WS T 651-2019 医用低温蒸汽甲醛灭菌指示物评价要求.pdf

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1、ICS 11.080 C 59 WS 中华人民共和国卫生行业标准 WS/T 651 2019 医用低温蒸汽甲醛灭菌指示物评价要求 Evaluation requirement of indicators for medical purpose-low temperature steam and formaldehyde sterilization processes 2019 - 01 - 30 发布 2019 - 07 - 01 实施 中华人民共和国国家卫生健康委员会 发布 WS/T 651 2019 1 前 言 本标准按照 GB/T1.1 2009给出的规则起草。 本标准起草单位： 山东省

2、疾病预防控制中心、中国疾病预防控制中心环境与健康相关产品安全所、江苏省疾病预防控制中心、 山东省精神卫生中心、 广东检验检疫技术中心、 临沭县安全生产监督管理局、潍坊医学院 。 本标准主要起草人： 崔树玉、杨彬、张流波、李子尧、刘雷、苏冠民、孙文魁、张剑、沈瑾、孙惠惠、陈璐、董非、孟蔚、赵克义、温宪芹、徐燕、孙启华、廖如燕、田忠梅、刘晓康、周建芳、邹以华、杨静、谢卡罗、王晓云。 WS/T 651 2019 2 医用低温蒸汽甲醛灭菌指示物 评价要求 1 范围 本标准规定了医用低温蒸汽甲醛灭菌指示物的分类、通用要求、化学指示物要求 及 生物指示物要求。 本标准适用于通过化学、生物指标的变化反映医用

3、低温蒸汽甲醛灭菌过程的指示物。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。 GB 18281.1医疗保健产品灭菌 生物指示物 第 1部分：通则 消毒产品标签说明书管理规范（ 2005年） 卫生部 （卫监督发 2005 426号） 3 术语 和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 低温蒸汽甲醛灭菌 low temperature steam and formaldehyde sterilization 在温度低于 85 时 ，强制排出空气后，负压状态下注入

4、蒸汽甲醛，待灭菌物品暴露于蒸汽甲醛，在稳定的状态下维持一定时间 ，达到灭菌要求 。 3.2 化学指示物 chemical indicator 指示剂及其载体按预定形式的组合， 暴露于 低温蒸汽甲醛灭菌程序中 一个或多个预定 过程变量 而产生 化学或 物理变化 。 3.3 生物指示物 biological indicator 对设定条件下的 低温蒸汽甲醛灭菌过 程 有确定抗力的染菌载体 。 3.4 D 值 D value 在设定暴露条件下，杀灭特定微生物总数的 90%所需的时间。 3.5 WS/T 651 2019 3 存活时间 survial time;ST 在设定暴露条件下，试验的特定微生物

5、存活的最长时间。 3.6 杀灭时间 killing time;KT 在设定暴露条件下，杀灭试验的特定微生物所需最短时间。 4 指示物分类 4.1 化学指示物 4.1.1 灭菌过程指示物 指示每个独立单元的灭菌物品是否经过灭菌程序，包括卡、胶带、标签等。 4.1.2 灭菌效果指示物 用于证明独立单元物品经过整个灭菌程序后，是否达到所选参数的设定值。 4.2 生物指示物 4.2.1 按结构可分为片状生物指示 物 和自含式生物指示 物 ， 片状生物指示 物 需要使用 阳性对照 和 阴性对照 ，而自含式生物指示 物 只需要阳性对照即可 。 4.2.2 按培养时间可分为 常规 型生物指示 物 和快速型生

6、物指示 物 。 5 指示物通用要求 5.1 医用低温蒸汽甲醛灭菌过程评价参数应包括作用时间、温度、甲醛浓度。 5.2 包装标签和说明书应符合 消毒产品标签说明书管理规范 的要求。 5.3 指示物应标明其用途。 5.4 指示物应根据使用用途与不同的过程挑战装置相组合，模拟灭菌因子最难达到的部位。 5.5 指示物应标明储存条件和效期。 5.6 经符合各项预设参数的灭菌周 期后， 指示物变化应与生产商规定的合格要求一致 ；若预设的最低限度参数不符合或预设的参数不合理，则 指示物变化应与生产商规定的合格要求不一致 。 5.7 用于日常监测的生物指示物应与化学指示物同时使用，二者均合格，才能视为达到灭菌

7、效果。 5.8 指示物包装材料和载体应避免选择对甲醛有吸附作用的材质，且应不影响指示物的使用，确保其无害。 5.9 取包装完好的指示物放置于生产商标明储存条件下，存放至规定的效期，取出再次进行评价，指示物应满足本标准规定的技术要求。 6 化学指示物要求 6.1 灭菌过程化学指示物 WS/T 651 2019 4 灭菌过程化学指示物应按表 1设定的条件进行测试 并符合要求。测定方法见附录 A。 表 1 灭菌过程指示物的测试和性能要求 试验序号 测试条件 性能要求 测试时间 测试温度 甲醛浓度 A1 90 min1 min 80 2 0 mol/L 无变化或不同于生产商规定的变化 A2 20 s5

8、 s 60 0.5 1.0mol/L 0.01 mol/L 无变化或不同于生产商规定的变化 A3 15 min15 s 70 2 1.0 mol/L 0.01 mol/L 应与生产商规定的变化相同 注 1： 若过程化学指示物仅标明在低于 55或高于 65 的温度下灭菌周期使用，则表 1 中的测试应在生产商规定的最高温度和甲醛浓度下进行。 注 2： 为了证明对特殊过程的适用性，应增加生产商规定的低温蒸汽甲醛灭菌程序进行附加的功能测试。 6.2 灭菌效果化学指示物 灭菌效果化学指示物 应按表 2设定的条件进行测试并符合要求 。 测定方法见附录 A。 表 2 灭菌效果指示物的测试条件和性能要求 试验

9、序号 测试条件 性能要求 测试时间（ min） 测试温度( ) 甲醛浓度(mol/L) B1 t T 0 无变化或不同于生产商规定的变化 B2 75% t T-3 80% C 无变化或不同于生产商规定 的变化 B3 t T C 应与生产商规定的变化相同 注： t为生产企业规定的测试时间； T为生产企业规定的测试温度； C为生产企业规定的甲醛作用浓度 7 生物指示物要求 7.1 指示菌 7.1.1 指示菌株应为嗜热脂肪 地 芽胞杆菌或者是相当性能的其他菌株。推荐嗜热脂肪 地 芽胞杆菌有NCIB 8224、 DSM 6790、 ATCC 7953、 ATCC 10149和 ATCC 12980用于

10、试验，制备成芽胞。如果使用其他的菌株，应首先测定其抗力。 7.1.2 由生产企业提供的最终产品应无杂菌。 7.2 指示菌数量和抗力 7.2.1 生产企业应标明指示菌的数量和抗力特性。 7.2.2 指示菌活菌数应 1.0 105CFU/载体。对于成品的指示物，载体回收的菌量与说明书上的菌量误差在 50% 300%之间。测定方法见附录 B。 7.2.3 在 60条件下，以时间（ min）为单位的 D值表示指示菌的抗力，精确到小数点后一位。每批次 /批号的生物指示物或染菌载体都应标注相应的 D值。 WS/T 651 2019 5 7.2.4 生物指示物中 指示微生物 的 D值应 6.0 min；其它

11、 指示微生物 应当具有符合使用条件的 D值。测定方法见附录 C。 7.2.5 D值的验证， 按附录 C测定方法。 ST 值 验证 D值， 样本应全部有菌生长； KT 值验证 D 值， 样本应全部无菌生长。 ST 值 和 KT 值分别按式（ 1）和式（ 2） 计算。 值D2lgST ON (1) 值D4lgKT ON (2) 式中： ST 存活时间，单位为分钟（ min）； KT 杀灭时间，单位为分钟（ min）； N0 每批生物指示物的回收菌量的平均数 ,单位为 CFU/载体。 7.3 载体和内层包装 7.3.1 测试应满足下列条件： a) 暴露温度：同生产商规定载体和内层包装的最高暴露温度；

12、如果生产商没 有规定，暴露温度至少为 100。 b) 暴露时间：至少为 160 min。 7.3.2 在灭菌处理中及灭菌后，生物指示物系统的任何材料，不应残留或释放出任何抑制试验菌生长的物质。测定方法按照 GB 18281.1进行 。 7.3.3 在灭菌处理过程中，载体和内层包装不应受到损坏。 WS/T 651 2019 6 A A 附 录 A （规范性附录） 化学指示物检测方法 A.1 检测仪检测法 A.1.1 检测仪应能设置、监测与确认温度、时间、甲醛浓度等参数。 A.1.2 灭菌过程化学指示物置于检测仪内，按表 1要求的测试条件进行测试 ； 灭菌效果化学指示物置于检测仪内，按表 2要求的

13、测试条件进行测试。 A.1.3 同批次化学 指示物每次试验测试不少于 10个，试验不少于 3次。 A.2 甲醛溶液检测法（ 仅适用于不具有吸水性能的材质制备的化学指示物检测 ） A.2.1 灭菌过程指示物 根据 6.1的要求配制甲醛水溶液， 灭菌效果指示物 根据 6.2的要求配制甲醛水溶液 。 A.2.2 预热甲醛溶液到 6.1或 6.2规定的测试温度。 A.2.3 将化学指示物置于固定的样品架上，样品架不应影响化学指示物的性能。 A.2.4 将样品架置于预热的甲醛溶液中，确保化学指示物浸泡在甲醛溶液里，按 6.1或 6.2规定时间测试。 A.2.5 从甲醛溶液中取出样品架，去除多余的甲醛，

14、1.5 min内指示物呈现的颜色维持在一定水平不再变化 ，检测指示物的性能，记录结果。 A.2.6 同批次化学指示物每次试验测试不少于 10个，试验不少于 3次。 WS/T 651 2019 7 B B 附 录 B （规范性附录） 生物指示物活菌数测定 B.1 每批次生物指示物至少检测 4个染菌载体。 B.2 取含有 10mLTPS(0.1%胰蛋白胨的生理盐水溶液 )的无菌试管，加入适量无菌玻璃珠，将生物指示物染菌载体投入试管，用电动混合器充分混合，制成菌悬液。 B.3 选择适宜稀释度 菌悬液 ，吸取其中混合均匀的悬液 1.0mL 加于无菌平皿内。每一稀释度接种 2个平皿。一般需接种 2个 3

15、个稀释度。 B.4 将 40 45 熔化的嗜热脂肪杆菌 芽胞 恢复培养基或相应的培养基倾注于已加入菌悬液的平皿中，每平皿 15mL 20mL。 B.5 待琼脂凝固后，翻转平板使底向上，置 56 2恒温培养箱内培养。 B.6 培养至 72h，计数菌落数。一般以肉眼观察，必要时用放大镜检查。报告菌落数在 15CFU 300CFU 的稀释度的结果。 B.7 根据稀释倍数和接种量计算每个染菌载体或每支生物指示物的平均菌落数。 WS/T 651 2019 8 C C 附 录 C （规范性附录） 微生物抗力测定方法 C.1 接种载体暴露条件 C.1.1 水溶液中甲醛浓度 1mol/L 0.01mol/L。

16、 C.1.2 暴露温度 60 0.5。 C.1.3 暴露时间能维持在 1min 150min，精确度在 10s。 C.2 方法 C.2.1 取 10mL甲醛溶液置于试管中，预先加热至暴露温度，将生物指示物载 体完全浸入其中。 C.2.2 确保载体完全浸泡在甲醛溶液中，并尽量减少试管振动。 C.2.3 严格执行无菌操作。 C.2.4 暴露时间结束后，从甲醛溶液中取出载体。 C.2.5 去除载体表面多余的液体后，将其置于含 2的亚硫酸钠溶液中和剂中至少 10min，用以中和残留的甲醛溶液。密封试管，并尽量减少振动，以防止载体上的受试微生物脱落。 注： 2的亚硫酸钠溶液可用过滤除菌的方式进行处理。也

17、可使用 其它验证有效的中和剂。 C.2.6 选择适合的培养基复苏受试微生物。建议选择大豆酪蛋白消化培养基。 C.2.7 将载体移至含 10mL培养基的试管中，密封试管。 C.2.8 将试管置于 90， 60min。 C.2.9 活菌数测定，参见附录 B。 C.3 用微生物存活曲线法测定 D 值 C.3.1 试样暴露于 C.1 规定的暴露条件下。 C.3.2 至少有 5 次暴露，包括 a) 有 1 次暴露中试样未经 甲醛溶液浸泡 ； b) 有 1 次暴露使活菌总数至少减少到初始接种量的 0.01%，且存活菌量大于 50CFU； c) 在 a)和 b)两次暴露间隔中至少有 3 次暴露。 C.3.3

18、 每 2 次相邻暴露的时间间隔应相等。 C.3.4 每次测定中 每次暴露所用的染菌载体应不少于 4个，每次暴露必须采用数目相同的同样的试样。 C.3.5 每次暴露后，按 C.2.4C.2.9 对试样进行处理。 C.3.6 用所得的全部存活菌数的常用对数值，对时间 (min) 作图，用最小二乘法进行回归分析，确定最佳线性曲线。回归分析时不应包括原先接种细菌数 0.51og 范围内的存活数据点。计算所得直线斜率的负倒数值，即等于以分钟表示的 D值，数据举例见表 C.1。 C.3.6.1 最佳线性曲线斜率按式（ C.1）计算： )()( )()( 2AnC ABnGm (C.1) WS/T 651

19、2019 9 式中： m 最佳线性曲线斜率； n 数据点之和； G 存活菌数的对数值与暴露间隔时间的乘积之和； A 暴露间隔时间之和； B 存活菌数的对数值之和； C 暴露间隔时间平方之和。 表 C.1 用微生物存活曲线法测定 D 值 数据举例 存活菌数 a y 暴露间隔 （ min） =t log10y t2 t(log10y) (log10y)2 y1 t1=0.0 log10y1 (t12)=0 t1(log10y1)=0 (log10y1)2 y2 t2 log10y2 (t22) t2(log10y2) (log10y2)2 y3 t3 log10y3 (t32) t3(log10y

20、3) (log10y3)2 y4 t4 log10y4 (t42) t4(log10y4) (log10y4)2 y5 t5 log10y5 (t52) t5(log10y5) (log10y5)2 51ii itA 51 10logii iyB 51 2)(ii itC 51 10 )(logii ii ytG 51 210 )(logii iyE 定义变量 A B C G E 注： 回归分析时不应包括 0.5 log10y1范围内的存活数据点 C.3.6.2 D值按式（ C.2）计算： mD 11-值(C.2) C.3.7 所得存活菌曲线的线性相关系数应不小于 0.8。线性相关系数按式（

21、C.3）计算 : nBEnAC nBAGr / / 2222 (C.3) 式中： E 存活菌数的对数值平方之和。 C.4 用 部分阴性分析法 计算 D值 C.4.1 试样暴露于 C.1规定的暴露条件下。 C.4.2 至少有 5种 暴露，包括 : a) 所有测试样本在 1种暴露条件下均生长； b) 部分测试样本在 2种暴露条件下生长； c) 所有测试样本经 2种暴露条件相继暴露后均不生长 。 C.4.3 每 2次相邻暴露的时间间隔应相等。 WS/T 651 2019 10 C.4.4 每次测定中每次暴露所用的染菌载体应不少于 20个， 每次暴露应采用相 同数目同样的试样。 C.4.5 每次暴露后

22、，试样接种含中和剂的增菌液，按生产厂商规定的温度和时间进行培养后观察结果，数据 示 例见表 C.2。 C.4.6 D值的计算 C.4.6.1 有限 Holcomb-Spearman-Karber法 （ LHSKP） ,灭菌的平均时间 按式（ C.4）计算 : 112ki iKH S K rnddUU . (C.4) 式中： UHSK 达到无菌生长 平均时间； Uk 样本不生长的首次暴露 时间 ； d 暴露的时间间隔，各间隔完全相同； n 每次暴露的测试样本量，要求每次暴露的样本量相同，如均为 20个 ； N0 通过总活菌计数法（见附录 B）获得的每个指示剂活菌计数的平均值 ； 11ki ir

23、U2到 Uk1之间包含的阴性样本数的和 。 C.4.6.2 D值平均数 按式（ C.5）计算 : 2507.0lo g 010 NUD H S K(C.5) C.4.6.3 方 差 按式（ C.6）计算： 1122 )()1( ki ii rnrnndV (C.6) C.4.6.4 标准差 按式（ C.7）计算： VSD (C.7) C.4.6.5 D 值 95%的可信区间（ p=0.05） Dcalc按式（ C.8）计算： SDDDcalc 2 (C.8) C.4.6.6 D值 可信区间上限 按式（ C.9）计算： Dcalc上限2507.0log 2010 N SDU HSK. (C.9)

24、 C.4.6.7 D值 可信区间下限 按式（ C.10）计算： Dcalc下限2507.0log 2_010 N SDU HSK(C.10) WS/T 651 2019 11 表 C.2 LHSKP 测定 D 值 数据 示 例 暴露于消毒剂的时间 t 暴露的测试样本量 n 测试样本中未生长的数量 ri t1（ U1） n1 r1（ r=0） a t2 n2 r2 t3 n3 r3 t4 n4 r4 t5（ Uk-1） n5 r5 t6（ Uk） n6 r6（ r= n） t7 n7 r7（ r= n） a 注： 如果经过 U1暴露 （ 如没有阴性样本 ， r=0），且经过相继暴露的 UK所有重复试验均为阴性（ r= n）（ 如都不生 长 ） ，则测试为有效。 C.5 D 值 的验证 C.5.1 ST 值验证 D 值 将 50个试验样本放入 C.1 规定的暴露条件下，暴露时间设定为计算出的 ST值，暴露完成后，将样本取出接种含中和剂的增菌液，按生产商规定的温度和时间进行培养后观察结果。 C.5.2 KT 值验证 D 值 将 50个试验样本放入 C.1规定的暴露条件下，暴露时间设定为计算出的 KT值，暴露完成后，将样本取出接种含中和剂的增菌液，按生产商规定的温度和时间进行培养后观察结果。 _