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    DB21 T 3054-2018 犬巴贝斯虫荧光定量PCR检测方法.pdf

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    DB21 T 3054-2018 犬巴贝斯虫荧光定量PCR检测方法.pdf

    1、ICS 11.220 B 41 DB21 辽宁省 地 方 标 准 DB21/T 3054 2018 犬巴贝斯虫荧光定量 PCR 检测方法 Detection of fluorescent quantitation PCR for Babesia canis 2018 - 10 - 30 发布 2018 - 11 - 30 实施 辽宁省 市场监督管理 局 发布 DB21/T 3054 2018 I 目 次 前 言 .II 1 范围 .1 2 规范性引用文件 .1 3 缩略语 .1 4 原理 .1 5 仪器和器材 .1 6 试剂和引物 .2 7 样品的采集和前处理 .2 8 操作步骤 .2 9 检

    2、测过程中防止交叉污染的措施 .3 10 废弃物处理 .4 DB21/T 3054 2018 II 前 言 本标准按照 GB/T 1.1 2009 给出的规则起草。 本标准由辽宁省畜牧兽医局提出并归口。 本标准起草单位:辽宁省动物疫病预防控制中心、辽宁省动物医学研究院。 本标准主要起草人:高志峰、张才、杨国丽、邓文超、张健、马建山、高原、兰德松 。 DB21/T 3054 2018 1 犬巴贝斯虫荧光定量 PCR 检测方法 1 范围 本标准规定了犬 巴贝斯虫的荧光定量 PCR检测方法的 技术要求,包含规范性引用文件、缩略语、原 理、仪器和器材、试剂和引物、样品的采集和前处理、操作步骤、检测过程中

    3、防治交叉污染的措施、废 弃物处理等。 本标准适用于 在生物安全级( BSL-2)以上的实验室进行 全血液样品中犬巴贝斯虫核酸的检测, 适用于犬巴贝斯虫病的确诊及流行病学调查。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB 19489 实验室生物安全通用要求 GB/T 19495.2 转基因产品检测 实验室技术要求 中华 人民共和国农业部公告 2003年 第 302号兽医实验室生物安全技术管理规范 中华人民共和国农业部公告 2017年第 25号 病死及病害

    4、动物无害化处理技术规范 3 缩略语 该部分对本技术规范中用到的缩略语进行了注解: DNA:脱氧核糖核酸( deoxyribonucleic acid) bp:碱基对( base pair) PCR:聚合酶链式反应( polymerase chain reaction) dNTP:脱氧核糖核苷三磷酸( Deoxy-ribonucleoside triphosphate) Taq酶: Ex Taq DNA聚合酶( Taq DNA polymerase) TAE:三羟甲基氨基甲烷 -乙酸电泳缓冲液( Tris acetate-EDTA buffer) 4 原理 巴贝斯虫病是指由巴贝斯科的原虫所引起的

    5、一种梨形虫病,主要以侵害家畜的红细胞为特征的血液 原虫病。犬巴贝斯虫病是一种经硬蜱传播的血液原虫病,临床上以严重贫血、高热、黄疸、呼吸困难为 特征。根据犬巴贝斯虫( Babesia cains, B. canis)裂殖子基因序列设计一对引物,在 DNA聚合酶催化 下,以母链 DNA为模板,以引物为延伸起点,通过变性、退火和延伸,体外复制出与母链模板 DNA互补的 子链 DNA。 5 仪器和器材 DB21/T 3054 2018 2 5.1 低温高速离心机(最大离心力 12 000 rpm) . 5.2 冰箱: 4 1冰箱, -20 1 冰箱, -70 1冰箱。 5.3 生物安全柜。 5.4 荧

    6、光 PCR 扩增仪。 5.5 分析天平。 5.6 离心管: 1.5 ml 离心管和 0.2 ml PCR 专用离心管。 5.7 微量可调移液器: 1000 l, 200 l, 100 l, 50 l, 20 l, 10 l, 2 l。 6 试剂和引物 注:本技术规范中使用的试剂,除另有说明外,所有实验使用的试剂等级均为不含 RNA或 RNase的分 析纯或生化试剂;所有试剂均用无菌的容器分装。 6.1 5 mMol/L 的 Tris/HCl(pH 7.5 8.0) 6.2 灭菌双蒸水 6.3 70%乙醇 6.4 犬巴贝斯虫阳性对照组基因 6.5 特异性引物: 正向引物: 5 - TGTTGCA

    7、GTTAAAAAGCTCGTAG TTG-3 反向引物: 5 - TCCATGCTGAAGTATTCAAGA CACA-3。 6.6 基因组 DNA 纯化试剂盒 100 次、购自 TaKaRa 公司,常温保存 6.7 荧光定量试剂盒 FastStart Universal SYBR Green Master(ROX)。产品在 -15至 -25 条件下可稳定 存放至标签上的有效期之前。若存放于 2 8 条件 ,仅可短期储存不超过 1个月。 7 样品的采集和前处理 7.1 于犬前肢臂头静脉取 300 l抗凝血, 4保存, 4h内使用全血基因组 DNA提取试剂盒提取 DNA。将 获得的 DNA放置

    8、20保存。 7.2 采样时避免接触血液,尽量使用一次性采血针及配套采血管( EDTA, 2Na-EDTA,肝素均可)采血。 7.3 采集或处理的样品在 2 8条件下保存应不超过 24 h;若需长期保存,应放置 -70冰箱,但应避 免反复冻融 (冻融不超过 3次 )。采集的样品密封后,采用保温壶或保温桶加冰密封,在 6 8 h之内运送 到实验室。 7.4 按照兽医实验室生物安全技术管理规范进行样品的生物安全标识。 8 操作步骤 8.1 全血基因组的提取 8.1.1 按处理血液样品数准备 1.5 ml离心管,并各加入 GenTLE Solution I 500 l。 8.1.2 把混合均匀的 10

    9、0 l血液,加 入到分装好的 GenTLE Solution I 的离心管中,立即振荡数秒钟。 不管处理多少样品,血液加入到 GenTLE Solution I 中,要立即进行振荡混合,否则有可能降低收取 的 DNA量。 DB21/T 3054 2018 3 8.1.3 室温放置 10 min以上,然后在室温条件下 12 000 rpm离心 5min。离心时,请注意离心管在离心 机里的摆放方向要统一,离心管的小耳朵朝上。此时几乎看不到 DNA沉淀。若离心温度低,会对收取的 DNA量和纯度有影响,请于 20以上离心。 8.1.4 用移液器小心除去管中溶液,此时沉淀看不清,紧贴在 离心管外侧(带小

    10、耳朵一侧)的内壁上, 除去溶液时,请一定注意微量移液器吸头不要碰到离心管外侧的内壁,插到离心管内侧的底部,注意不 要吸走沉淀物。 8.1.5 加入 1 ml的 GenTLE Solution II。此时 GenTLE Solution II 应沿着离心管内侧的内壁加入到 离心管中。特别注意操作步骤 4(除去 GenTlE Solution I 和血液混合物)以及操作步骤 10(除去 GenTLE Solution III 和异丙醇混合物)的实验操作特别重要,请严格按操作方法进行。 8.1.6 轻柔地上下 颠倒离心管数次,室温 12 000 rpm 以上离心 2min,用微量移液器小心地除去上清

    11、溶 液(方法参见实验操作 4)。剧烈振荡将影响收量和纯度。 8.1.7 向离心管中加入 GenTLE Solution III 500 l,轻微振荡 10 s 充分混合。 8.1.8 室温 12 000rpm离心 5min,把上清溶液移至另一个新的离心管中。 8.1.9 加入等体积(约 500 l)的异丙醇,轻柔地上下颠倒数次,均匀混合。 8.1.10 4、 12 000 rpm 离心 5 min,小心除去上清溶液。 GenTLE Solution III 中含有影响酶反应 的物质,所以一定要除净上清溶液,但应注意不要吸走沉淀。 8.1.11 加入 1 ml的 70%乙醇清洗沉淀, 4、 12

    12、 000 rpm 离心 5min,小心地除去上清溶液(方法参见 4)。 8.1.12 干燥沉淀。因为该方法提取的 DNA较大,完整性好,所以请一定不要干燥过度。 Tube(离心管) 中看不到有明显的液体或没有乙醇气味后,就可以加入 TE进行溶解。如果沉淀已经变白,说明干燥过度, 此时加入 TE,可能沉淀不能完全溶解, DNA的收量可能会受到影响。 8.1.13根据下一 步实验需要,用 10 50 l 适当的 5 mMol/L 的 Tris/HCl(pH 7.5 8.0)溶解沉淀。 8.2 荧光定量 PCR 的方法 8.2.1 冰上操作。 8.2.2 准备 0.2 ml Tube若干(数目为样品

    13、数目 +2)。 8.2.3 向每个管中加入 ( 1) 2 SYBR Master Mix 10.0 l; ( 2) 20 mol/l正反向引物各 0.1 l; ( 3)去离子水 7.8 l; ( 4)样品 2 l,其中 2个管分别加入 2l灭菌双蒸水和 2l阳性对照基因。 8.2.4 震荡混匀后使用离心机离心, 此时拿出 Tube时应小心不可以让聚集在管底的液体弹起。 8.2.5 放入荧光定量 PCR仪,反应条件为: 95 3 min, 95 15 s, 60 60 s, 72 30 s, 35个循环。 8.2.6 荧光定量 PCR反应结束后,从荧光定量 PCR仪直接调取荧光定量 PCR溶解曲线数据,进行溶解曲线 分析。 8.3 结果判定 当样品的荧光定量 PCR溶解曲线数据与阳性对照一致为有规律的扩增曲线,而空白组(即双蒸水组) 无扩增曲线时,则样品为检测阳性样品;若当样品的荧光定量 PCR溶解曲线数据与空白组(即双蒸水组) 一致无扩增曲线, 而阳性对照可见有规律的溶解曲线,则样品为检测阴性样品。 9 检测过程中防止交叉污染的措施 按照 GB/T 19495.2的规定执行。 DB21/T 3054 2018 4 10 废弃物处理 按照 GB19489 的规定执行。 _


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