1、ICS 65.020.01 B 16 DB37 山东省 地 方 标 准 DB37/T 3987 2020 兰花细菌性褐腐病菌检疫鉴定方法 Detection and identification of Erwinia cypripedii 2020 - 06 - 08 发布 2020 - 07 - 08 实施 山东省市场监督管理局 发布 DB37/T 39872020 I 前 言 本标准按照 GB/T 1.1 2009给出的规则起草。 本标准由青岛海关提出、归口并组织实施。 本标准起草单位：青岛海关技术中心、厦门海关技术中心、烟台海关技术中心。 本标准主要起草人：厉艳、廖富荣、静平、房保海、邵
2、秀玲、封立平、李金庆。 DB37/T 39872020 1 兰花细菌性褐腐病菌检疫鉴定方法 1 范围 本标准规定了兰花细菌性褐腐病菌的分离培养、生理生化特征及分子生物学等检测鉴 定方法。 本标准适用于兰花植株中兰花细菌性褐腐病菌的检测鉴定及该病害的田间调查与监测。 2 兰花细菌性褐腐病菌基本信息 中文名：兰花细菌性褐腐病菌，杓兰欧文氏菌 学名： Erwinia cypripedii（ hori） Bergey et al.1923 异名： Pectobacterium cypripedii（ hori） Brenner et al.1973 Pantoea cypripedii 英文名： Ba
3、cterial soft rot of orchid 分类地位：细菌域 Bacteria，变形菌门 Proteobacteria， -变形菌纲 Gammaproteobacteria，肠杆 菌目 Enterobacteriales，肠杆菌科 Enterobacteriaceae，欧文氏菌属 Erwinia。 传播途径：远距离传播主要靠带菌种苗，近距离传播主要借助叶面浇水、喷雾或施肥而将病原菌散 播至健康植株上，通过叶片伤口及自然孔口侵染，造成二次感染。 3 原理 根据兰花细菌性褐腐病菌的特异性 DNA序列进行分子生物学检测；根据兰花细菌性褐腐病菌的培养 性状、生物学特性、寄主范围及危害症状等对
4、病原菌进行分离培养及致病性测定。 4 仪器设备和 主要试剂 4.1 仪器设备及用具 PCR仪、电泳仪、凝胶成像系统、 Biolog仪、显微镜、高速冷冻离心机、恒温培养箱、超净工作台、 高压灭菌器、水浴锅、台式小型离心机、超低温冰箱、常规冰箱、旋涡振荡器、微量可调加样器、剪刀、 解剖刀、玻璃棒、接种环、镊子、培养皿、酒精灯、三角烧瓶、量筒、离心管、滤纸等。 4.2 主要试剂 除非另有说明，在分析中仅使用分析纯试剂和去离子水。 PCR反应体系用双蒸水。商品化试剂参见 其使用说明。 NA培养基配制方法 : 蛋白胨 10 g，牛肉浸膏 3 g，氯化钠 5 g，琼脂 17 g，调节 pH 至 7.2，用
5、蒸 馏水 补充至 1 000 mL， 121 高压灭菌 15 min。 5 田间观察检测 DB37/T 39872020 2 参照附录 A中的症状描述观察植株是否有兰花细菌性褐腐病的典型症状，对出现典型症状或可疑症 状的植株进行拍照记录，并采集表现症状植株送实验室进行检测鉴定，田间无症状植株可随机采样。 6 实验室检测 6.1 样品制备 选择有褐腐症状的植株，用脱脂棉蘸取 75 %乙醇擦拭病部表面进行表面消毒，用灭菌剪刀剪取新鲜 病叶上的病健交界部位（无症状样品，随机选取叶片）组织置于培养皿内，用 75 %的乙醇（或 1 %的次 氯酸钠）表面消毒 50 s 60 s，无菌水清洗 3次， 然后将
6、其移至灭菌培养皿中，加适量无菌水，用灭菌 玻棒或剪刀捣碎组织，静置 15 min 20 min后，即制成组织悬浮液，用于分离培养及分子生物学检测。 6.2 分子生物检测 6.2.1 模板制备 按照 6.1的方法制备成样品悬浮液后，直接用商业化植物基因组 DNA提取试剂盒按照操作说明提取样 品总 DNA， -20 保存备用。 对于分离培养得到的疑似菌株，可直接或经裂解处理后（ 97 沸水浴 10 min； 12 000 g 离心 10 min， 取上清液， -20 保存）作为分子生物学检测反应模板。 6.2.2 常规 PCR 检测 对于叶片等植株样品，以已知 带菌的兰花植株组织作阳性对照（若无已
7、知带菌材料，可用模拟带菌 方式代替），以健康的兰花植株组织作阴性对照，以双蒸水代替模板作为空白对照，对待测样品进行 PCR 凝胶电泳检测。对于纯培养菌株，以 E.cypripedii标准菌株作阳性对照，用非 E.cypripedii的植物细菌 作阴性对照，以双蒸水代替模板作为空白对照，对待测样品进行 PCR凝胶电泳检测，具体检测步骤见附 录 B。 6.3 分离培养鉴定 按照 6.1的方法制备成组织悬浮液后，用灭菌接种环蘸取悬浮液在 NA培养基上划线分离， 28 恒温 培养 24 h后开始观察，挑取可疑单菌 落进行纯 化，转接 2次 3次，随后进行致病性测定、 BIOLOG鉴定、 分子生物学鉴定
8、。 6.4 BIOLOG 鉴定 利用 BIOLOG自动微生物鉴定系统对分离纯化的菌株进行鉴定，按照说明书进行操作及结果判定。 6.5 致病性测定 如果有争议或者有必要需按以下步骤对分离纯化的菌株进行致病性测定。将待测菌株在 NA培养基上 培养 24 h左右，用无菌水配成 108 CFU/mL 左右的细菌 悬浮液，用针刺法接种至健康兰花苗叶片上 28 保湿培养，接种 48 h后开始，每隔 24 h观察，是否出现附录 A中所描述的症状。 7 结果判定 DB37/T 39872020 3 对于有典型症状植株样 品，分子生物学检测结果为阳性，即判定为检出兰花细菌性褐腐病菌。无症 状植株样品，分子生物学
9、检测结果阳性，且分离培养鉴定或 Biolog鉴定为阳性，可判定检出兰花细菌性 褐腐病菌。 8 样品及检测结果保存 8.1 样品及菌种保存 样品经登记和经手人签字后妥善保存。对检出兰花细菌性褐腐病菌的样品应保存于 4 冰箱中，以 备复核。该类样品保存期满后应经高压灭菌后方可处理。从检测样品中分离并鉴定为兰花细菌性褐腐病 菌的菌株，应妥善保存。可采用甘油冷冻保存或冻干保存。对不需要长期保存的菌株应及时灭菌处理。 8.2 结果记录与资料保存 完整的实验记 录应包括：样品来源、种类、时间，检测时间、地点、方法和结果等，并要有实验人 员和审核人员的签字。现场检疫发现的可疑症状、培养基上的菌落特征和人工接
10、种的典型症状等应及时 拍照保存， PCR凝胶电泳检测需有电泳结果照片。 DB37/T 39872020 4 A A 附 录 A （资料性附录） 兰花细菌性褐腐病菌相关资料 A.1 症状 病菌主要侵染植株或叶片，病菌若在叶片中部为害则形成卵圆形水淹状黄色斑点，后转褐色；若从 叶生长点侵入则地上部干缩枯死。感染初期在叶上出现软的、水渍状的小斑点，继而发展成轮廓清晰的、 褐色或黑色的凹陷斑点，淡褐色油浸状，并扩展到茎和生长点（见图 1）。在蝶兰中，此斑点为水疱状， 扩展并联合成片，外围具黄色或浅绿色的晕圈；在兜兰中，则斑点呈水渍状而柔软。此病发展迅速，会 使整个植株死亡。高温高湿条件下易发病，相对湿
11、度高于 80 %时，发病重。 图 A.1 E.cypripedii 在大花惠 兰叶片中部为害症状 图 A.2 E.cypripedii 接种蝴蝶兰幼苗 的为害症状 A.2 地理分布 南非、日本、澳大利亚、美国、中国台湾、韩国。 A.3 寄主植物 DB37/T 39872020 5 仙人指甲兰（ Aeridis japonium）、杓兰属 (Cypripedium spp.)、兜兰属 (Paphiopedilum)、蝶兰 属 (phalaenopsis)和番木瓜 (Carica papaya)、大花蕙兰（ Cymbidium）等。 A.4 病原菌形态及理化特征 病原菌菌体杆状，两端钝圆，大小为（
12、 0.5 1） m x（ 1 3） m，周生鞭毛。 为革兰氏阴性菌，兼性厌氧，最适生长温度为 27 30 ， 37 能生长，氧化酶阴性、过氧化 氢酶阳性，能利用海藻糖、麦芽糖、蜜二糖、纤维二糖、不能从乳糖、棉子糖产酸，不能液化明胶，不 产生吲哚，不产 3-羟基丁酮。病原菌在 NA培养基上单菌落表现为淡黄色、圆形、表面突起、边缘整齐， 光滑不透明。 Erwinia属内在兰 花上引起腐烂症 状的细菌共有三个近似种，分别是 E.cypripedii、 E.chrysanthemi、 E.carotovora，三个近似种的理化特征比较见表 A.1。 表 A.1 E.cypripedii、 E.chry
13、santhemi、 E.carotovora 三个种的理化特征比较 测试项目 Erwinia 属内三个近似种 E.cypripedii E.chrysanthemi E.carotovora 革兰氏染色（ 24 h） - - - 吲哚产生 - + - 半固体琼脂 - + + 苯基丙氨酸脱氨酶（ 24 h） + - - 明胶水解（ 22 ） - + + 己六醇 - - - 乳糖 - d + 麦芽糖 + - d 棉子糖 - + + 海藻糖 + - + 脂肪酶 - + - 接触酶反应（ 24 h） + + + 注： -： 0 % 10 % 阳性； d： 26 % 75 % 阳性； +： 90 % 1
14、00 % 阳性 DB37/T 39872020 6 B B 附 录 B （规范性附录） 兰花细菌性褐腐病菌 PCR 特异性扩增检测方法 B.1 检测引物 EcUP： 5- TCAACGCCAAGCCGATTTCT -3 EcNP： 5- ACGAATGAACCGTCGTCGGC -3 B.2 PCR反应体系及条件 25 L PCR反应体系： 2 PCR 预混液 12.5 L，引物 10 mol/L 各 1 L， DNA模板 2.0 L，补 充超纯水至 25 L。 PCR 反应条件： 98 /2 min； 98 ， 10 s； 59.4 ， 10 s； 72 ， 10 s， 35个循环；延伸：
15、72 /3 min； 4 保存。 注： 不同仪器可根据仪器要求将反应参数作适当调整。 B.3 琼脂糖凝胶电泳 PCR扩增产物在 1.5 %琼脂糖凝胶上进行电泳。电泳结束后在凝胶成像仪的紫外透射光下观察是否 扩 增出预期的 DNA条带，并拍摄记录。扩增产物片段大小为 420 bp。 B.4 结果判断 PCR扩增产物在 1.5 %琼脂糖凝胶上进行电泳检测。待测样品、阳性对照均出现约 420 bp条带、而阴 性对照和空白对照均未出现相应条带， PCR扩增结果判定为阳性；待测样品、阴性对照和空白对照均未 出现 420 bp条带，仅阳性对照出现 420 bp条带， PCR扩增结果判定为阴性。 DB37/
16、T 39872020 7 参 考 文 献 1 任欣正 .植物病原细菌的分类和鉴定 M.北京：中国农业出版社， 1994. 2 Magorzata Waleron, Krzysztof Waleron, Anna J. Podhajska and Ewa ojkowska. Genotyping of bacteria belonging to the former Erwinia genus by PCR-RFLP analysis of a recA gene fragment. Printed in Great BritainJ. Microbiology, 2002,148: 58359
17、5. 3 S. Al ab, T. Naglic, M. Tusek-Znidaric, M. Peterkac , M. Ravnikarac and T. Dreoac*. Putative new species of the genus Dickeya as major soft rot pathogens in Phalaenopsis orchid productionJ. Plant Pathology,2017, 66: 13571368. 4 Cating, R. A., Hoy, M. A., and Palmateer, A. J. 2012. A comparison of standard and high-fidelity PCR: Evaluating quantification and detection of pathogen DNA in the presence of orchid host tissueJ. Plant Disease, 2012, 96:480-485. _
