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    DB15 T 2188-2021 农杆菌介导油菜黑胫病菌(Leptosphaeria biglobosa)遗传转化技术规程.pdf

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    DB15 T 2188-2021 农杆菌介导油菜黑胫病菌(Leptosphaeria biglobosa)遗传转化技术规程.pdf

    1、 ICS 65.020.20 CCS B16 15 内蒙古自治区地方标准 DB15/T 21882021 农杆菌介导油菜黑胫病菌(Leptosphaeria biglobosa)遗传转化技术规程 Technical code of practice for Agrobacterium tumefaciens-Mediated Transformation in Leptosphaeria biglobosa 2021-05-25发布 2021-06-25实施 内蒙古自治区市场监督管理局 发布 DB15/T 21882021 I 前言 本文件按照GB/T 1.12020标准化工作导则 第1部分:

    2、标准化文件的结构和起草规则的规定 起草。 本文件由内蒙古自治区农牧厅提出。 本文件由内蒙古自治区农业标准化技术委员会(SAM/TC 20)归口。 本文件起草单位:内蒙古自治区农牧业科学院、内蒙古自治区农牧业信息中心。 本文件主要起草人:宋培玲、李子钦、史志丹、贾晓清、皇甫海燕、燕孟娇、杨永青、郝丽芬、郭 晨、皇甫九茹、罗军。 DB15/T 21882021 1 农杆菌介导油菜黑胫病菌(Leptosphaeria biglobosa)遗传转化技 术规程 1 范围 本文件规定了农杆菌介导油菜黑胫病菌(L. biglobosa)的遗传转化技术参数。 本文件适用于油菜黑胫病菌(L. biglobosa

    3、)的遗传转化。 2 规范性引用文件 本文件没有规范性引用文件。 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 油菜黑胫病 phoma stem canker 由小球腔菌属弱致病性病原菌(Leptosphaeria biglobosa)引起的系统性侵染病害,主要危害油 菜茎上部,染病茎秆,病斑早期呈灰色,有黑色边界,茎秆干枯时病斑呈灰白色,有时肉眼可见小黑点, 即无性生殖世代( Phoma lingam) 子实体分生孢子器。 3.2 农杆菌介导遗传转化 agrobacterium tumefaciens-mediated transformation 农杆菌介导遗传转化(ATMT)是一种

    4、依据农杆菌能够侵染植物的特点将外源基因导入植物基因组中 使目的基因表达的方法。 4 仪器和用具 4.1 仪器 电子天平、超净工作台、生物显微镜、荧光显微镜、离心机、摇床、纯水仪、生化培养箱、冰箱、 高压灭菌锅、液氮罐、凝胶成像系统、PCR仪。 4.2 用具 烧杯、三角瓶、量筒、酒精灯、镊子、血球计数板、接种针、载玻片、盖玻片、移液器、吸头、 离心管、培养皿、纱布、漏斗。 5 试剂和培养基 DB15/T 21882021 2 5.1 试剂 乙酰丁香酮(AS)、2-吗啉乙磺酸(MES)、潮霉素(Hyg)、卡那霉素(Kan)、利福平(Rif)、 头孢噻肟钠(Cef)、葡萄糖、酵母粉、胰蛋白胨、琼脂粉

    5、、NaCl、K2HPO4 、KH2PO4 、MgSO4 7H2O、 (NH4)2SO4、CaCl2H2O、FeSO47H2O、DNA提取试剂盒、琼脂糖、Taq酶、PCR引物、DL2000 DNA Marker。 5.2 培养基类型 马铃薯培养基(PDA)、牛肉膏蛋白胨培养基(LB)、共培养培养基(CM)、诱导培养基(IM)、 筛选培养基(SM)。 6 遗传转化方法 6.1 用于筛选阳性转化子的潮霉素浓度 用孔径为5 mm的打孔器打取黑胫病菌菌饼,接种于含有潮霉素质量浓度梯度为 0g/mL、25g/mL、 50g/mL、100g/mL、150g/mL、200g/mL 的PDA平板上,于25 下培

    6、养7 d12 d,筛选阳性转 化子的潮霉素浓度。 采用菌饼接种法筛选出能够完全抑制黑胫病菌生长的潮霉素浓度为50g/mL。 6.2 农杆菌菌液制备 将含目标质粒的农杆菌(如pCHs-GFP)菌株在含(25 mg/mL)的卡那霉素和利福平的LB培养基上活 化,3 d 后挑取单菌落接种于含有上述 2 种抗生素的LB液体培养基中,28 、200 rpm震荡培养。待 农杆菌菌液浓度 OD600值为0.6时,转入IM液体培养基中用于遗传转化。 6.3 分生孢子悬浮液制备 PDA平板活化黑胫病菌,待产孢后,在平板上加2 ml3 mL无菌水,静置10 min,无菌载玻片轻刮 平板表面,2层灭菌纱布(经纬:2

    7、121/3028)过滤,血球计数板计算滤液中分生孢子数,无菌水调 制悬浮液(106个/mL),用于遗传转化。 6.4 黑胫病菌遗传转化 将上述准备好的孢子悬浮液与农杆菌菌液1:1等体积充分混合,取200 L混合液均匀涂布在铺有 玻璃滤纸(0.6 m0.8 m)的IM固体平板(含200 mol/mL AS)上, 25 共培养,4 d后将玻璃 滤纸揭下,反铺到含有头孢噻肟(100 mg/mL)和潮霉素(50g/mL)的SM培养基上,25 培养10 d, 获得阳性转化子。 7 阳性转化子的鉴定 7.1 阳性转化子的稳定性鉴定 随机挑选数个阳性转化子,转接到PDA平板上,连续继代五代后,再重新转接到潮

    8、霉素浓度为50 g/mL的PDA平板上,确定阳性转化子的遗传稳定性。 7.2 阳性转化子的PCR鉴定 DB15/T 21882021 3 将上述稳定转化的阳性转化子和野生型菌株接种于PDA培养基上,25 下培养14 d,收集菌丝,用 真菌DNA提取试剂盒提取DNA。以野生型菌株DNA为阴性对照,质粒为阳性对照,采用潮霉素抗性基因特 异性引物(hyg)进行PCR扩增,1 %琼脂糖凝胶电泳检测。 hyg 抗性基因引物序列“5 - GATGTAGGAGGGCGTGGATA -3,5- CTCTGATAGAGTTGGTCAAG -3” hyg 抗性基因引物反应条件:94 预变性5min;94 变性40 s,56 退火40 s,72 延伸40 s, 35 个循环;72延伸10min。 PCR 反应体系(25L):基因组DNA 10ng,hyg 抗性基因上下游引物(0.2M)各 0.5L,2EasyTaq PCR SuperMix for PAGE 12.5 L,ddH2O 10.5 L。 凝胶电泳检测扩增出与特异hyg基因(712 bp)大小一致的片段,确定为阳性转化子。 7.3 阳性转化子的绿色荧光鉴定 转化质粒如带有gfp标记,可用绿色荧光进行鉴定。挑取稳定遗传且PCR反应呈阳性的转化子菌丝, 使用荧光显微镜在激发波(480 nm)下观察,呈绿色。


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