH5.85.5DB4401DB4401/T 85202012BB附录B（资料性附录）红掌组培快繁常用植物生长调节物质红掌组培快繁常用植物生长调节物质参见表B.1。表 B.1红掌组培快繁常用植物生长调节物质类 别种 类配制方法常用浓度(mg/L)功 能细胞分裂素类6-BA先用少量（0.5 1.0）moL/L 的盐酸溶解，然后加蒸馏水定容。0.1 2.0促进细胞分裂与扩大，诱导芽的分化。促进侧芽萌发生长，抑制顶端优势；常与生长素配合使用，用以调节细胞分裂、细胞伸长、细胞分化和器官形成。KT0.05 2.0ZT0.05 2.02ip0.05 2.0生长素类IAA先用少量 1.0 moL/L的 KOH 或 NaOH 溶解，然后加蒸馏水定容。0.1 1.0促进细胞伸长生长和细胞分裂。0.5 5.0促进不定根和侧根形成。IBA0.05 1.0促进细胞伸长生长和细胞分裂。0.2 5.0促进不定根和侧根形成。NAA0.01 0.50促进细胞生长和扩大。0.2 2.0促进生根。2,4-D0.01 0.50诱导愈伤组织和胚状体的产生。