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    DB37 T 3105-2018 向日葵种子纯度蛋白电泳检测标准.pdf

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    DB37 T 3105-2018 向日葵种子纯度蛋白电泳检测标准.pdf

    1、ICS 67.060 B21 DB37 山东省地方标准 DB 37/T 31052018 向日葵种子纯度蛋白电泳检测标准 The variety purity identification technique of sunflower seeds with PAGE 2018 - 02 - 02发布 2018 - 03 - 02实施 山东省质量技术监督局 发布 DB37/T 31052018 前 言 本标准按照 GB/T 1.1-2009 给出的规则起草。 本标准由山东省农业厅提出。 本标准由山东省农业标准化技术委员会归口。 本标准主要起草单位:山东农业大学、北京德农种业有限公司。 本标准起草

    2、人:张春庆、赵洪春、郑建鹏、温大兴、李岩。 本标准为首次发布。 I DB37/T 31052018 向日葵种子纯度蛋白电泳检测标准 1 范围 本规程规定了蛋白质电泳的试剂配比、蛋白质提取、凝胶制备、电泳、染色、判别分析等技术要求。 本规程适用于向日葵品种及杂交种种子的纯度室内的快速鉴定。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB 3543 种子检验技术规程 GB 20464 农作物种子标签通则 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 杂

    3、交种 各种直接用于生产的杂交向日葵一代种子。 3.2 品种纯度 品种在特征特性方面典型一致的程度,用本品种的种子数占供检本作物样品种子数的百分率表示。 3.3 标准样品 能够充分代表种或品种特征特性的种子样品,或具备指定特征、特性样品。 4 原理 4.1 不同品种遗传组成不同,在种子形成时期合成的蛋白质不同。 4.1.1 不同的蛋白质由于分子大小、形状不同,在一定的 pH 条件下所带的电荷多少不同,因此在电场 作用下,在凝胶中移动的快慢不同,通过电泳可以把不同的蛋白质区分开,近而区分不同的亲本和杂交 种。 4.1.2 利用该电泳技术,杂交种具有不育系和恢复系的双亲谱带,双亲有差异蛋白谱带是杂交

    4、种纯度 检测的关键位置。 1 DB37/T 31052018 4.2 蛋白谱带 的命名方法:以点样孔为零点,在凝胶中部每个样品都含有的条带为 50( 图 1),在 0 50 之间细分为 50 等份 作为标尺 , 50 以下的部分按该 标尺 进行 区分,读取泳道内所有蛋白指纹所处位置 的数值 ,记为蛋白质谱带名称。 图1 蛋白质谱带命名示意图 5 仪器与试剂 5.1 仪器 单粒种子磨粉器,天平(感量0.0001 g, 0.001 g),移液管 (10 mL),离心管( 1.5 mL),离心管 架,容量瓶(100 mL 、500 mL、1000 mL),微量进样器( 1L 100 L ),离心机,

    5、双垂直板电泳槽, 电泳仪,恒温箱,电冰箱,观片灯。 5.2 试剂 丙烯酰胺,甲叉双丙烯酰胺,冰醋酸,过硫酸铵,尿素,四甲基乙二胺(TEMED),三氯乙酸,考马 斯亮蓝 R-250, 十二烷基磺酸钠 (SDS),无水乙醇 (所用试剂均为分析纯,所用水均为去离子水 )。 6 溶液 6.1 2% SDS 称取2 g SDS倒入 100 mL烧杯中,加入去离子水溶解,加去离子水定容至 100 mL,转入试剂瓶, 4 贮存备用。 6.2 蛋白提取液 2 DB37/T 31052018 称取18 g 尿素,加约50 mL 去离子水溶解后加12 mL 冰乙酸, 3 mL 四甲基乙二胺, 7.5 mL 2%

    6、SDS, 加去离子水定容至100 mL,转入试剂瓶并加入 0.05 g甲基绿,4 贮存备用。 6.3 凝胶溶液 称取50 g 丙烯酰胺、50 g 尿素、 1.0 g甲叉双丙烯酰胺,加去离子水溶解后加入 15mL冰乙酸, 0.10 g 硫酸亚铁,加去离子水定容至500 mL ,4 贮存备用。 6.4 催化剂溶液 称取1.75 g 过硫酸铵,加去离子水溶解并定容至50 mL,4 短期 贮存。 6.5 电极缓冲液 量取20 mL 冰乙酸加水定容至 1000 mL。 6.6 染色液 称取0.4 g考马斯亮蓝 R-250,用25 mL无水乙醇溶解,倒入染色盘,加50 g 60 g三氯乙酸,加去 离子水

    7、500 mL,搅匀。 7 操作程序 7.1 蛋白质提取 7.1.1 从送验样品中随机数取向日葵种子 200 粒,将 种子去壳后用单粒 种子 磨 粉器 压碎,放入 1.5 mL 离心管中, 按向日葵种子与提取液质量体积比 1:6 加蛋白提取液、摇匀,25 提取 20 min, 用离心 机 4000 g 离心 4 min,取上清液备用。 7.1.2 与标签值比较时,为了减少工作量,可以顺序测定 50 粒/ 次,将测定结果与标签值比较是否在 允许误差范围内。 7.2 凝胶制备 将洗净晾干的玻璃板采用水平平板灌胶的方式组装玻璃板,用铁夹固定,取 40 mL凝胶溶液于烧杯 中 ,加 65 L80 L 催

    8、化 剂溶液,迅速搅匀沿玻璃棒向玻璃板中倒满凝胶溶液,迅速插入样品梳, 2 min 3 min聚合后将样品梳拔出,吸出样品槽中的水分,将玻璃板固定在电泳槽内。 7.3 点样 用微量移液器取离心后的样品上清液 30 L加入样品槽,每加一个样品后,用去离子水清洗移液器 两次。 7.4 电泳 加样完毕后,加入2 % 电极缓冲液,上槽电极缓冲液要没过矮玻璃板,下槽电极缓冲液要没过玻璃 板,将电源线正极接上槽,负极接下槽。接通电源,85 mA稳流电泳 2 h。 7.5 卸板、染色 倒出电极液,卸开电泳槽并用油灰刀取出胶片,置染色液中染色12 h 左右。 7.6 电泳分析 3 DB37/T 31052018

    9、 7.6.1 取出凝胶洗净,在观片灯上观察蛋白质谱带,鉴定各泳道谱带的特征和一致性。 7.6.2 检测时以标准样品为参考,以亲本与杂交种的互补带为依据,分析杂粒和自交粒。 7.6.3 谱带与标准样品不一致的记为非本品种籽粒,非本品种籽粒谱带中仅在互补谱带位置缺少某一 亲本的为自交粒。 8 结果计算 待整个供检样品电泳结束后,鉴定凝胶胶片上电泳谱带的一致性,计数供检样品粒数(N )和非本 品种粒数( M),并按式计算电泳测定值 X %(保留一位小数)。 X(%) =(N - M )/N 100 9 结果报告 参照GB/T 3543 ,写明对照样品名称,检测粒数,纯度%。对送样样品的检验需注明:“结果仅对样 品负责”。监督检验时,需注明:“结果对种子批负责”。 _ 4


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